Экстракты лекарственных растений в гепатопротекции: антиоксидантные и иммуномодулирующие эффекты
- Авторы: Ших Е.В.1, Хайтович Е.Д.1, Цветков Д.Н.1
-
Учреждения:
- ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)
- Выпуск: Том 96, № 8 (2024): Вопросы лечения
- Страницы: 836-845
- Раздел: Обзоры
- URL: https://journal-vniispk.ru/0040-3660/article/view/266650
- DOI: https://doi.org/10.26442/00403660.2024.08.202841
- ID: 266650
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Глобальный рынок растительных препаратов оценивается в 83 млрд дол. и продолжает стремительно расти. Экстракты лекарственных растений (ЛР), широко используемые благодаря эффективности и минимальным побочным эффектам, играют значительную роль в поддержании функции печени. Лечение заболеваний печени, включая гепатиты различной этиологии, алкогольную и неалкогольную жировую болезнь печени и цирроз, а также профилактика лекарственных поражений печени требуют назначения эффективных гепатопротекторных препаратов. Антиоксидантные и иммуномодулирующие фармакологические эффекты играют значимую роль в механизмах гепатопротекции экстрактов ЛР. Цель исследования – проанализировать механизмы гепатопротекторных эффектов различных экстрактов ЛР, входящих в состав лекарственного препарата (ЛП) ДИПАНА®, их антиоксидантные и иммуномодулирующие эффекты, а также представить результаты клинических исследований (КИ), подтверждающих их эффективность при различных заболеваниях печени. Анализ проводили на основе доступных литературных данных и результатов КИ по применению ЛП ДИПАНА®. Рассмотренные экстракты ЛР и их комплекс (ЛП ДИПАНА®) демонстрируют эффективность на экспериментальных моделях поражения печени и при проведении КИ у пациентов с заболеваниями данного органа, включая алкогольный и неалкогольный стеатогепатит, лекарственные поражения, а также функциональные расстройства желчного пузыря. Препарат оказывает гепатопротекторное, холеретическое, спазмолитическое действие и хорошо переносится больными.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Евгения Валерьевна Ших
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)
Автор, ответственный за переписку.
Email: chih@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6589-7654
д-р мед. наук, проф., зав. каф. клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней
Россия, МоскваЕвгений Дмитриевич Хайтович
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)
Email: chih@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2629-9250
ассистент каф. клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней, врач – клинический фармаколог
Россия, МоскваДмитрий Николаевич Цветков
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)
Email: chih@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9460-7289
ассистент каф. клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней
Россия, МоскваСписок литературы
- Robinson MM, Zhang X. The world medicines situation 2011. Traditional medicines: global situation, issues and challenges. World Health Organization. Geneva, 2011.
- Newman DJ, Cragg GM. Natural products as sources of new drugs over the 30 years from 1981 to 2010. J Nat Prod. 2012;75(3):311-35.
- Losser MR, Payen D. Mechanisms of liver damage. Semin Liver Dis. 1996;16(4):357-67. doi: 10.1055/s-2007-1007249
- Decker K. Biologically active products of stimulated liver macrophages (Kupffer cells). Eur J Biochem. 1990;192(2):245-61. doi: 10.1111/j.1432-1033.1990.tb19222.x
- Olynyk JK, Matuschak GM, Lechner AJ, et al. Differential production of TNF by Kupffer cells after phagocytosis of E. coli and C. albicans. Am J Physiol. 1994;267(2 Pt 1):G213-9. doi: 10.1152/ajpgi.1994.267.2.G213
- Tschopp J, Nabholz M. Perforin-mediated target cell lysis by cytolytic T lymphocytes. Annu Rev Immunol. 1990;8:279-302. doi: 10.1146/annurev.iy.08.040190.001431
- Кучерявый Ю.А., Морозов С.В. Гепатопротекторы: рациональные аспекты применения. М. 2012 [Kucheriavyi IuA, Morozov SV. Gepatoprotektory: ratsional’nye aspekty primeneniia. Moscow. 2012 (in Russian)].
- Dhawan BN. Picroliv – A New Hepatoprotective Agent from an Indian Medicinal plant, Picrorhiza Kurroa. Med Chem Res. 1995;5:595-605.
