Особенности изменения уровня нейромедиаторов и маркеров нейродегенерации в головном мозге крыс с экспериментальной болезнью Паркинсона на фоне курсовой терапии стероидными гликоалкалоидами
- Авторы: Воронов В.А.1, Поздняков Д.И.1,2
-
Учреждения:
- Пятигорский медико-фармацевтический институт — филиал ФГБОУ ВO Волгоградский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения России
- Пятигорский государственный научно-исследовательский институт курортологии, филиал Федерального государственного бюджетного учреждения “Федеральный научно-клинический центр медицинской реабилитации и курортологии Федерального медико-биологического агентства”
- Выпуск: Том 41, № 2 (2024)
- Страницы: 147-152
- Раздел: Экспериментальные работы
- URL: https://journal-vniispk.ru/1027-8133/article/view/269944
- DOI: https://doi.org/10.31857/S1027813324020057
- EDN: https://elibrary.ru/ETIGEM
- ID: 269944
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Болезнь Паркинсона — хроническое нейродегенеративное заболевание, одним из патобиохимических проявлений которого является дисбаланс нейромедиаторов в головном мозге. Целью данной работы является исследование влияния гликоалкалоидов на изменение уровня нейромедиаторов и маркеров нейродегенерации головного мозга у крыс с экспериментальной болезнью Паркинсона. Болезнь Паркинсона моделировали у животных путем интрацеребрального введения ротенона. Исследуемые гликоалкалоиды вводили перорально в дозе 0.06 мг/кг, курсом в 28 дней после моделирования патологии. В ходе исследования установлено, что применение анализируемых гликоалкалоидов не влияло на концентрацию дофамина и серотонина, а также достоверно (p < 0.05) снижало уровень АХ на 35.9% и повышало уровень ГАМК на 55.1%, уменьшало концентрацию белка S100β на 68.6% и повышало уровень BDNF на 52.4%.
Ключевые слова
Полный текст
ВВЕДЕНИЕ
Болезнь Паркинсона — хроническое нейродегенеративное заболевание головного мозга, при котором происходит нарушение двигательной активности и развитие таких немоторных нарушений, как, например, снижение когнитивных функций. Несмотря на ведущиеся исследования роли различных факторов в этиологии и изучение звеньев патогенеза болезни Паркинсона, а также по разработке новых подходов к терапии, в настоящее время не существует методов лечения БП, а основной стратегией терапии является замедление прогрессирования заболевания [1]. Основной патогенеза БП является потеря дофаминергических нейронов в области компактной черной субстанции среднего мозга. В этой связи “золотым стандартом” терапии БП является леводопа — препарат, действие которого направлено на восполнение недостатка дофамина в головном мозге, что позволяет корректировать клинические проявления заболевания и улучшить качество жизни пациента [2]. К характерным для болезни Паркинсона биохимическим изменениям в мозге, кроме снижения уровня дофамина, относится недостаток “тормозных” нейромедиаторов, таких как ГАМК, а также избыток “возбуждающих” нейромедиаторов — ацетилхолина, серотонина и глутамата. Несмотря на доминирующую роль дофаминергической системы в БП нельзя не учитывать влияние иных нейромедиаторных систем на течение заболевания; так, при нарастании патохимических изменений, характерных для БП, большее значение приобретают симптомы, обусловленные поражением холинергической и других систем [3]. В связи с этим остается актуальным вопрос разработки новых подходов и терапевтических средств для лечения болезни Паркинсона, в том числе влияющих на моноаминергические нейромедиаторные механизмы [4, 5]. Целью данной работы является исследование влияния гликоалкалоидов Solanum Tuberosum L. на изменение уровня нейромедиаторов и маркеров нейродегенерации в ткани головного мозга у крыс с экспериментальной БП. Алкалоиды Solanum Tuberosum — соланин и чаконин содержатся в побегах и зеленых частях картофеля, и, как следствие, широко распространены по всему миру. Их особенностями является доступность и простота извлечения из растительного сырья. Ранние исследования показали наличие у соланина и чаконина М-холиноблокирующего эффекта, а также слабо выраженную активность в отношении ацетилхолинэстеразы [6]. Данный вид активности является предпосылкой для применения алкалоидов Solanum Tuberosum L. в качестве противопаркинсонического средства.
МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Используемые в ходе исследования гликоалкалоиды были выделены по описанной ранее схеме [6].
