Современные воззрения на ранние этапы фолликулогенеза и механизмы формирования преждевременной недостаточности яичников
- Авторы: Марченко Л.А.1, Машаева Р.И.1, Чернуха Г.Е.1
-
Учреждения:
- ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России
- Выпуск: Том 22, № 5 (2020)
- Страницы: 57-60
- Раздел: ОБЗОР
- URL: https://journal-vniispk.ru/2079-5831/article/view/42428
- DOI: https://doi.org/10.26442/20795696.2020.5.200440
- ID: 42428
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Яичник – уникальная структура женского организма, в которой одновременно представлены различные морфогистологические единицы – от примордиальных до доминантных фолликулов. В последние десятилетия внимание ученых направлено на изучение механизмов фолликулогенеза на гонадотропин-зависимой стадии. В то время как более сложные и продолжительные процессы, определяющие судьбу фолликула, происходят от момента их рекрутирования до преантральной стадии зрелости (около 290 дней), до доминантной зрелости проходит еще 60 дней. В настоящее время доказано, что внутри фолликула устанавливается межклеточная коммуникация, предполагающая двунаправленный обмен информацией между ооцитом и его «компаньонами» – гранулезными и тека-клетками посредством ауто- и паракринных взаимодействий c помощью различных генов, факторов роста и цитокинов. Цель обзора – изучить интрафолликулярные факторы, контролирующие ранние этапы фолликулогенеза, и их нарушения, которые в конечном счете могут привести к развитию преждевременной недостаточности яичников.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Лариса Андреевна Марченко
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России
Email: l.a.marchenko@yandex.ru
д-р мед. наук, проф., вед. науч. сотр. отд-ния гинекологической эндокринологии ФГБУ «НМИЦ АГП им. акад. В.И. Кулакова»
Россия, МоскваРоза Истановна Машаева
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России
Автор, ответственный за переписку.
Email: mashaevarosa@gmail.com
аспирант отд-ния гинекологической эндокринологии ФГБУ «НМИЦ АГП им. акад. В.И. Кулакова»
Россия, МоскваГалина Евгеньевна Чернуха
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России
Email: g_chernukha@oparina4.ru
д-р мед. наук, проф., ФГБУ «НМИЦ АГП им. акад. В.И. Кулакова»
Россия, МоскваСписок литературы
- Адамян Л.В., Дементьева В.О., Смольникова В.Ю. и др. Новые возможности хирургии в восстановлении утраченных функций яичников при преждевременной недостаточности яичников у женщин репродуктивного возраста. Доктор.ру. 2019; 11 (166): 44–9. [Adamian L.V., Dement’eva V.O., Smol’nikova V.Iu. et al. Novye vozmozhnosti khirurgii v vosstanovlenii utrachennykh funktsii iaichnikov pri prezhdevremennoi nedostatochnosti iaichnikov u zhenshchin reproduktivnogo vozrasta. Doktor.ru. 2019; 11 (166): 44–9 (in Russian).]
- Williams CJ, Erickson GF. Morphology and Physiology of the Ovary. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK278951/
- Зубарев И.В. Роль хронических поражений печени матери в нарушении становления эндокринной и репродуктивной функции яичников потомства в условиях эксперимента. Автореф. дис. … канд. биол. наук. Оренбург, 2012. [Zubarev I.V. Rol’ khronicheskikh porazhenii pecheni materi v narushenii stanovleniia endokrinnoi i reproduktivnoi funktsii iaichnikov potomstva v usloviiakh eksperimenta. Avtoref. dis. … kand. biol. nauk. Orenburg, 2012 (in Russian).]
- Choi JK, Agarwal P, Huang H et al. The crucial role of mechanical heterogeneity in regulating follicle development and ovulation with engineered ovarian microtissue. Biomaterials 2014; 35 (19): 5122–8.
- Faddy MJ, Gosden R. A mathematical model of follicle dynamics in the human ovary. Hum Reprod 1995; 10 (4): 770–5.
- Wallace WHB, Kelsey TW. Human ovarian reserve from conception to the menopause. PloS One 2010; 5 (1): e8772.
- The ESHRE Guideline Group on POI, Webber L, Davies M, Anderson R et al. ESHRE Guideline: management of women with premature ovarian insufficiency. Hum Reprod 2016; 31 (5): 926–37. doi: 10.1093/humrep/dew027
- Tingen C, Kim A, Woodruff TK. The primordial pool of follicles and nest breakdown in mammalian ovaries. Mol Hum Reprod 2009; 15 (12): 795–803.
