Xerotolerant microorganisms-producers of exopolysaccharides and potential of their use in agricultural technologies

Cover Page

Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription Access

Abstract

Agricultural land degradation is a significant environmental problem on a global scale, aggravated by global climate change and large-scale use of mineral fertilizers. One of the promising solutions to this problem is the development and active introduction into practice of “microbial fertilizers” that stimulate the growth of agricultural plants and ensure the functions of retaining moisture and nutrients in the soil. The most important property of such microorganisms is the ability to produce exopolysaccharides (EPS) with high hygroscopicity, sorption and barrier properties. Currently, microbial EPS have found wide application in various fields of human activity, but their use in agricultural technology is still limited. Among the most promising producers of EPS for agricultural purposes, one can distinguish a large group of xerotolerant prokaryotes that are able to actively develop at low water activity in the environment and use EPS production as the main mechanism of protection against drying and salt stress. In this review, we summarize the available information on EPS producers for agricultural purposes and assess the potential of using arid ecosystems to search for and isolate new xerotolerant EPS producers that are promising for developing agricultural technologies for sustainable agriculture in regions with arid climates. We pay special attention to the poorly studied xerotolerant microbial communities of arid ecosystems in Central Asia.

About the authors

K. V. Kondrasheva

Institute of Microbiology of the Academy of Sciences of the Republic of Uzbekistan

Tashkent, 100128, Uzbekistan

M. M. Yakimov

Institute of Polar Research, CNR

Messina, 98122, Italy

V. L. La Cono

Institute of Polar Research, CNR

Messina, 98122, Italy

S. N. Gavrilov

S.N. Winogradsky Institute of Microbiology, Federal Research Center of Biotechnology of the Russian Academy of Sciences

Email: sngavrilov@gmail.com
Moscow, 117312, Russia

S. V. Kalenov

Department of Biotechnology, D.I. Mendeleyev University of Chemical Technology of Russia

Moscow, 125480, Russia

M. B. Tozhieva

Institute of Microbiology of the Academy of Sciences of the Republic of Uzbekistan

Tashkent, 100128, Uzbekistan

K. D. Davranov

Institute of Microbiology of the Academy of Sciences of the Republic of Uzbekistan