Для выполнения поставленной цели работа была подразделена на следующие этапы:
Определение острой токсичности гликоалкалоидов.
Изучение влияния гликоалкалоидов на уровень нейромедиаторов и маркеров нейродегенерации в головном мозге крыс в условиях экспериментальной болезни Паркинсона.
Для определения острой токсичности крысам самкам Wistar средним весом (300 ± 30) г (n = 10 для каждой дозы) вводили перорально, с помощью зонда, водный раствор алкалоидов, подкисленный уксусной кислотой до рН 6.5, в концентрациях 200 мг/мл (666.67 мг/кг), 100 мг/мл (333.33 мг/кг), 40 мг/мл (133.33 мг/кг), 20 мг/мл (66.67 мг/кг), 10 мг/мл (33.33 мг/кг), 5 мг/мл (16.67 мг/кг). Состояние крыс оценивали в течении суток, после чего рассчитывали LD50 методом пробит-анализа и терапевтическую дозу гликоалкалоидов.
Для исследования противопаркинсонической активности использовали 40 крыс самок Wistar весом (350 ± 50) г. Животные были получены из питомника лабораторных животных “Рапполово” и на время исследования содержались в помещениях вивария в контролируемых условиях: температура окружающего воздуха (22 ± 2)оС, относительная влажность (60 ± 5)%, при естественной смене суточного цикла и со свободным доступом к полнорационному корму и воде. Содержание и манипуляции с животными соответствовали положениям Директивы ЕС2010/63 “О защите животных, использующихся в научных целях”.
Крыс рандомизировали по массе тела на четыре группы по 10 животных в каждой: ложнооперированная (ЛО) группа; группа, не получавшая терапию, — негативный контроль (НК); группа, получавшая терапию препаратом сравнения, — прамипексол (производства “Тева Канада Лимитед”, Канада) в дозе 1 мг/кг [7]; группа, получавшая лечение исследуемыми веществами в дозе 1/300 от LD50. В качестве препарата сравнения был выбран прамипексол, так как данный лекарственный препарат один из широко применяемых и эффективных в клинической практике для терапии БП [8].
Для моделирования болезни Паркинсона была выбрана ротеноновая модель. Для этого крысам проводили стереотаксическую операцию при анестезии хлоралгидратом (Acros Organics, 350 мг/кг, внутрибрюшинно): в черепе просверливали отверстие, в правое полосатое тело вставляли канюлю, после чего животным всех групп, кроме ложнооперированной, вводили 4 мкл раствора ротенона (Sigma-Aldrich, США) в ДМСО в концентрации 5 мг/мл. Животным ложнооперированной группы вводили аналогичный объем физиологического раствора. Были использованы следующие стереотаксические координаты: AP + 0.4, ML-2.0 (от брегмы) и DV-3.3 ниже твердой мозговой оболочки. Эксперимент проводили спустя 14 дней формирования заболевания, согласно описанной в литературе методике [9].
В течении 28 дней крысы ежедневно получали пероральную терапию прамипексолом или алкалоидами. Для приготовления смеси для перорального введения готовили суспензию прамипексола в воде, а алкалоиды, ввиду низкой концентрации, растворяли в подкисленной уксусной кислотой до рН 6.7—6.9 воде. Спустя 28 дней введения животных выводили из эксперимента методом декапитации под хлоралгидратной анестезией. Вскрывали черепную коробку и извлекали головной мозг, из которого готовили гомогенат с 5 мл фосфатного буферного раствора (pH 7.4) в соотношении ткань — буферный раствор 1 : 7. Гомогенат головного мозга центрифугировали при 10000g в течение 10 мин, после чего в супернатанте определяли количество дофамина, серотонина, ацетилхолина, ГАМК. Для оценки степени выраженности нейродеструктивных процессов в супернатанте мозговой ткани оценивали содержание белка S100β и мозгового нейротрофического фактора (BDNF). Концентрацию нейромедиаторов и маркеров нейродегенерации оценивали методом ИФА с применением видоспецифичных реактивов Cloud Clone (CША). Ход анализа соответствовал таковому, прописанному в инструкции к каждому набору. Статистические отличия оценивали с помощью пакета программ Statistica 6.0 (StatSoft) при уровне значимости р < 0.05 методом ANOVA с пост-процессингом по Ньюмену—Кейлсу. Данные представлены в виде М ± SEM (среднее значение ± стандартная ошибка среднего).