- Ford EA, Beckett EL, Roman SD et al. Advances in human primordial follicle activation and premature ovarian insufficiency. Reproduction 2020; 159 (1): R15–29.
- Штаут М.И., Курило Л.Ф. Состав соматических и половых клеток гонад человека в пре- и постнатальный период. Онтогенез. 2019; 2: 127–40. [Shtaut M.I., Kurilo L.F. Sostav somaticheskikh i polovykh kletok gonad cheloveka v pre- i postnatal’nyi period. Ontogenez. 2019; 2: 127–40 (in Russian).]
- Ye H, Zheng T, Li W et al. Ovarian Stem Cell Nests in Reproduction and Ovarian Aging. Cell Physiol Biochem 2017; 43 (5): 1917–25.
- De Felici M, Klinger FG, Farini D et al. Establishment of oocyte population in the fetal ovary: primordial germ cell proliferation and oocyte programmed cell death. Reprod BioMed Online 2005; 10 (2): 182–91.
- Grive KJ, Freiman RN. The developmental origins of the mammalian ovarian reserve. Development 2015; 142 (15): 2554–63.
- Suzuki N, Yoshioka N, Takae S et al. Successful fertility preservation following ovarian tissue vitrification in patients with primary ovarian insufficiency. Hum Reprod 2015; 30 (3): 608–15.
- Borum K. Oogenesis in the mouse: A study of the meiotic prophase. Exp Cell Res 1961. 24 (3): 495–507.
- Ideta A, Yamashita S, Seki-Soma M et al. Generation of exogenous germ cells in the ovaries of sterile NANOS3-null beef cattle. Sci Rep 2016; 6 (1): 1–9.
- Rehnitz J, Alcoba DD, Brum IS et al. FMR1 and AKT/mTOR signalling pathways: potential functional interactions controlling folliculogenesis in human granulosa cells. Reprod BioMed Online 2017; 35 (5): 485–93.
- Боровая Т.Г. Половая система. Руководство по гистологии. СПб.: СпецЛит, 2011; с. 398–425. [Borovaia T.G. The reproductive system. Histology guide. Saint Petersburg: SpetsLit, 2011; p. 398–425 (in Russian).]
- Gougeon A. Dynamics of follicular growth in the human: a model from preliminary results. Hum Reprod 1986; 1 (2): 81–7.
- Sanfins A, Rodrigues P, Albertini DF. GDF-9 and BMP-15 direct the follicle symphony. J Assist Reprod Genet 2018; 35 (10): 1741–50.
- Dalman A, Totonchi M, Valojerdi M. Human Ovarian Theca-Derived Multipotent Stem Cells Have The Potential To Differentiate Into Oocyte-Like Cells In Vitro. Cell J 2019; 20 (4): 527–36.
- Hao X, Anastácio A, Liu K et al. Ovarian Follicle Depletion Induced by Chemotherapy and the Investigational Stages of Potential Fertility-Protective Treatments – A Review. Int J Mol Sci 2019; 20 (19): 4720.
- Wang J-J, Ge W, Liu J-C et al. Complete in vitro oogenesis: retrospects and prospects. Cell Death Differ 2017; 24 (11): 1845–52.
- Sonigo C, Beau I, Binart N et al. Anti-Müllerian Hormone in Fertility Preservation: Clinical and Therapeutic Applications. Clin Med Insights Reprod Health 2019; 13.
- Каменицкий И.С. Выявление факторов формирования фолликулов в яичниках детей: кисспептина, рецептора кисспептина, ароматазы, рецептора антимюллерова гормона. СПб.: 2017. [Kamenitsky I.S. Identification of follicular formation factors in the ovaries of children: kisspeptin, kisspeptin receptor, aromatase, anti-Müllerian hormone receptor. Saint Petersburg, 2017 (in Russian).]
- Cheng Y, Kawamura K, Takae S et al. Oocyte-derived R-spondin2 promotes ovarian follicle development. FASEB J 2013; 27 (6): 2175–84.
- Jagarlamudi K, Rajkovic A. Oogenesis: Transcriptional regulators and mouse models. Mol Cell Endocrinol 2011; 356: 31–9.
