Репаративная сборка хроматина играет важную роль в стабильности генома
- Авторы: Скобелева И.И.1, Евстюхина Т.А.1,2, Алексеева Е.А.1,2, Торощина А.В.1, Пешехонов В.Т.1,2, Федоров Д.В.1, Королев В.Г.1,2
-
Учреждения:
- Петербургский институт ядерной физики им. Б.П. Константинова Национального исследовательского центра “Курчатовский институт”
- Курчатовский геномный центр – ПИЯФ
- Выпуск: Том 61, № 2 (2025)
- Страницы: 24-34
- Раздел: ГЕНЕТИКА МИКРООРГАНИЗМОВ
- URL: https://journal-vniispk.ru/0016-6758/article/view/291680
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0016675825020032
- EDN: https://elibrary.ru/uvvfzd
- ID: 291680
Цитировать
Аннотация
При завершении репарации ДНК важную роль играют процессы, связанные с восстановлением нормальной структуры хроматина. Некорректная сборка хроматина может привести к геномным перестройкам, которые, в свою очередь, могут быть причиной развития многих болезней, включая рак. Ранее мы обнаружили, что нарушения правильности сборки нуклеосом и их ремодулирования в процессе репаративной сборки хроматина приводят к повышенному уровню мутагенеза. В настоящей работе мы показали, что мутация asf1Δ имеет конститутивно гиперактивированную киназу Rad53, что служит причиной дезорганизации структуры хроматина и значительно изменяет спектр спонтанных репаративных мутаций. Нарушение сайта связывания адаптерного белка Rad9 с ДНК в результате инактивации гена DOT1 нивелирует hif1Δ-специфический мутагенез, который является следствием некорректной репаративной сборки нуклеосом. Отсутствие белка Rad9 при нормальных условиях роста и при обработке низкими дозами УФ-лучей приводит к аберрантной активации комплекса RNR. При этом дальнейшее увеличение дозы УФ-облучения практически не влияет на экспрессию RNR3. Эти результаты подтверждают, что корректная сборка хроматина критична для нормального функционирования генома.
Ключевые слова
Об авторах
И. И. Скобелева
Петербургский институт ядерной физики им. Б.П. Константинова Национального исследовательского центра “Курчатовский институт”
Автор, ответственный за переписку.
Email: alekseeva_ea@pnpi.nrcki.ru
Россия, Ленинградская область, Гатчина, 188300
Т. А. Евстюхина
Петербургский институт ядерной физики им. Б.П. Константинова Национального исследовательского центра “Курчатовский институт”; Курчатовский геномный центр – ПИЯФ
Email: alekseeva_ea@pnpi.nrcki.ru
Россия, Ленинградская область, Гатчина, 188300; Ленинградская область, Гатчина, 188300
Е. А. Алексеева
Петербургский институт ядерной физики им. Б.П. Константинова Национального исследовательского центра “Курчатовский институт”; Курчатовский геномный центр – ПИЯФ
Email: alekseeva_ea@pnpi.nrcki.ru
Россия, Ленинградская область, Гатчина, 188300; Ленинградская область, Гатчина, 188300
А. В. Торощина
Петербургский институт ядерной физики им. Б.П. Константинова Национального исследовательского центра “Курчатовский институт”
Email: alekseeva_ea@pnpi.nrcki.ru
Россия, Ленинградская область, Гатчина, 188300
В. Т. Пешехонов
Петербургский институт ядерной физики им. Б.П. Константинова Национального исследовательского центра “Курчатовский институт”; Курчатовский геномный центр – ПИЯФ
Email: alekseeva_ea@pnpi.nrcki.ru
Россия, Ленинградская область, Гатчина, 188300; Ленинградская область, Гатчина, 188300
Д. В. Федоров
Петербургский институт ядерной физики им. Б.П. Константинова Национального исследовательского центра “Курчатовский институт”
Email: alekseeva_ea@pnpi.nrcki.ru
Россия, Ленинградская область, Гатчина, 188300
В. Г. Королев
Петербургский институт ядерной физики им. Б.П. Константинова Национального исследовательского центра “Курчатовский институт”; Курчатовский геномный центр – ПИЯФ
Email: alekseeva_ea@pnpi.nrcki.ru
Россия, Ленинградская область, Гатчина, 188300; Ленинградская область, Гатчина, 188300
Список литературы
- Evstyukhina T.A., Alekseeva E.A., Fedorov D.V. et al. Genetic analysis of the Hsm3 protein function in yeast Saccharomyces cerevisiae NuB4 complex // Genes. 2021. V. 12. P. 1083. https://doi.org/10.3390/ genes12071083
- Alekseeva E.A., Evstyukhina T.A., Peshekhonov V.T. et al. The role of the RPD3 complex of Saccharomyces cerevisiae yeast in the activation of UV-induced expression of RNR complex genes // J. Biomed. Res. Environ. Sc. 2024. V. 5. P. 360–372. https://doi.org/10.37871/jbres1902
- Alekseeva E.A., Evstyukhina T.A., Peshekhonov V.T., Korolev V.G. Participation of the HIM1 gene of yeast Saccharomyces cerevisiae in the error-free branch of post-replicative repair and role Polη in him1-dependent mutagenesis // Curr Genet. 2021. V. 67. P. 141–151. https://doi.org/10.1007/s00294-020-01115-6
- Evstyukhina T.A., Alekseeva E.A., Peshekhonov V.T. et al. The role of chromatin assembly factors in induced mutagenesis at low levels of DNA damage // Genes. 2023. V. 14. P. 1242. https://doi.org/10.3390/genes14061242
- Евстюхина Т.А., Алексеева Е.А., Скобелева И.И. и др. Роль различных субъединиц ремоделирующего комплекса INO80 в репарационной сборке хроматина у дрожжей Saccharomyces cerevisiae // Генетика. 2024. Т. 60. № 7. P. 000.
