Вирус Бомбали (Filoviridae: Orthoebolavirus: Orthoebolavirus bombaliense)
- Авторы: Сизикова Т.Е.1, Лебедев В.Н.1, Борисевич С.В.1
-
Учреждения:
- ФГБУ «48 Центральный научно-исследовательский институт» Минобороны России
- Выпуск: Том 70, № 3 (2025)
- Страницы: 217-223
- Раздел: ОБЗОРЫ
- URL: https://journal-vniispk.ru/0507-4088/article/view/310659
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-310
- EDN: https://elibrary.ru/IKNGKJ
- ID: 310659
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Актуальность. Представители рода Orthoebolavirus семейства Filoviridae вызывают у человека геморрагическую лихорадку с летальностью до 90%. Первые эпидемические вспышки заболевания, вызываемого представителями этого рода, были зарегистрированы в 1976 г. в Заире и Судане. Подобные вспышки регулярно возникают в Африке. Крупнейшая за всю историю наблюдений вспышка геморрагической лихорадки произошла в 2013–2016 гг. в Гвинее, Сьерра-Леоне и Либерии, в ходе которой были зарегистрированы случаи завоза заболевания в неэндемичные регионы. Очаги циркуляции представителей рода Orthoebolavirus (за исключением вируса Рестон) располагаются в зоне влажных тропических лесов Центральной и Западной Африки. Природным резервуаром филовирусов являются представители отряда рукокрылых (летучие мыши и крыланы). Последовательности геномной РНК вируса Эбола выделены у различных видов рукокрылых (Hypsignathus monstrosus, Epomops franqueti, Myonycteris tarquata), причем в последнее время обнаружены новые представители семейства Filoviridae.
Цель обзора. Провести анализ свойств нового представителя рода Orthoebolavirus семейства Filoviridae – вируса Бомбали (Orthoebolavirus bombaliense).
Материалы и методы. Материалом служили англоязычные научные издания, размещенные в базах цитирования RSCI, PubMed. Метод исследования – аналитический. Проведен анализ литературы за период с 2005 по 2023 г.
Результаты. Вирус Бомбали впервые был выделен в Гвинее в августе 2018 г. от летучих мышей Mops condylurus. При сравнении концентрации вируса Бомбали в органах инфицированных летучих мышей наибольший уровень накопления выявлен в легких, что косвенно свидетельствует о возможности аэрозольного инфицирования Mops condylurus. В дальнейшем РНК вируса Бомбали была выявлена с помощью полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией у летучих мышей Chaerephon pumilus в Сьерра-Леоне, но не в других видах насекомоядных и фруктоядных летучих мышей. Нуклеотидная последовательность геномной РНК вируса Бомбали в образцах, собранных в Гвинее, на 99,3% идентична таковой в образцах, собранных в Сьерра-Леоне, и на 98,3% в образцах, собранных в Кении. С учетом того, что летучие мыши Mops condylurus, как и большинство других видов насекомоядных летучих мышей, не могут перемещаться на значительные расстояния, это является косвенным свидетельством широкого распространения вируса Бомбали на Африканском континенте. Несмотря на то что случаи заболевания человека, вызванные вирусом Бомбали, до настоящего времени не выявлены, гликопротеин этого вируса (как и гликопротеины патогенных для человека филовирусов) имеет сродство с рецептором С1 белка Ниманна–Пика клеток человека.
Заключение. Изучение молекулярно-биологических характеристик вируса Бомбали, так же как и других недавно открытых новых представителей семейства Filoviridae, может дать ценную информацию для определения молекулярных маркеров патогенности для человека.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Татьяна Евгеньевна Сизикова
ФГБУ «48 Центральный научно-исследовательский институт» Минобороны России
Автор, ответственный за переписку.