- Nisha S, Vijaylata P, Bikram S, Raghbir CG. Intraspecific variability of main phytochemical compounds in Picrorhiza kurroa Royle ex Benth. from North Indian higher altitude Himalayas using reversed-phase high-performance liquid chromatography. J Med Plants Res. 2012;6(16):3181-7. doi: 10.5897/JMPR11.1670
- Ernst E. Major Herbs of Ayurveda. Focus Altern Compl Ther. 2010;8:98. doi: 10.1111/j.2042-7166.2003.tb05765.x
- Rajaprabhu D, Rajesh R, Jeyakumar R, et al. Protective Effect of Picrorhiza Kurroa on Antioxidant Defense Status in Adriamycin-Induced Cardiomyopathy in Rats. J Med Plant Res. 2007;1(4):80-5.
- Mehrotra R, Rawat S, Kulshreshtha DK, et al. In vitro studies on the effect of certain natural products against hepatitis B virus. Indian J Med Res. 1990;92:133-8.
- Gupta A, Khajuria A, Singh J, et al. Immunomodulatory activity of biopolymeric fraction RLJ-NE-205 from Picrorhiza kurroa. Int Immunopharmacol. 2006;6(10):1543-9. doi: 10.1016/j.intimp.2006.05.002
- Rajkumar V, Guha G, Kumar RA. Antioxidant and anti-neoplastic activities of Picrorhiza kurroa extracts. Food Chem Toxicol. 2011;49(2):363-9. doi: 10.1016/j.fct.2010.11.009
- Almeleebia TM, Alsayari A, Wahab S. Pharmacological and Clinical Efficacy of Picrorhiza kurroa and Its Secondary Metabolites: A Comprehensive Review. Molecules. 2022;27(23). doi: 10.3390/molecules27238316
- Singh H, Sharma Y. Clinical evaluation of the hepatoprotective effect of Katuki (Picrorhiza kurroa Royle ex Benth.) processed in Guduchi (Tinospora cordifolia Wild.) Miers in patients receiving lipid lowering drugs (Statins). Indian Journal of Traditional Knowledge. 2011;10:657-60.
- Tarapure S, Tubaki BR, Khot S. Elastographic liver evaluation of Katukyadi churna in the management of Non-Alcoholic Steatohepatitis (NASH) – A single arm clinical trial. J Ayurveda Integr Med. 2021;12(1):136-42. doi: 10.1016/j.jaim.2020.12.015
- Vaidya AB, Antarkar DS, Doshi JC, et al. Picrorhiza kurroa (Kutaki) Royle ex Benth as a hepatoprotective agent-experimental & clinical studies. J Postgrad Med. 1996;42(4):105-8.
- Jiang M, Sheng F, Zhang Z, et al. Andrographis paniculata (Burm.f.) Nees and its major constituent andrographolide as potential antiviral agents. J Ethnopharmacol. 2021;272:113954. doi: 10.1016/j.jep.2021.113954
- Lee JC, Tseng CK, Young KC, et al. Andrographolide exerts anti-hepatitis C virus activity by up-regulating haeme oxygenase-1 via the p38 MAPK/Nrf2 pathway in human hepatoma cells. Br J Pharmacol. 2014;171(1):237-52. doi: 10.1111/bph.12440
- Chandrasekaran CV, Gupta A, Agarwal A. Effect of an extract of Andrographis paniculata leaves on inflammatory and allergic mediators in vitro. J Ethnopharmacol. 2010;129(2):203-7. doi: 10.1016/j.jep.2010.03.007
- Chandrasekaran CV, Thiyagarajan P, Deepak HB, Agarwal A. In vitro modulation of LPS/calcimycin induced inflammatory and allergic mediators by pure compounds of Andrographis paniculata (King of bitters) extract. Int Immunopharmacol. 2011;11(1):79-84. doi: 10.1016/j.intimp.2010.10.009
- Liu J, Wang ZT, Ge BX. Andrograpanin, isolated from Andrographis paniculata, exhibits anti-inflammatory property in lipopolysaccharide-induced macrophage cells through down-regulating the p38 MAPKs signaling pathways. Int Immunopharmacol. 2008;8(7):951-8. doi: 10.1016/j.intimp.2007.12.014
- Singha PK, Roy S, Dey S. Protective activity of andrographolide and arabinogalactan proteins from Andrographis paniculata Nees. against ethanol-induced toxicity in mice. J Ethnopharmacol. 2007;111(1):13-21. doi: 10.1016/j.jep.2006.10.026