Tashkent, 100128, Uzbekistan

References

  1. Кузиев К. Ф. Региональные особенности развития сельского хозяйства в Узбекистане в условиях дефицита водных ресурсов // Региональная экономика: теория и практика. 2018. Т. 16. С. 711–723. https://doi.org/10.24891/re.16.4.711
  2. Мадалиев Т. А., Косимов М. Г., Абролов А. А. Биоразведка бактерий-продуцентов экзополисахаридов из различных природных экосистем для синтеза биополимеров из барды // Universum: химия и биология: электрон. научн. журн. 2020. Т. l. № 12 (78). https://7universum.com/ru/nature/archive/item/10996
  3. Мягкова Н. В. Экологические аспекты изменения климата в Узбекистане // Universum: Технические науки: электрон. научн. журн. 2019. Т. 2 (59).
  4. Национальный доклад о состоянии окружающей среды: Узбекистан. Международный институт устойчивого развития. Министерство экологии, охраны окружающей среды и изменения климата Республики Узбекистан. 2023/ https://www.iisd.org/system/files/2024-02/uzbekistan-state-of-the-environment-ru.pdf
  5. Патент РФ. 2025. № 2835165.
  6. Черных Н. А., Меркель А. Ю., Кондрашева К. В., Алимов Ж. Э., Клюкина А. А., Бонч-Осмоловская Е.А., Слободкин А. И., Давранов К. Д. У берегов исчезающего моря: микробные сообщества Арала и южного Приаралья // Микробиология. 2024. Т. 93. С. 3‒16. https://doi.org/10.31857/S0026365624010035
  7. Chernyh N. A., Merkel A. Y., Kondrasheva K. V., Alimov J. E., Klyukina A. A., Bonch-Osmolovskaya E.A., Slobodkin A. I., Davranov K. D. At the shores of a vanishing sea: microbial communities of Aral and Southern Aral Sea region // Microbiology (Moscow). 2024. V. 93. Р. 1–13. https://doi.org/10.1134/S0026261723602944
  8. Adessi A., de Carvalho R. C., De Philippis R., Branquinho C., da Silva J. M. Microbial extracellular polymeric substances improve water retention in dryland biological soil crusts // Soil Biol. Biochem. 2018. V. 116. Р. 67–69.
  9. An H., Li Q. L., Yan X., Wu X. Z., Liu R. T., Fang Y. Desertification control on soil inorganic and organic carbon accumulation in the topsoil of desert grassland in Ningxia, northwest China // Ecol. Eng. 2019. V. 127. Р. 348–355.
  10. Ankita G., Diksha S., Moumita Ch., Rai J. P.N. Mechanism and application of bacterial exopolysaccharides: an advanced approach for sustainable heavy metal abolition from soil // Carbohydr. Res. 2024. V. 544. Art. 109247. https://doi.org/10.1016/j.carres.2024.109247
  11. Arias S., del Moral A., Ferrer M. R., Tallon R., Quesada E., Béjar V. Mauran, an exopolysaccharide produced by the halophilic bacterium Halomonas maura, with a novel composition and interesting properties for biotechnology // Extremophiles. 2003. V. 7. Р. 319–326. https://doi.org/10.1007/s00792-003-0325-8
  12. Balducci E., Papi F., Capialbi D. E., Del Bino L. Polysaccharides’ structures and functions in biofilm architecture of antimicrobial-resistant (AMR) pathogens // Int. J. Mol. Sci. 2023. V. 24. Art. 4030. https://doi.org/10.3390/ijms24044030
  13. Banerjee A., Sarkar S., Govil T., González-Faune P., Cabrera-Barjas G., Bandopadhyay R., Salem D. R., Sani R. K. Extremophilic exopolysaccharides: biotechnologies and wastewater remediation // Front. Microbiol. 2021. V. 12. Art. 721365. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.721365
  14. Barrientos-Sanhueza C., Cargnino-Cisternas D., Díaz-Barrera A., Cuneo I. F. Bacterial alginate-based hydrogel reduces hydro-mechanical soil-related problems in agriculture facing climate change // Polymers. 2022. V. 14. Art. 922. https://doi.org/10.3390/polym14050922
  15. Battista J. R. Against all odds: the survival strategies of Deinococcus radiodurans // Annu. Rev. Microbiol. 1997. V. 51. Р. 203–224. https://doi.org/10.1146/annurev.micro.51.1.203
  16. Berezina O. V., Rykov S. V., Schwarz W. H., Liebl W. Xanthan: enzymatic degradation and novel perspectives of applications // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2024. V. 108. Art. 227. https://doi.org/10.1007/s00253-024-13016-6
