Рост и физиологическое состояние микроводоросли Heterosigma akashiwo (Raphidophyceae) при воздействии кадмия, свинца и никеля

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Оценено действие тяжелых металлов − кадмия, свинца и никеля на рост и физиологическое состояние рафидофитовой водоросли Heterosigma akashiwo MBRU_HAK-SR11 (Y.Hada) Y.Hada ex Y.Hara, M.Chihara в течение 7 суток опыта. Выявлено, что кадмий и никель в концентрациях 10 и 20 мкг/л стимулировали рост H. akashiwo, а свинец при данных концентрациях − ингибировал. Содержание хлорофилла а и каротиноидов при добавлении 10 мкг/л кадмия и 20 мкг/л никеля увеличивалось, при добавлении 20 мкг/л кадмия содержание каротиноидов было выше такового в контроле. При внесении свинца наблюдалось повышение уровня хлорофилла а и уменьшение содержания каротиноидов. Содержание АФК увеличивалось при внесении кадмия и свинца, а при внесении никеля снижалось. Кадмий оказал действие на продукцию нейтральных липидов: их содержание повышалось, а к концу опыта снижалось. Никель стимулировал накопление нейтральных липидов H. akashiwo, а свинец никак не влиял на их содержание. Наименьшее влияние металлы оказали на прямое и боковое светорассеяние и флуоресценцию хлорофилла а. Отсутствие выраженных изменений прямого и бокового светорассеяния косвенно свидетельствуют о том, что морфологически клетки водоросли не изменялись при токсическом воздействии. Таким образом, кадмий, свинец и никель в концентрациях 10-20 мкг/л изменяли физиологические процессы у водоросли.

Об авторах

Ж. В. Маркина

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки “Национальный научный центр морской биологии
им. А.В. Жирмунского” Дальневосточного отделения Российской академии наук

Email: zhannav@mail.ru
Россия, Владивосток

А. В. Огнистая

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки “Национальный научный центр морской биологии
им. А.В. Жирмунского” Дальневосточного отделения Российской академии наук; Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования
“Дальневосточный федеральный университет”

Автор, ответственный за переписку.
Email: zhannav@mail.ru
Россия, Владивосток; Россия, Владивосток