- Liu FP, Ma X, Li MM, et al. Hepatoprotective effects of Solanum nigrum against ethanol-induced injury in primary hepatocytes and mice with analysis of glutathione S-transferase A1. J Chin Med Assoc. 2016;79(2):65-71. doi: 10.1016/j.jcma.2015.08.013
- Amin ZA, Abdulla MA, Ali HM, et al. Assessment of in vitro antioxidant, antibacterial and immune activation potentials of aqueous and ethanol extracts of Phyllanthus niruri. J Sci Food Agric. 2012;92(9):1874-7. doi: 10.1002/jsfa.5554
- Colpo E, Vilanova CD, Pereira RP, et al. Antioxidant effects of Phyllanthus niruri tea on healthy subjects. Asian Pac J Trop Med. 2014;7(2):113-8. doi: 10.1016/S1995-7645(14)60005-5
- Nworu CS, Akah PA, Okoye FB, Esimone CO. Aqueous extract of Phyllanthus niruri (Euphorbiaceae) enhances the phenotypic and functional maturation of bone marrow-derived dendritic cells and their antigen-presentation function. Immunopharmacol Immunotoxicol. 2010;32(3):393-401. doi: 10.3109/08923970903463939
- Koay YH, Basiri A, Murugaiyah V, Chan KL. Isocorilagin, a cholinesterase inhibitor from Phyllanthus niruri. Nat Prod Commun. 2014;9(4):515-7.
- Latha P, Chaitanya D, Rukkumani R. Protective effect of Phyllanthus niruri on alcohol and heated sunflower oil induced hyperlipidemia in Wistar rats. Toxicol Mech Methods. 2010;20(8):498-503. doi: 10.3109/15376516.2010.511301
- Kaur N, Kaur B, Sirhindi G. Phytochemistry and Pharmacology of Phyllanthus niruri L.: A Review. Phytother Res. 2017;31(7):980-1004. doi: 10.1002/ptr.5825
- Thyagarajan SP, Thiruneelakantan K, Subramanian S, Sundaravelu T. In vitro inactivation of HBsAg by Eclipta alba Hassk and Phyllanthus niruri Linn. Indian J Med Res. 1982;(Suppl. 76):124-30.
- Venkateswaran PS, Millman I, Blumberg BS. Effects of an extract from Phyllanthus niruri on hepatitis B and woodchuck hepatitis viruses: in vitro and in vivo studies. Proc Natl Acad Sci U S A. 1987;84(1):274-8. doi: 10.1073/pnas.84.1.274
- Thyagarajan SP, Subramanian S, Thirunalasundari T, et al. Effect of Phyllanthus amarus on chronic carriers of hepatitis B virus. Lancet. 1988;2(8614):764-6. doi: 10.1016/s0140-6736(88)92416-6
- Wang M, Cheng H, Li Y, et al. Herbs of the genus Phyllanthus in the treatment of chronic hepatitis B: observations with three preparations from different geographic sites. J Lab Clin Med. 1995;126(4):350-2.
- Panneer SK, Payyappallimana U, Ravikumar K, Venkatasubramanian P. Can Guduchi (Tinospora cordifolia), a well-known ayurvedic hepato-protectant cause liver damage? J Ayurveda Integr Med. 2023;14(1):100658. doi: 10.1016/j.jaim.2022.100658
- Arunachalam K, Yang X, San TT. Tinospora cordifolia (Willd.) Miers: Protection mechanisms and strategies against oxidative stress-related diseases. J Ethnopharmacol. 2022;283:114540. doi: 10.1016/j.jep.2021.114540
- Goel HC, Prasad J, Singh S, et al. Radioprotective potential of an herbal extract of Tinospora cordifolia. J Radiat Res. 2004;45(1):61-8. doi: 10.1269/jrr.45.61
- Bishayi B, Roychowdhury S, Ghosh S, Sengupta M. Hepatoprotective and immunomodulatory properties of Tinospora cordifolia in CCl4 intoxicated mature albino rats. J Toxicol Sci. 2002;27(3):139-46. doi: 10.2131/jts.27.139
- Singh HK, Rastogi RP, Srimal RC, Dhawan BN. Effect of bacosides A and B on avoidance responses in rats. Phytother Res. 1988;2(2):70-5. doi: 10.1002/ptr.2650020205