- Weinert T.A., Hartwell L.H. The RAD9 gene controls the cycle response to DNA damage checkpoint in Saccharomyces cerevisiae // Science. 1988. V. 241. P. 317–322. https://doi.org/10.1126/science.3291120
- Vialarg J.E., Gilbert C.S., Green C.M., Lowndes N.F. The budding yeast Rad9 checkpoint protein is subjected to Mec1/Tel1-dependent hyperphosphorylation and interacts with Rad53 after DNA damage // EMBO J. 1998. V. 17. P. 5679–5688. https://doi.org/10.1093/emboj/17.19.5679
- Granata M., Lazzaro F., Novarina D. et al. Dynamics of Rad9 chromatin binding and checkpoint function are mediated by its demirization and are cell cycle-regulated by CDK1 activity // PLoS Genetics. 2010. V. 6. P. e1001047. doi:10.1371/ journal.gen.1001047
- Sun Z., Hsiao J., Fay D.S., Stern D.F. Rad53 FHA domain associated with phosphorylated Rad9 in the DNA damage checkpoint // Science. 1998. V. 281. P. 272–274. https://doi.org/10.1126/science.281.5374.272
- Wysocki R., Javaheri A., Allard S. et al. Role of Dot1-dependent histone 3 methylation in G, and S phase DNA damage checkpoint functions of Rad9 // Mol. Cell. Biol. 2005. V. 25. P. 8430–8443. https://doi.org/10.1128/MCB.25.19.8430-8443.2005
- Javaheri A., Wisocki R., Jobin-Robitaille O. et al. Yeast G1 DNA damage checkpoint regulation by H2A phosphorylation is independent of chromatin remodeling // PNAS. 2006. V. 12. P. 13771–13776. doi/10.1073/pnas.0511192103
- Захаров И.А., Кожин С.А., Кожина Т.А. и др. Сборник методик по генетике дрожжей-сахаромицетов, изд. 2-е. Л.: Наука, 1984. 144 с.
- Keck K.M., Pemberton L.F. Histone chaperon link histone nuclear import and chromatin assembly // Biochim. Biophys. Acta. 2012. V. 1819. P. 277–289. https://doi.org/10.1016/j.bbagrm.2011.09.007
- Adkins M.W., Williams S.K., Linger J., Tyler J.K. Chromatin disassembly from the PHO5 promoter is essential for the recruitment of the general transcription machinery and coactivators // Mol. Cell. Biol. 2007. V. 27. P. 6372–6382. https://doi.org/10.1128/MCB.00981-07
- Mousson F., Ochsenbein F., Mann C. The histone chaperone Asf1 at the crossroads of chromatin and DNA checkpoint pathways // Chromosoma. 2007. V. 116. P. 79–93. https://doi.org/10.1007/s00412-006-0087-z
- Tyler J.K., Adams C.R., Chen S.R. et al. The RCAF complex mediates chromatin assembly during DNA replication and repair // Nature. 1999. V. 402. P. 555–560. https://doi.org/10.1038/990147
- Prado F., Cortes-Ledesma F., Aguilera A. The absence of the yeast chromatin assembly factor Asf1 increases genomic instability and sister chromatid exchange // EMBO Rep. 2004. V. 5. P. 497–502. https://doi.org/10.1038/sj.embor.7400128
- Myung K., Pennaneach V., Kats E.S., Kolodner R.D. Saccharomyces cerevisiae chromatin-assembly factors that act during DNA replication function in the maintenance of genome stability // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2003. V. 100. P. 6640–6645. https://doi.org/10.1073/pnas.1232239100
- Kozmin S.G., Pavlov Y.I., Kunkel T.A., Sage E. Roles of Saccharomyces cerevisiae DNA polymerases Polη and Polζ in response to irradiation by simulated sunlight // Nucl. Acids Res. 2003. V. 31. P. 4541–4552. https://doi.org/10.1093/nar/gkg489
- Кожина Т.Н., Евстюхина Т.А., Пешехонов В.Т. и др. Гистон-метилазы Dot1 и Set2 контролируют уровень спонтанного и УФ-индуцированного мутагенеза в дрожжах Saccharomyces cerevisiae // Генетика. 2016. Т. 52. № 3. С. 300–310.
- Sharp J.A., Fouts E.T., Krawitz D.C., Kaufman P.D. Yeast histone deposition protein Asf1p requires Hir proteins and PCNA for heterochromatic silencing // Curr Biol. 2001. V. 11. P. 463–473. https://doi.org/10.1016/s0960-9822(01)00140-3
- Ge Z., Wang H., Parthun M.R. Nuclear Hat1p complex (NuB4) components participate in DNA repair-linked chromatin reassembly // J. Biol. Chem. 2011. V. 286. P. 16790–16799. https://doi.org/10.1074/jbc.M110.216846
- Bostelman L.J., Keller A.M., Albrecht A.M. et al. Methylation of histone H3 lysine-79 by Dot1p plays multiple roles in the response to UV damage in Saccharomyces cerevisiae // DNA Repair. 2007. V. 6. P. 383–395. https://doi.org/10.1016/j.dnarep.2006.12.010
- Conde F., San-Segundo P.A. Role of Dot1 in the response to alkylating DNA damage in Saccharomyces cerevisiae: Regulation of DNA damage tolerance by the error-prone polymerases Polzeta/Rev1 // Genetics. 2008. V. 179. P. 1197–1210. https://doi.org/10.1534/genetics.108.089003
Дополнительные файлы