Список литературы

  1. Nagajyoti P.C., Lee K.D., Sreekanth T.V.M. Heavy metals, occurrence and toxicity for plants: a review // Environ. Chem. Lett. 2010. V. 8. P. 199. https://doi.org/10.1007/s10311-010-0297-8
  2. Masmoudi S., Nguyen-Deroche N., Caruso A., Ayadi H., Morant-Manceau A., Tremblin G. Cadmium, copper, sodium and zinc effects on diatoms: from heaven to hell – a review // Cryptogam., Algol. 2013. V. 34. P. 185. https://doi.org/10.7872/crya.v34.iss2.2013.185
  3. Huang X.G., Li S.X., Liu F.J., Lan W.R. Regulated effects of Prorocentrum donghaiense Lu exudate on nickel bioavailability when cultured with different nitrogen sources // Chemosphere. 2018. V. 197. P. 57. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2018.01.014
  4. Cheng J., Qiu H., Chang Z., Jiang Z., Yin W. The effect of cadmium on the growth and antioxidant response for freshwater algae Chlorella vulgaris // SpringerPlus. 2016. V. 5. P. 1. https://doi.org/10.1186/s40064-016-2963-1
  5. Andosch A., Affenzeller M.J., Lütz C., Lütz-Meindl U. A freshwater green alga under cadmium stress: ameliorating calcium effects on ultrastructure and photosynthesis in the unicellular model Micrasterias // J. Plant Physiol. 2012. V. 169. P. 1489. https://doi.org/10.1016/j.jplph.2012.06.002
  6. Mallick N., Mohn F.H. Use of chlorophyll fluorescence in metal-stress research: a case study with the green microalga Scenedesmus // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2003. V. 55. P. 64. https://doi.org/10.1186/10.1016/S0147-6513(02)00122-7
  7. Chia M.A., Lombardi A.T., Maria da Graça G.M., Parrish C.C. Lipid composition of Chlorella vulgaris (Trebouxiophyceae) as a function of different cadmium and phosphate concentrations // Aquat. Toxicol. 2013. V. 128. P. 171. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2012.12.004
  8. Jamers A., Blust R., De Coen W., Griffin J.L., Jones O.A. An omics based assessment of cadmium toxicity in the green alga Chlamydomonas reinhardtii // Aquat. Toxicol. 2013. V. 126. P. 355. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2012.09.007
  9. Martínez-Ruiz E.B., Martínez-Jerónimo F. Nickel has biochemical, physiological, and structural effects on the green microalga Ankistrodesmus falcatus: an integrative study // Aquat. Toxicol. 2015. V. 169. P. 27. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2015.10.007
  10. Li M., Zhang F., Glibert P.M. Seasonal life strategy of Prorocentrum minimum in Chesapeake Bay, USA: Validation of the role of physical transport using a coupled physical–biogeochemical–harmful algal bloom model // Limnol. Oceanogr. 2021. V. 66. P. 3873. https://doi.org/10.1002/lno.11925
  11. Маркина Ж.В. Ультраструктура и автотрофная функция клеток рафидофитовой микроводоросли Heterosigma akashiwo (Y. Hada) Y. Hada ex Y. Hara and M. Chihara, 1987 в загрязненной медью среде // Биология моря. 2021. Т. 47. С. 196. https://doi.org/10.31857/S0134347521030074
  12. Lemley D.A., Adams J.B., Rishworth G.M., Purdie D.A. Harmful algal blooms of Heterosigma akashiwo and environmental features regulate Mesodinium cf. rubrum abundance in eutrophic conditions // Harmful Algae. 2020. 100:101943. https://doi.org/10.1016/j.hal.2020.101943
  13. Bornman E., Adams J.B., Strydom N.A. Algal blooms of Heterosigma akashiwo and Mugilidae Gill Alterations // Estuaries Coast. 2022. V. 45. P. 1674. https://doi.org/10.1007/s12237-021-01038-6
  14. La Rocca N., Andreoli C., Giacometti G.Á., Rascio N., Moro I. Responses of the Antarctic microalga Koliella antarctica (Trebouxiophyceae, Chlorophyta) to cadmium contamination // Photosynthetica. 2009. V. 47. P. 471. https://doi.org/10.1007/s11099-009-0071-y
  15. Carfagna S., Lanza N., Salbitani G., Basile A., Sorbo S., Vona V. Physiological and morphological responses of lead or cadmium exposed Chlorella sorokiniana 211-8K (Chlorophyceae) // SpringerPlus. 2013. V. 2. P. 1. https://doi.org/10.1186/2193-1801-2-147
  16. Zamani-Ahmadmahmoodi R., Malekabadi M.B., Rahimi R., Johari S.A. Aquatic pollution caused by mercury, lead, and cadmium affects cell growth and pigment content of marine microalga, Nannochloropsis oculata // Environ. Monit. Assess. 2020. V. 192. P. 1. https://doi.org/10.1007/s10661-020-8222-5
  17. Gomes A., Ferdandes E., Lima J.F.L.C. Fluorescence probes used for detection of reactive oxygen species // J. Biophys. Biochem. Methods. 2005. V. 65. P. 45. https://doi.org/10.1016/j.jbbm.2005.10.003
  18. Wan M., Jin X., Xia J., Rosenberg J.N., Yu G., Nie Z., Oyler G.A., Betenbaugh M.J. The effect of iron on growth, lipid accumulation, and gene expression profile of the freshwater microalga Chlorella sorokiniana // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2014. V. 98. P. 9473. https://doi.org/0.1007/s00253-014-6088-6