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
В ходе оценки острой токсичности гликоалкалоидов было установлено, что введение животным алкалоидов в концентрациях 200 мг/мл (666.67 мг/кг) и 100 мг/мл (333.33 мг/кг) вызывало смерть в течение 3 ч. При некропсии выявлены множественные перфорации на всем протяжении желудочно-кишечного тракта и кровоизлияние в брюшной полости, что объясняется раздражающим действием гликоалкалоидов [10]. Введение алкалоидов в концентрациях 40 мг/мл (133.33 мг/кг), 20 мг/мл (66.67 мг/кг) и 10 мг/мл (33.33 мг/кг) приводило к параличу дыхательного центра и остановке дыхания, при этом наблюдалось скопление крови в легких. Наблюдение за животными, получившими раствор 5 мг/мл, показало, что состояние животных оставалось удовлетворительным на протяжении всего периода. При пересчете LD50 составила 16.67 мг/кг. Согласно СГС классификации (Нью-Йорк и Женева, 2011) исследуемые алкалоиды можно отнести ко 2-му классу пероральной токсичности. При расчете терапевтической дозы мы учитывали высокую биологическую активность алкалоидов и практическое применение низких терапевтических доз иных препаратов алкалоидов [11]. Исходя из полученных данных был проведен расчет терапевтической дозы, которую применяли в ходе дальнейших исследований. Для снижения возможных токсических эффектов терапевтическая доза составила 1/300 высшей суточной дозы, что составляет 0.06 мг/кг.
В результате исследования уровня нейромедиаторов головного мозга было выявлено снижение концентрации дофамина у группы НК относительно ЛО на 48.8% (p < 0.05), тогда как у группы крыс, получавших прамипексол, наблюдалось увеличение аналогичного показателя относительно группы НК на 32.3% (p < 0.05). При этом введение гликоалкалоидов не оказало существенного влияния на изменение уровня дофамина в головном мозге у крыс с экспериментальной БП.
Определение уровня серотонина позволило выявить увеличение его уровня у группы НК на 24.9% (p < 0.05) относительно ЛО, а также снижение у группы прамипексола на 13.4% (p < 0.05) относительно НК, тогда как у группы алкалоидов отсутствуют достоверные отличия относительно группы НК.
Количество ацетилхолина у группы НК повышено на 51.4% (p < 0.05) относительно ЛО. Применение прамипексола и алкалоидов способствовало снижению содержание АХ на 13.4% (p < 0.05) и 35.9% (p < 0.05) соответственно относительно НК (рис. 1).
Рис. 1. Влияние прамипексола и гликоалкалоидов на изменение концентрации нейромедиаторов в тканях головного мозга у крыс с болезнью Паркинсона. ▲ — достоверно относительно ЛО; ■ — достоверно относительно НК.
При отсутствии терапии происходило снижение уровня ГАМК у животных группы НК на 47.9% (p < 0.05) относительно ЛО крыс, тогда как применение прамипексола и алкалоидов повышало данный показатель на 33.5% (p < 0.05) и 55.1% (p < 0.05) соответственно относительно НК группы животных (см. рис. 1).
При анализе содержания белка S100β было выявлено его повышение у группы НК на 46.9% (p < 0.05) относительно ЛО, а также его снижение на фоне применения прамипексола и алкалоидов на 60.3% (p < 0.05) и 68.6% (p < 0.05) относительно НК группы соответственно.
Определение нейротрофического фактора BDNF позволило установить снижение данного показателя у группы НК на 58.9% (p < 0.05) относительно ЛО и повышение у групп крыс, получавших прамипексол и алкалоиды на 53.7% (p < 0.05) и 52.4 % (p < 0.05) относительно НК группы животных.
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
При нарастании характерных для болезни Паркинсона биохимических нарушений достоверно (p < 0.05) изменился уровень дофамина и серотонина у группы негативного контроля, относительно группы ложнооперированных животных: –48.8% и +24.9%. Применение прамипексола достоверно (p < 0.05) стабилизировало данные показатели, относительно группы негативного контроля (+32.3% и –13.4% соответственно), что согласуется с его механизмом действия [12]. В свою очередь, терапия алкалоидами не оказывала значительного эффекта на данное звено патогенеза БП, а достоверные отличия от группы негативного контроля не обнаружены.