Email: anyuta6549@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1817-0126
канд. биол. наук, старший научный сотрудник
Россия, 141306, г. Сергиев ПосадВиталий Николаевич Лебедев
ФГБУ «48 Центральный научно-исследовательский институт» Минобороны России
Email: 48cnii@mil.ru
ORCID iD: 0000-0002-6552-4599
д-р биол. наук, профессор, ведущий научный сотрудник
Россия, 141306, г. Сергиев ПосадСергей Владимирович Борисевич
ФГБУ «48 Центральный научно-исследовательский институт» Минобороны России
Email: 48cnii@mil.ru
ORCID iD: 0000-0002-6742-3919
д-р биол. наук, профессор, академик РАН, начальник института
Россия, 141306, г. Сергиев ПосадСписок литературы
- Sanchez A., Geisbert T.W., Feldmann H. Filoviridae: Marburg and Ebola viruses. In: Knipe D.M., Howley P.M., eds. Fields Virology. Philadelphia: Lippincott William & Wilkins, a Wolters Kluwer Business; 2007: 1409–48.
- Radoshitzky S.R., Bavari S., Jahrling P.B., Cuhn J.H. Filoviruses. In: Bozue J., Cote C.K., Glass P.J., eds. Medical Aspects of Biological Warfare. Houston; 2018: 569–614.
- Biedenkopf N., Bukreyev A., Chandran K., Di Paola N., Formenty P.B.H., Griffiths A., et al. Renaming of genera Ebolavirus and Marburgvirus to Orthoebolavirus and Orthomarburgvirus, respectively, and introduction of binomial species names within family Filoviridae. Arch. Virol. 2023; 168(8): 220. https://doi.org/10.1007/s00705-023-05834-2
- Piot P., Muyembe J.J., Edmunds W.J. Ebola in West Africa: from disease outbreak to humanitarian crisis. Lancet Infect. Dis. 2014; 14(11): 1034–5. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(14)70956-9.
- Olival K.J., Hayman D.T.S. Filoviruses in bats: current knowledge and future directions. Viruses. 2014; 6(4): 1759–88. https://doi.org/10.3390/v6041759
- Nikegasong J.N., Onyebujoh P. Response to the Ebola virus disease outbreak in Democratic Republic of the Congo. Lancet. 2018; 391(10138): 2395–8. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(18)31326-6
- Agua-Agum J., Allegranzi B., Ariyarajah A., Aylward R., Blake I.M., Barboza P., et al. After Ebola in West Africa – unpredictable risks, preventable epidemics. N. Engl. J. Med. 2016; 375(6): 587–96. https://doi.org/10.1056/nejmsr1513109
- Towner J.S., Amman B.R., Sealy T.K., Carroll S.A.R., Comer J.A., Kemp A., et al. Isolation of genetically diverse Marburg viruses from Egyptian fruit bats. PLoS Pathog. 2009; 5(7): e1000536. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1000536
- Leroy E.M., Kumulungui B., Pourrut X., Rouquet P., Hassanin A., Yaba P., et al. Fruit bats as reservoirs of Ebola virus. Nature. 2005; 438(7068): 575–6. https://doi.org/10.1038/438575a
- Kunz T.H., Braun de Torrez E., Bauer D., Lobova T., Fleming T.H. Ecosystem services provided by bats. Ann. N.Y. Acad. Sci. 2011; 1223: 1–38. https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.2011.06004.x
- Schuh A.J., Amman B.R., Towner J.S. Filoviruses and bats. Microbiol. Aust. 2017; 38(1): 12–6. https://doi.org/10.1071/ma17005
- Hayman D.T.S., Emmerich P., Yu M., Wang L.F., Suu-Ire R., Fooks A.R., et al. Long-term survival of an urban fruit bat seropositive for Ebola and Lagos bat viruses. PLoS One. 2010; 5(8): e11978. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0011978