  19. Rajabi Islami H., Assareh R. Effect of different iron concentrations on growth, lipid accumulation, and fatty acid profile for biodiesel production from Tetradesmus obliquus // J. Appl. Phycol. 2019. V. 31 P. 3421. https://doi.org/10.1007/s10811-019-01843-4
  20. Guillard R.R.L., Ryther J.H. Studies of marine planktonic diatoms. 1. Cyclotella nana Hustedt and Detonula confervacea (Cleve) Gran. // Can. J. Microbiol. 1962. V. 8. P. 229. https://doi.org/10.1139/m62-029
  21. Hyka P., Lickova S., Přibyl P., Melzoch K., Kovar K. Flow cytometry for development of biotechnological processes with microalgae // Biotechnol. Adv. 2013. V. 31. P. 2. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2012.04.007
  22. Alemán-Nava G.S., Cuellar-Bermudez S.P., Cuaresma M., Bosma R., Muylaert K., Ritmann B.E., Parra R. How to use Nile Red, a selective fluorescent stain for microalgal neutral lipids // J. Microbiol. Methods. 2016. V. 128. P. 74. https://doi.org/10.1016/j.mimet.2016.07.011
  23. Jeffrey S.T., Humphrey G.F. New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, c1 and c2 in higher plants, algae and natural phytoplankton // Biochem. Physiol. Pflanz. 1975. V. 167. P. 191. https://doi.org/10.1016/S0015-3796(17)30778-3
  24. Zhu Q.L., Guo S.N., Wen F., Zhang X.L., Wang C.C., Si L.F., Zeng J.L., Liu J. Transcriptional and physiological responses of Dunaliella salina to cadmium reveals time-dependent turnover of ribosome, photosystem, and ROS-scavenging pathways // Aquat. Toxicol. 2019. V. 207. P. 153. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2018.12.007
  25. Gissi F., Adams M.S., King C.K., Jolley D.F. A robust bioassay to assess the toxicity of metals to the Antarctic marine microalga Phaeocystis Antarctica // Environ. Toxicol. Chem. 2015. V. 34. P. 1578. https://doi.org/10.1002/etc.2949
  26. Dobrikova A.G., Apostolova E.L. Damage and protection of the photosynthetic apparatus under cadmium stress // Cadmium toxicity and tolerance in plants / Eds. M. Hasanuzzaman et al. Academic Press. 2019. P. 275. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-814864-8.00011-5
  27. Singh M., Kumar J., Singh S., Singh V.P., Prasad S.M., Singh M.P.V.V.B. Adaptation strategies of plants against heavy metal toxicity: a short review // Biochem. Pharmacol. 2015. V. 4. P. 2167. https://doi.org/10.4172/2167-0501.1000161
  28. Barkhordari A.Z., Taherizadeh M.R., Yousef Z.M. Effects of different concentrations of lead on growth, photosynthetic pigmentation and protein micro alga Isochrysis galbana // J. Oceanogr. 2021. V. 12. P. 109. https://doi.org/10.52547/joc.12.46.109
  29. Shanab S., Essa A., Shalaby E. Bioremoval capacity of three heavy metals by some microalgae species (Egyptian Isolates) // Plant Signal. Behav. 2012. V. 7. P. 392. https://doi.org/10.4161/psb.19173
  30. Kumar K.S., Dahms H.U., Won E.J., Lee J.S., Shin K.H. Microalgae – a promising tool for heavy metal remediation // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2015. V. 113. P. 329. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2014.12.019
  31. Kemer K., Mantiri D.M., Rompas R.M., Rimper J.R., Margyaningsih N.I. Transmission electron microscope analysis upon growth of lead acetate treated microalga, Dunaliella sp. // Aquac. Aquar. Conserv. Legis. 2020. V. 13. P. 849.
  32. Dao L.H., Beardall J. Effects of lead on two green microalgae Chlorella and Scenedesmus: photosystem II activity and heterogeneity // Algal Res. 2016. V. 16. P. 150. https://doi.org/10.1016/j.algal.2016.03.006
  33. Moise M.M. Lead (Pb2+) causes chlorophyll related changes and oxidative damage in Chlorella ellipsoides (Chlorophyceae) // Braz. J. Biol. Sci. 2019. V. 6. P. 605. https://doi.org/10.21472/bjbs.061412
  34. Hong H.S., Wang M.H., Huang X.G., Wang D.Z. Effects of macronutrient additions on nickel uptake and distribution in the dinoflagellate Prorocentrum donghaiense Lu // Environ. Pollut. 2009. V. 157. P. 1933. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2009.01.009
  35. Guo R., Lu D., Liu C., Hu J., Wang P., Dai X. Toxic effect of nickel on microalgae Phaeodactylum tricornutum (Bacillariophyceae) // Ecotoxicology. 2022. V. 31. P. 746. https://doi.org/10.1007/s10646-022-02532-8

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2.

Скачать (524KB)
Метаданные
3.

Скачать (600KB)
Метаданные
4.

Скачать (667KB)
Метаданные

© Ж.В. Маркина, А.В. Огнистая, 2023

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».