В противовес этому алкалоиды нормализуют уровень АХ и ГАМК значимее (–35.9% и +55.1% относительно НК (p < 0.05)), чем препарат сравнения (–13.5% и +33.5% относительно НК). Снижение уровня АХ объясняется известной холиноблокирующей активностью соланина и чаконина в отношении М-холинорецепторов [6]: введение холинолитиков может приводить к снижению концентрации АХ в головном мозге [13]. Нельзя не отметить важную роль ГАМКергической нейротрансмиссии, связанной с ионами Ca2+, в поддержании гомеостаза как на клеточном, так и на системном уровне, что определяется работой ГАМК-В рецепторов. Активация ГАМКергической системы приводит к снижению притока ионов Ca2+, что положительно сказывается на кальций-индуцированном стрессе, снижает энергетические потребности клетки и корректирует митохондиальную дисфункцию, что, в свою очередь, снижает накопление интрацеребральных включений, в том числе телец Леви [14]. Таким образом, положительная динамика уровня ГАМК не только влияет на моторные нарушения, но и на течение болезни в целом. Полученная информация коррелирует с клиническим опытом лечения болезни Паркинсона [15].
При прогрессировании болезни Паркинсона происходит деградация нейронов головного мозга, что отражается повышенным уровнем белка S100β [16]: так, в наших экспериментах у группы НК этот показатель превышен более чем в пять раз (рис. 2). Существует прямая взаимосвязь между повышением уровня этого белка и гибелью нейронов [16]. Исходя из этого, можно делать выводы о том, что исследуемые гликоалкалоиды и препарат сравнения тормозили разрушение клеточных структур, так как приводили к значительному снижению уровня белка S100β (см. рис. 2).
Рис. 2. Влияние прамипексола и смеси соланина и чаконина на изменение концентрации белка S100β и субстанции BDNF в тканях головного мозга у крыс с болезнью Паркинсона. ▲ — достоверно относительно ЛО; ■ — достоверно относительно НК.
Гибель дофаминергических нейронов сопровождается снижением концентрации BDNF. Также данный нейротрофин предотвращает гибель клеток и поддерживает функцию пораженных нейронов при БП [17]. Сопоставимый уровень нейротрофического фактора головного мозга у групп, получавших терапию прамипексолом и алкалоидами, указывает на наличие нейропротекторного эффекта, а также позволяет предположить стимуляцию репаративных процессов в головном мозге животных с БП. Ранее уже проводились исследования относительно нейропротекторных эффектов прамипексола, которые связывают с его противовоспалительной активностью и усилением аутофагии [18].
Так как применение гликоалкалоидов приводит к схожему изменению уровня нейромедиаторов и маркеров нейродегенерации у животных с БП, то можно предположить их положительное влияние на моторные нарушения и наличие нейропротекторного эффекта. Возможно, моделирующее действие ГАМКергической системы оказывает некоторое влияние на уровни S100β и BDNF у группы животных, получавших терапию алкалоидами, однако маловероятно, что отдельно взятая система может оказывать столь выраженный протекторный эффект. Также остается открытым вопрос о механизмах, которые приводят к нормализации уровня ГАМК у животных, получавших терапию исследуемыми веществами. Литературные данные относительно фармакологической активности соланина и чаконина, а также потенциальных мишеней, недостаточны, ввиду чего можно предположить, что данные вещества обладают плейотропным действием, однако, данный вопрос требует дальнейших исследований.
ВЫВОДЫ
Применение алкалоидов Solanum Tuberosum L. в дозе 0.06 мг/кг в условиях экспериментальной БП нормализовало уровень АХ и ГАМК, а также значительно снижало уровень белка S100β и BDNF. Стоит отметить, что введение гликоалкалоидов не оказывало влияния на уровень дофамина и серотонина.
ИСТОЧНИК ФИНАНСИРОВАНИЯ
Внешнее финансирование отсутствует.
СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ НОРМ
Конфликт интересов. Авторы заявляют, что у них нет конфликта интересов.
Этическое одобрение. Все применимые международные, национальные и институциональные принципы ухода и использования животных были соблюдены. Настоящая статья не содержит каких-либо исследований с участием людей в качестве объектов исследований.
Об авторах
В. А. Воронов
Пятигорский медико-фармацевтический институт — филиал ФГБОУ ВO Волгоградский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения России
Автор, ответственный за переписку.