- Hayman D.T.S., McCrea R., Restif O., Suu-Ire R., Fooks A.R., Wood J.L.N., et al. Demography of straw-colored fruit bats in Ghana. J. Mammal. 2012; 93(5): 1393–404. https://doi.org/10.1644/11-mamm-a-270.1
- Hayman D.T.S., Yu M., Crameri G., Wang L.F., Suu-Ire R., Wood J.L.N., et al. Ebola virus antibodies in fruit bats, Ghana, West Africa. Emerg. Infect. Dis. 2012; 18(7): 1207–9. https://doi.org/10.3201/eid1807.111654
- Olival K.J., Islam A., Yu M., Anthony S.J., Epstein J.H., Khan S.A., et al. Ebola virus antibodies in fruit bats, Bangladesh. Emerg. Infect. Dis. 2013; 19(2): 270–3. https://doi.org/10.3201/eid1902.120524
- Pourrut X., Kumulungui B., Wittmann T., Moussavou G., Delicat A., Yaba P., et al. The natural history of Ebola virus in Africa. Microbes Infect. 2005; 7(7-8): 1005–14. https://doi.org/10.1016/j.micinf.2005.04.006
- Pourrut X., Delicat A., Rollin P.E., Ksiazek T.G., Gonzalez J.P., Leroy E.M. Spatial and temporal patterns of Zaire ebolavirus antibody prevalence in the possible reservoir bat species. J. Infect. Dis. 2007; 196(Suppl. 2): S176-83. https://doi.org/10.1086/520541
- Pourrut X., Souris M., Towner J.S., Rollin P.E., Nichol S.T., Gonzalez J.P., et al. Large serological survey showing cocirculation of Ebola and Marburg viruses in Gabonese bat populations, and a high seroprevalence of both viruses in Rousettus aegyptiacus. BMC Infect. Dis. 2009; 9: 159. https://doi.org/10.1186/1471-2334-9-159
- Towner J.S., Khristova M.L., Sealy T.K., Vincent M.J., Erickson B.R., Bawiec D.A., et al. Marburgvirus genomics and association with a large hemorrhagic fever outbreak in Angola. J. Virol. 2006; 80(13): 6497–516. https://doi.org/10.1128/jvi.00069-06
- Negredo A., Palacios G., Vázquez-Morón S., González F., Dopazo H., Molero F., et al. Discovery of an ebolavirus-like filovirus in Europe. PLoS Pathog. 2011; 7(10): e1002304. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1002304
- Yang X.L., Tan C.W., Anderson D.E., Jiang R.D., Li B., Zhang W., et al. Characterization of a filovirus (Měnglà virus) from Rousettus bats in China. Nat. Microbiol. 2019; 4(3): 390–5. https://doi.org/10.1038/s41564-018-0328-y
- He B., Feng Y., Zhang H., Xu L., Yang W., Zhang Y., et al. Filovirus RNA in fruit bats, China. Emerg. Infect. Dis. 2015; 21(9): 1675–7. https://doi.org/10.3201/eid2109.150260
- Maes P., Amarasinghe G.K., Ayllón M.A., Basler C.F., Bavari S., Blasdell K.R., et al. Taxonomy of the order Mononegavirales: second update 2018. Arch. Virol. 2019; 164(4): 1233–44. https://doi.org/10.1007/s00705-018-04126-4
- Towner J.S., Sealy T.K., Khristova M.L., Albarino C.G., Conlan S., Reeder S.A., et al. Newly discovered Ebola virus associated with hemorrhagic fever outbreak in Uganda. PLoS Pathog. 2008; 4(11): e1000212. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1000212
- Biedenkopf N, Bukreyev A, Chandran K, et al. Renaming of genera Ebolavirus and Marburgvirus to Orthoebolavirus and Orthomarburgvirus, respectively, and introduction of binomial species names within family Filoviridae. Arch Virol. 2023;168(8):220. Published 2023 Aug 3. doi: 10.1007/s00705-023-05834-2
- Newsweek. Touchberry R. Scientists warn New Ebola strain found in West Africa has potential to infect humans; 2018. Available at: https://newsweek.com/scientists-warn-new-ebola-strain-found-west-africa-has-potential-infect-1046701