- Russo A, Izzo AA, Borrelli F, et al. Free radical scavenging capacity and protective effect of Bacopa monniera L. on DNA damage. Phytother Res. 2003;17(8):870-5. doi: 10.1002/ptr.1061
- Kapoor R, Srivastava S, Kakkar P. Bacopa monnieri modulates antioxidant responses in brain and kidney of diabetic rats. Environ Toxicol Pharmacol. 2009;27(1):62-9. doi: 10.1016/j.etap.2008.08.00
- Anand T, Naika M, Swamy MSL, Khanum F. Antioxidant and DNA Damage Preventive Properties of Bacopa Monniera (L) Wettst. Free Radic Antioxid. 2011;1(1):84-90. doi: 10.5530/ax.2011.1.13
- Tewtrakul S, Subhadhirasakul S, Tansakul P, et al. Antiinflammatory constituents from Eclipta prostrata using RAW264.7 macrophage cells. Phytother Res. 2011;25(9):1313-6. doi: 10.1002/ptr.3383
- Lee JS, Ahn JH, Cho YJ, et al. α-Terthienylmethanol, isolated from Eclipta prostrata, induces apoptosis by generating reactive oxygen species via NADPH oxidase in human endometrial cancer cells. J Ethnopharmacol. 2015;169:426-34. doi: 10.1016/j.jep.2015.04.029
- Guenné S, Ouattara N, Ouédraogo N, et al. Phytochemistry and neuroprotective effects of Eclipta alba (L.) Hassk. J Complement Integr Med. 2019;17(1). doi: 10.1515/jcim-2019-0026
- Dungca NT. Protective effect of the methanolic leaf extract of Eclipta alba (L.) Hassk. (Asteraceae) against gentamicin-induced nephrotoxicity in Sprague Dawley rats. J Ethnopharmacol. 2016;184:18-21. doi: 10.1016/j.jep.2016.03.002
- Mishra S, Aeri V, Gaur PK, Jachak SM. Phytochemical, therapeutic, and ethnopharmacological overview for a traditionally important herb: Boerhavia diffusa Linn. Biomed Res Int. 2014;2014:808302. doi: 10.1155/2014/808302
- Borrelli F, Ascione V, Capasso R, et al. Spasmolytic effects of nonprenylated rotenoid constituents of Boerhaavia diffusa roots. J Nat Prod. 2006;69(6):903-6. doi: 10.1021/np060073h
- Gulati R, Agarwal S, Agarwal SS. Hepatoprotective activity of Boerhaavia diffusa linn. against country made liquor induced hepatotoxicity in albino rats fed on controlled calorie diet. Indian J Pharmacol. 1991;23:264-7.
- Devaki T, Shivashangari KS, Ravikumar V, Govindaraju P. Effect of Boerhaavia diffusa on tissue anti-oxidant defense system during ethanol-induced hepatotoxicity in rats. Journal of Natural Remedies. 2005;5(2):102-7.
- Oke GO, Abiodun AA, Imafidon CE, Monsi BF. Zingiber officinale (Roscoe) mitigates CCl(4)-induced liver histopathology and biochemical derangements through antioxidant, membrane-stabilizing and tissue-regenerating potentials. Toxicol Rep. 2019;6:416-25. doi: 10.1016/j.toxrep.2019.05.001
- Yamahara J, Huang QR, Li YH, et al. Gastrointestinal motility enhancing effect of ginger and its active constituents. Chem Pharm Bull (Tokyo). 1990;38(2):430-1. doi: 10.1248/cpb.38.430
- Haniadka R, Saldanha E, Sunita V, et al. A review of the gastroprotective effects of ginger (Zingiber officinale Roscoe). Food Funct. 2013;4(6):845-55. doi: 10.1039/c3fo30337c
- Christina AJ, Saraswathy GR, Robert SJ, et al. Inhibition of CCl4-induced liver fibrosis by Piper longum Linn.? Phytomedicine. 2006;13(3):196-8. doi: 10.1016/j.phymed.2004.01.009
- Dash M, Singh S, Sahoo BC, et al. Potential role of Indian long pepper (Piper longum L.) volatiles against free radicals and multidrug resistant isolates. Nat Prod Res. 2022;36(16):4271-5. doi: 10.1080/14786419.2021.1975703
- Fan D, Zhou C, Chen C, et al. Lignans from the genus Piper L. and their pharmacological activities: An updated review. Fitoterapia. 2023;165:105403. doi: 10.1016/j.fitote.2022.105403
Дополнительные файлы