  17. Berninger T., Dietz N., González López Ó. Water-soluble polymers in agriculture: xanthan gum as eco-friendly alternative to synthetics // Microb. Biotechnol. 2021. V. 14. P. 1881–1896. https://doi.org/10.1111/1751-7915.13867
  18. Bowker G. E., Gillette D. A., Bergametti G., Marticorena B., Heist D. K. Sand flux simulations at a small scale over a heterogeneous mesquite area of the northern Chihuahuan Desert // J. Appl. Meteorol. Climatol. 2007. V. 46. Р. 1410–1422.
  19. Cao S. Why large-scale afforestation efforts in China have failed to solve the desertification problem // Environ. Sci. Technol. 2008. V. 42. Р. 1826–1831. https://doi.org/10.1021/es0870597.
  20. Cao S., Chen L., Shankman D., Wang C., Wang X., Zhang H. Excessive reliance on afforestation in China’s arid and semi-arid regions: lessons in ecological restoration // Earth-Sci. Rev. 2011. V. 104. Р. 240–245.
  21. Cao H., Du Y., Gao G., Rao L., Ding G., Zhang Y. Afforestation with Pinus sylvestris var. mongolica remodelled soil bacterial community and potential metabolic function in the Horqin Desert // Glob. Ecol. Conserv. 2021. V. 29. Art. e01716.
  22. Cao R., Zhang Y., Ju Y., Wang W., Zhao Y., Liu N., Zhang G., Wang X., Xie X., Dai C., Liu Y., Yin H., Shi K., He C., Wang W., Zhao L., Jeon C. O., Hao L. Exopolysaccharide-producing bacteria enhanced Pb immobilization and influenced the microbiome composition in rhizosphere soil of pakchoi (Brassica chinensis L.) // Front. Microbiol. 2023. V. 14. Art. 1117312. https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1117312
  23. Chambi D., Soto L. A.R., Villca R., Orozco F. Exopolysaccharides production by cultivating a bacterial isolate from the hypersaline environment of salar De Uyuni (Bolivia) in pretreatment liquids of steam-exploded quinoa stalks and enzymatic hydrolysates of curupaú sawdust // Fermentation. 2021. V. 7. Art. 33. https://doi.org/10.3390/fermentation7010033
  24. Chaudhari V., Buttar H. S., Bagwe-Parab S., Tuli H. S., Vora A., Kaur G. Therapeutic and industrial applications of curdlan with overview on its recent patents // Front. Nutr. 2021. V. 28. Art. 646988. https://doi.org/10.3389/fnut.2021.646988
  25. Chenard C., Lauro F. M. Microbial Ecology of extreme environments / Eds. Chenard C., Lauro F. M. 2017. Springer: Switzerland. 245 P. http://dx.doi.org/10.1007/978-3-319-51686-8
  26. Choi S. M., Rao K. M., Zo S. M., Shin E. J., Han S. S. Bacterial cellulose and its applications // Polymers (Basel). 2022. V. 14. Art. 1080. https://doi.org/10.3390/polym14061080
  27. Claus D., Hempel W. Specific substrates for isolation and differentiation of Azotobacter vinelandii // Arch. Mikrobiol. 1970. V. 73. P. 90–96. https://doi.org/10.1007/bf00409955
  28. Díaz-Montes E. Dextran: sources, structures, and properties // Polysaccharides. 2021. V. 2. P. 554–565. https://doi.org/10.3390/polysaccharides2030033
  29. D’Odorico P., Bhattachan A., Davis K. F., Ravi S., Runyan C. W. Global desertification: drivers and feedbacks // Adv. Water Resour. 2013. V. 51. P. 326–344. https://doi.org/10.1016/j.advwatres.2012.01.013
  30. Dyksterhouse S. E., Gray J. P., Herwig R. P., Lara J. C., Staley J. T. Cycloclasticus pugetii gen. nov., sp. nov., an aromatic hydrocarbon-degrading bacterium from marine sediments // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 1995. V. 45. Р. 116–123.
  31. Egamberdieva D., Wirth S., Bellingrath-Kimura D.S., Mishra J., Arora N. K. Salt-tolerant plant growth promoting rhizobacteria for enhancing crop productivity of saline soils // Front. Microbiol. 2019. V. 10. Art. 2791.
  32. Feng Q., Ma H., Jiang X., Wang X., Cao S. What has caused desertification in China? // Sci. Rep. 2015. V. 5. Art. 15998.
  33. Gan L., Huang X., He Zh., He T. Exopolysaccharide production by salt-tolerant bacteria: recent advances, current challenges, and future prospects // Int. J. Biol. Macromol. 2024. V. 264. Art. 130731. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2024.130731