- Kuhn J.H., Adkins S., Alioto D., Alkhovsky S.V., Amarasinghe G.K., Anthony S.J., et al. 2020 taxonomic update for phylum Negarnaviricota (Riboviria: Orthornavirae), including the large orders Bunyavirales and Mononegavirales. Arch. Virol. 2020; 165(12): 3023–72. https://doi.org/10.1007/s00705-020-04731-2
- Goldstein T., Anthony S.J., Gbakima A., Bird B.H., Bangura J., Tremeau-Bravard A., et al. The discovery of Bombali virus adds further support for bats as hosts of ebolaviruses. Nat. Microbiol. 2018; 3(10): 1084–9. https://doi.org/10.1038/s41564-018-0227-2
- Forbes K.M., Webala P.W., Jääskeläinen A.J., Abdurahman S., Ogola J., Masika M.M., et al. Bombali virus in Mops condylurus bat, Kenya. Emerg. Infect. Dis. 2019; 25(5): 955–7. https://doi.org/10.3201/eid2505.181666
- Karan L.S., Makenov M.T., Korneev M.G., Sacko N., Boumbaly S., Yakovlev S.A., et al. Bombali Virus in Mops condylurus Bats, Guinea. Emerg. Infect. Dis. 2019; 25(9): 1774–5. https://doi.org/10.3201/eid2509.190581
- Crameri G., Todd S., Grimley S., McEachern J.A., Marsh G.A., Smith C., et al. Establishment, immortalisation and characterisation of pteropid bat cell lines. PLoS One. 2009; 4(12): e8266. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0008266
- Jordan I., Munster V.J., Sandig V. Authentication of the R06E fruit bat cell line. Viruses. 2012; 4(5): 889–900. https://doi.org/10.3390/v4050889
- Hofmann-Winkler H., Kaup F., Pohlman S. Host cell factors in filovirus entry; novel players, new insights. Viruses. 2012; 4(12): 3336–62. https://doi.org/10.3390/v4123336
- Muller E.H., Obernoster G., Raaben M., Herbert A.S., Deffieu M.S., Krishnan A., et al. Ebola virus entry requires the host-programmed recognition of an intracellular recognition of an intracellular receptor. EMBO J. 2012; 31(8): 1947–60. https://doi.org/10.1038/emboj.2012.53
- He F., Melen K., Maljanen S., Lundberg R., Jiang M., Osterlund P., et al. Ebolavirus protein VP24 interferes with innate immune responses by inhibiting interferon-λ1 gene expression. Virology. 2017; 509: 23–34. https://doi.org/10.1016/j.virol.2017.06.002
- Guito J.C., Albarino C.G., Chakrabarti A.K., Towner J.S. Novel activities by ebolavirus and marburgvirus interferon antagonists revealed using a standardized in vitro reporter system. Virology. 2017; 501: 147–65. https://doi.org/10.1016/j.virol.2016.11.015
- Feagins A.R., Basler C.F. Lloviu virus VP24 and VP35 proteins function as innate immune antagonists in human and bat cells. Virology. 2015; 485: 145–52. https://doi.org/10.1016/j.virol.2015.07.010
- Woolsey C., Menicucci A.R., Cross R.W., Luthra P., Agans K.N., Borisevich V., et al. A VP35 mutant Ebola virus lacks virulence but can elicit protective immunity to wild-type virus challenge. Cell Rep. 2019; 28(12): 3032–46.e6. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2019.08.047
- Mustafa M.I., Shantier S.W., Abdelmageed M.I., Makhawi A.M. Epitope-based peptide vaccine against Bombali Ebolavirus viral protein 40: An immunoinformatics combined with molecular docking studies. Inform. Med. Unlocked. 2021; 25: 1–10. https://doi.org/10.1016/j.imu.2021.100694
- Сhen S., Dick J., Owen A.B. Consistency of Markov chain quasi-Monte Carlo on continuous state spaces. Ann. Stat. 2011; 39(2): 673–701. https://doi.org/10.1214/10-AOS831
Дополнительные файлы