Email: a54545a@mail.ru
Россия, Пятигорск
Д. И. Поздняков
Пятигорский медико-фармацевтический институт — филиал ФГБОУ ВO Волгоградский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения России; Пятигорский государственный научно-исследовательский институт курортологии, филиал Федерального государственного бюджетного учреждения “Федеральный научно-клинический центр медицинской реабилитации и курортологии Федерального медико-биологического агентства”
Email: a54545a@mail.ru
Россия, Пятигорск; Пятигорск
Список литературы
- Church F.C. // Biomolecules. 2021. V. 11. № 4. P. 612. https://doi.org/10.3390/biom11040612
- Nawaz H., Sargent L., Quilon H., Cloud L.J., Testa C.M., Snider J.D., Lageman S.K., Baron M.S., Berman B.D., Zimmerman K., Price E.T., Mukhopadhyay N.D., Barrett M.J. // Parkinsons Dis. 2022. V. 12. № 2. P. 599—606. https://doi.org/10.3233/JPD-212769.
- Ершова М.В., Иванова Е.О., Иллариошкин С.Н. // 2018. № 1. С. 3—9.
- Seppi K., Ray Chaudhuri K., Coelho M., Fox S.H., Katzenschlager R., Perez Lloret S., Weintraub D., Sampaio C. & the collaborators of the Parkinson’s Disease Update on Non-Motor Symptoms Study Group on behalf of the Movement Disorders Society Evidence-Based Medicine Committee // Mov Disord. 2019. V. 34. № 2. P. 180—198. https://doi.org/10.1002/mds.27602
- Elsworth J.D. // Neural Transm. 2020. V. 127. № 5. P. 785—791. https://doi.org/10.1007/s00702-020-02167-1
- Воронов В.А., Поздняков Д.И., Золотых Д.С., Дайронас Ж.В., Черников М.В. // ВНМТ. 2023. Т. 30. № 1. С. 75—79.
- Mihaylova A., Doncheva N., Zlatanova H., Delev D., Ivanovska M., Koeva Y., Murdjeva M., Kostadinov I. // Basic Med Sci. 2021. V. 24. № 5. P. 577—585. https://doi.org/10.22038/ijbms.2021.50439.11488
- Катунина Е.А., Титова Н.В., Бездольный Ю.Н., Шиккеримов Р.К., Гасанов М.Г., Бурд С.Г., Лебедева А.В., Бойко А.Н. // Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2015. Т. 115. № 5. С. 34—40.
- Innos J., Hickey M.A. // Chem Res Toxicol. 2021. V. 34. № 5. P. 1223—1239. https://doi.org/10.1021/acs.chemrestox.0c00522
- Бухтиярова И.П., Калиушко В.Р. // Научно-практические аспекты развития АПК: Материалы национальной научной конференции. 2021. Часть 1. С. 135—138.
- Кузьмин О.Б., Жежа В.В., Бучнева Н.В., Ландарь Л.Н. // Артериальная гипертензия. 2022. Т. 28. № 5. С. 600—608.
- Singh R., Parmar M. // StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2023.
- Dagaev S.G., Kosmachev A.B., Soloveva N.E., Filko O.A., Sanotskii V.I., Dolgo-Saburov V.B. // Bull Exp Biol Med. 2004. V. 137. № 2. P. 164-6. https://doi.org/10.1023/b:bebm.0000028130.09656.ac
- Błaszczyk J.W. // Front Neurosci. 2016. № 10. P. 269. https://doi.org/10.3389/fnins.2016.00269.
- Connolly B.S., Lang A.E. // JAMA. 2014. V. 311. № 16. P. 1670-83. https://doi.org/10.1001/jama.2014.3654.
- Michetti F., D’Ambrosi N., Toesca A., Puglisi M.A., Serrano A., Marchese E., Corvino V., Geloso M.C. // Neurochem. 2019. V. 148. № 2. P. 168—187. https://doi.org/10.1111/jnc.14574
- Palasz E., Wysocka A., Gasiorowska A., Chalimoniuk M., Niewiadomski W., Niewiadomska G. // Mol Sci. 2020. V. 21. № 3. P. 1170. https://doi.org/10.3390/ijms21031170
- Dong A.Q., Yang Y.P., Jiang S.M., Yao X.Y., Qi D., Mao C.J., Cheng X.Y., Wang F., Hu L.F., Liu C.F. // Acta Pharmacol Sin. 2023. V. 44. № 1. P. 32—43. https://doi.org/10.1038/s41401-022-00951-1
Дополнительные файлы