  34. Guan X., Huang J. Constructing semi-arid ecological barriers to prevent desertification // The Innovation Geoscience. 2024. V. 2. Art. 100067. https://doi.org/10.59717/j.xinn-geo.2024.100067
  35. Ghosh A., Sah D., Chakraborty M., Rai J. P.N. Mechanism and application of bacterial exopolysaccharides: an advanced approach for sustainable heavy metal abolition from soil // Carbohydr. Res. 2024. V. 544. Art. 109247. https://doi.org/10.1016/j.carres.2024.109247
  36. Hernández-Canseco J., Bautista-Cruz A., Sánchez-Mendoza S., Aquino-Bolaños T., Sánchez-Medina P.S. Plant growth-promoting halobacteria and their ability to protect crops from abiotic stress: an eco-friendly alternative for saline soils // Agronomy. 2022. V. 12. Art. 804.
  37. IPCC2019: Zhu S., Cai B., Fang S., Zhu J., Gao Q. The development and influence of IPCC guidelines for national greenhouse gas inventories // In annual report on actions to address climate change (2019) Climate risk prevention. Singapore: Springer Nature Singapore, 2023. P. 233–246.
  38. Isfahani F. M., Tahmourespour A., Hoodaji M., Ataabadi M., Mohammadi A. Characterizing the new bacterial isolates of high yielding exopolysaccharides under hypersaline conditions // J. Clean. Prod. 2018. V. 185. P. 922–928. https://doi.org/10.1016/j.jclepro.2018.03.030
  39. Kaur N., Dey P. Bacterial exopolysaccharides as emerging bioactive macromolecules: from fundamentals to applications // Res. Microbiol. 2022. V. 29. Art. 104024. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2022.104024
  40. Khalid M. Y., Arif Z. U. Novel biopolymer-based sustainable composites for food packaging applications: a narrative review // Food Packag. Shelf Life. 2022. V. 33. Art. 100892. https://doi.org/10.1016/j.fpsl.2022.100892
  41. Kharangate-Lad A., Bhosle S. Characterization of bioemulsifying EPS from Halobacillus trueperi MXM-16, a halophilic adhered bacterial isolate from the mangrove ecosystem // J. Basic Microbiol. 2022. V. 62. Р. 1446–1456.
  42. Knowles E. J., Castenholz R. W. Effect of exogenous extracellular polysaccharides on the desiccation and freezing tolerance of rock-inhabiting phototrophic microorganisms // FEMS Microbiol. Ecol. 2008. V. 66. P. 261–270. https://doi.org/10.1111/j.1574-6941.2008.00568.x
  43. Kulonov A., Mirzarakhmetova D., Turaeva N. Obtaining of bacterial polysaccharides // Chem. Chemic. Eng. 2020. V. 4. Art. 11. https://doi.org/10.51348/YOTA9343
  44. Lalebeigi F., Alimohamadi A., Afarin S., Aliabadi H. A.M., Mahdavi M., Farahbakhshpour F., Hashemiava N., Khandani K. K., Eivazzadeh-Keihan R., Maleki A. Recent advances on biomedical applications of gellan gum: a review // Carbohydr. Polym. 2024. V. 15. Art. 122008. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2024.122008
  45. Lan S., Wu L., Zhang D., Hu C. Assessing level of development and successional stages in biological soil crusts with biological indicators // Microb. Ecol. 2013. V. 66. P. 394–403.
  46. Leang C., Malvankar N. S., Franks A. E., Nevin K. P., Lovley D. R. Engineering Geobacter sulfurreducens to produce a highly cohesive conductive matrix with enhanced capacity for current production // Energy Environ. Sci. 2013. V. 6. P. 1901–1908.
  47. Lebre P. H., De Maayer P., Cowan D. A. Xerotolerant bacteria: surviving through a dry spell // Nat. Rev. Microbiol. 2017. V. 15. P. 285–296. https://doi.org/10.1038/nrmicro.2017
  48. Li X. R., Xiao H. L., He M. Z., Zhang J. G. Sand barriers of straw checkerboards for habitat restoration in extremely arid desert regions // Ecol. Eng. 2006. V. 28. № 2. Р. 149–157.
  49. Lin Sh.M., Chan Y. B., Jung J. H., Kim W. S., Song H. Y., Lee J.H., Ji H. J., Yong Z., Bo S. K., Bahn Y. S., Ho S. S., Lim S. Antioxidant Activities of an Exopolysaccharide (DeinoPol) Produced by the Extreme Radiation-Resistant Bacterium Deinococcus radiodurans // Sci. Rep. 2020. V. 10: 55. https://doi.org/10.1038/s41598-019-56141-3