- Kawashima I, Kawamura K. Regulation of follicle growth through hormonal factors and mechanical cues mediated by Hippo signaling pathway. Syst Biol Reprod Med 2018; 64 (1): 3–11.
- Williams CJ, Erickson GF. Morphology and Physiology of the Ovary. 2012 Jan 30. In: Feingold KR, Anawalt B, Boyce A (Eds.) Endotext. South Dartmouth (MA): MDText.com, Inc., 2000.
- Марченко Л.А., Машаева Р.И. Клинико-лабораторная оценка овариального резерва с позиции репродуктолога. Акушерство и гинекология. 2018; 8. [Marchenko L.A., Mashaeva R.I. Kliniko-laboratornaia otsenka ovarial’nogo rezerva s pozitsii reproduktologa. Akusherstvo i ginekologiia. 2018; 8 (in Russian).]
- Skinner MK. Regulation of Primordial Follicle Assembly and Development. Hum Reprod Update 2005; 11 (5): 461–71.
- Steinkampf MP, Mendelson CR, Simpson ER. Effects of Epidermal Growth Factor and Insulin-like Growth Factor I on the Levels of mRNA Encoding Aromatase Cytochrome P-450 of Human Ovarian Granulosa Cells. Mol Cell Endocrinol 1988; 59 (1–2): 93–9.
- Ipsa E, Cruzat VF, Kagize JN et al. Growth Hormone and Insulin-Like Growth Factor Action in Reproductive Tissues. Front Endocrinol 2019; 10: 777.
- Hsueh AJW, Kawamura K, Cheng Y et al. Intraovarian Control of Early Folliculogenesis. Endocrine Rev 2015; 36 (1): 1–24.
- Денисенко М.В., Курцер М.А., Курило Л.Ф. Динамика формирования фолликулярного резерва яичников. Андрология и генитальная хирургия. 2016; 17 (2): 20–8. [Denisenko M.V., Kurtser M.A., Kurilo L.F. Trends in the formation of the ovarian follicular reserve. Andrology and Genital Surgery. 2016; 17 (2): 20–8 (in Russian).]
- Taghavi SA, Ashrafi M, Mehdizadeh M et al. Toll-like receptors expression in follicular cells of patients with poor ovarian response. Int J Fertil Steril 2014; 8 (2): 183–92.
- Dupont J, Scaramuzzi RJ. Insulin signalling and glucose transport in the ovary and ovarian function during the ovarian cycle. Biochem J 2016; 473 (11): 1483–501.
- Sreerangaraja Urs DB, Wu W-H, Komrskova K et al. Mitochondrial Function in Modulating Human Granulosa Cell Steroidogenesis and Female Fertility. Int J Mol Sci 2020. 21 (10): 3592.
- Ganesan S, Keating AF. Ovarian mitochondrial and oxidative stress proteins are altered by glyphosate exposure in mice. Toxicol Appl Pharmacol 2020; 402: 115116.
- Czuchlej SC, Volonteri MC, Scaia MF, Ceballos NR. Characterization of StAR protein of Rhinella arenarum (Amphibia, Anura). Gen Comp Endocrinol 2020; 295: 113535.
- Selvaraj V, Stocco DM, Clark BJ. Current knowledge on the acute regulation of steroidogenesis. Biol Reprod 2018; 99 (1): 13–26.
- Papadopoulos V, Aghazadeh Y, Fan J et al. Translocator protein-mediated pharmacology of cholesterol transport and steroidogenesis. Mol Cell Endocrinol 2015; 408: 90–8.
- Lounas A, Vernoux N, Germain M et al. Mitochondrial sub-cellular localization of cAMP-specific phosphodiesterase 8A in ovarian follicular cells. Sci Rep 2019; 9 (1): 1–10.
- Sugiura K, Su Y-Q, Diaz FJ et al. Oocyte-derived BMP15 and FGFs cooperate to promote glycolysis in cumulus cells. Development 2007; 134 (14): 2593.
- Park M, Shin E, Won M et al. FOXL2 Interacts with Steroidogenic Factor-1 (SF-1) and Represses SF-1-Induced CYP17 Transcription in Granulosa Cells. Mol Endocrinol 2010; 24 (5): 1024–36.
- Baker SJ, Spears N. The role of intra-ovarian interactions in the regulation of follicle dominance. Hum Reprod Update 1999; 5 (2): 153–65.
Дополнительные файлы