  50. Liu X., Yao T. Types, synthesis pathways, purification, characterization, and agroecological physiological functions of microbial exopolysaccharides: A review // Int. J. Biol. Macromol. 2024. V. 281. № 3: 136317. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2024.136317
  51. Liu L., Liu Y., Li J., Du G., Chen J. Microbial production of hyaluronic acid: current state, challenges, and perspectives // Microb. Cell Fact. 2011. V. 16. № 10:99. https://doi.org/10.1186/1475-2859-10-99
  52. López-Ortega M.A., Chavarría-Hernández N., López-Cuellar M.A. del R., Rodríguez-Hernández A.I. A review of extracellular polysaccharides from extreme niches: An emerging natural source for the biotechnology. From the adverse to diverse // Int. J. Biol. Macromol. 2021. V. 177. P. 559–577. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2021.02.101
  53. Mager D. M., Thomas A. D. Extracellular polysaccharides from cyanobacterial soil crusts: A review of their role in dryland soil processes // J. Arid Environ. 2011. V. 75. P. 91–97. https://doi.org/10.1016/j.jaridenv.2010.10.001
  54. Mata J. A., Béjar V., Bressollier P., Tallon R., Urdaci M. C., Quesada E., Llamas I. Characterization of exopolysaccharides produced by three moderately halophilic bacteria belonging to the family Alteromonadaceae // J. Appl. Microbiol. 2008. V. 105. №2. P. 521–528. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2008.03789.x
  55. Naseem H., Ahsan M., Shahid M. A., Khan N. Exopolysaccharides producing rhizobacteria and their role in plant growth and drought tolerance // J. Basic Microbiol. 2018. V. 58. № 12: 100922. https://doi.org/10.1002/jobm.201800309
  56. Nazli F., Jamil M., Hussain A., Hussain T. Exopolysaccharides and indole-3-acetic acid producing Bacillus safensis strain FN13 potential candidate for phytostabilization of heavy metals // Environ. Monit. Assess., 2020. V. 192 P. 1–16.
  57. Netrusov A. I., Liyaskina E. V., Kurgaeva I. V., Liyaskina A. U., Yang G., Revin V. V. Exopolysaccharides producing bacteria: a review // Microorganisms. 2023. V. 9. Art. 1541. https://doi.org/10.3390/microorganisms11061541
  58. Nicolaus B., Kambourova M., Oner E. T. Exopolysaccharides from extremophiles: from fundamentals to biotechnology // Environ. Technol. 2010. V. 31. P. 1145–1158. https://doi.org/10.1080/09593330903552094
  59. Niu X., Song L., Xiao Y., Ge W. Drought-tolerant plant growth-promoting rhizobacteria associated with foxtail millet in a semi-arid agroecosystem and their potential in alleviating drought stress // Front. Microbiol. 2018. V. 8. Art. 2580. https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.02580
  60. Paul S., Parvez S. S., Goswami A., Banik A. Exopolysaccharides from agriculturally important microorganisms: conferring soil nutrient status and plant health // Int. J. Biol. Macromol. 2024. V. 262. Art. 129954. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2024.129954
  61. Qi M., Zheng C., Wu W., Yu G., Wang P. Exopolysaccharides from marine microbes: source, structure and application // Mar. Drugs. 2022. V. 20. Art. 512. https://doi.org/10.3390/md20080512
  62. Remminghorst U., Rehm B. H. Bacterial alginates: from biosynthesis to applications // Biotechnol. Lett. 2006. V. 28. P. 1701–1712. https://doi.org/10.1007/s10529-006-9156-x
  63. Reynolds J. F., Smith D. M.S., Lambin E. F., Turner B., Mortimor, M., Batterbury S. P., Herrick J. E. Global desertification: building a science for dryland development // Science. 2007. V. 316. Р. 847–851.
  64. Riseh R. S., Fathi F., Vatankhah M., Kennedy J. F. Exploring the role of levan in plant immunity to pathogens: a review // Int. J. Biol. Macromol. 2024. V. 279. Art. 135419. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2024.135419
  65. Rollefson J. B., Stephen C. S., Tien M., Bond D. R. Identification of an extracellular polysaccharide network essential for cytochrome anchoring and biofilm formation in Geobacter sulfurreducens // J. Bacteriol. 2011. V. 193. Art. 1023–1033. https://doi.org/10.1128/JB.01092-10
  66. Romano I., Giordano A., Lama L., Nicolaus B., Gambacorta A. Halomonas campaniensis sp. nov., a haloalkaliphilic bacterium isolated from a mineral pool of Campania Region, Italy // Syst. Appl. Microbiol. 2005. V. 28. P. 610–618. https://doi.org/10.1016/j.syapm.2005.03.010
  67. Rossi F., De Philippis R. Role of cyanobacterial exopolysaccharides in phototrophic biofilms and in complex microbial mats // Life. 2015. V. 5. P. 1218–1238. https://doi.org/10.3390/life5021218
  68. Ruiz V. V., Luzania R. A.C., Cota F. I.P., Santoyo G., de los Santos Villalobos S. Extracellular polymeric substances from agriculturally important microorganisms // Microbial polymers: applications and ecological perspectives / Eds. Vaishnav A., Choudhary D. K. Singapore: Springer Nature Singapore Pte Ltd., 2021. P. 217–234.
  69. Saha I., Datta S., Biswas D. Exploring the role of bacterial extracellular polymeric substances for sustainable development in agriculture // Curr. Microbiol. 2020. V. 77. P. 3224–3239. https://doi.org/10.1007/s00284-020-02169-y
  70. Saravanan K., Vellingiri K., Kathirvel P. Screening of multi-metal tolerant plant growth promoting bacteria (PGPB) Stutzerimonas stutzeri WA4 and its assistance on phytoextraction of heavy metals (Cu, Ag and Pb) // Int. J. Phytoremed. 2025. V. 27. P. 505–525. https://doi.org/10.1080/15226514.2024.2427384
  71. Souii A., Hammami K., Ouertani R., Zidi O., Chouchane H., Sghaier H., Masmoudi A. S., Cherif A., Neifar M. Eco-waste of Posidonia oceanica as a reservoir for halophilic cellulolytic bacteria with potentialities for plant growth promotion and waste bioconversion // Biomass Conv. Bioref. 2025. V. 15. P. 8073–8089. https://doi.org/10.1007/s13399-024-05497-2
  72. Stevenson A., Cray J. A., Williams J. P., Santos R., Sahay R., Neuenkirchen N., McClure C.D., Grant I. R., Houghton J. D., Quinn J. P., Timson D. J., Patil S. V., Singhal R. S., Antón J., Dijksterhuis J., Hocking A. D., Lievens B., Rangel D. E., Voytek M. A., Gunde-Cimerman N., Oren A., Timmis K. N., McGenity T.J., Hallsworth J. E. Is there a common water-activity limit for the three domains of life? // ISME J. 2015. V. 9. P. 1333–1351. https://doi.org/10.1038/ismej.2014.219
  73. Sunita K., Mishra I., Mishra J., Prakash J., Arora N. Secondary metabolites from halotolerant plant growth promoting rhizobacteria for ameliorating salinity stress in plants // Front. Microbiol. 2020. V. 11. Art. 567768.
  74. Sutherland I. W. Bacterial exopolysaccharides // Adv. Microb. Physiol. 1972. V. 8. P. 143–213. https://doi.org/10.1016/S0065-2911(08)60190-3
  75. Talbi C., Elmarrkechy S., Youssfi M., Bouzroud S., Belfquih M., Sifou A., Bouhaddou N., Badaoui B., Balahbib A., Bouyahya A., Bourais I. Bacterial exopolysaccharides: from production to functional features // Progr. Microbes Mol. Biol. 2023. V. 6. № 1. https://doi.org/10.36877/pmmb.a0000384
  76. Upadhyaya Ch., Patel H., Patel I., Upadhyay T. Extremophilic exopolysaccharides: bioprocess and novel applications in 21st century // Fermentation. 2025. V. 11. Art. 16. https://doi.org/10.3390/fermentation11010016
  77. Vardharajula S., Shaik Z. A. Exopolysaccharide production by drought tolerant Bacillus spp. and effect on soil aggregation under drought stress // J. Microbiol. Biotechnol. Food Sci. 2014. V. 4. Р. 51–57. https://doi.org/10.15414/jmbfs.2014.4.1.51-57
  78. Wang L., D’Odorico P. The limits of water pumps // Science. 2008. V. 321. P. 36‒37.
  79. Wang J., Salem D. R., Sani R. K. Extremophilic exopolysaccharides: a review and new perspectives on engineering strategies and applications // Carbohydr. Polym. 2019. V. 5. P. 8–26. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2018.10.011
  80. Yakimov M. M., Timmis K. N., Wray V., Fredrickson H. L. Characterization of a new lipopeptide surfactant produced by thermotolerant and halotolerant subsurface Bacillus licheniformis BAS50 // Appl. Environ. Microbiol. 1995. V. 61. Р. 1706–1713.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2025 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».