Estimation of the Contribution of Size-Fractionated Phytoplankton in the Kara Sea to Primary Production and Chlorophyll a for Different Seasons

Cover Page

Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription Access

Abstract

Based on the data obtained during 7 expeditions (2017–2023) to the Kara Sea, seasonal variation in the contribution of phytoplankton size groups to the total values of primary production (PP) and chlorophyll a (Chl) are examined for the first time. Micro- and nanophytoplankton (MPh+NPh) (> 3 µm) dominated in the community composition during the entire ice-free period (June–October). Its predominance was especially noticeable during the spring “bloom” immediately after first-year sea-ice retreat (up to 97% for PP and up to 93% for Chl). The role of picophytoplankton (PPh) (< 3 µm) increased in summer (July, August) (up to 50% for PP and up to 44% for Chl) and decreased by the end of the growing season (September, October). Seasonal variation in the size composition of phytoplankton during the growing season was determined mainly by variability in water temperature and incoming solar radiation. The contribution of PPh to total Chl increased (up to 51%) at the depths of the deep chlorophyll maximum in July and August. The assimilation activity of PPh was higher than that of MPh+NPh in July–September, with an increase in its contribution to the total PP and Chl. For the first time, annual PP of the phytoplankton size groups in the Kara Sea was assessed, 8 ТgС (65%) for MPh+NPh and 5 ТgС (35%) for PPh.

About the authors

A. B. Demidov

Shirshov Institute of Oceanology Russian Academy of Science

Author for correspondence.
Email: demspa@rambler.ru
Russian Federation, Moscow

T. A. Belevich

Lomonosov Moscow State University

Email: demspa@rambler.ru

Faculty of Biology

Russian Federation, Moscow

E. V. Eremeeva

Shirshov Institute of Oceanology Russian Academy of Science

Email: demspa@rambler.ru
Russian Federation, Moscow

A. S. Tiurina

Shirshov Institute of Oceanology Russian Academy of Science

Email: demspa@rambler.ru
Russian Federation, Moscow

O. V. Vorobieva

Lomonosov Moscow State University; Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanograph

Email: demspa@rambler.ru

Faculty of Biology

Russian Federation, Moscow; Moscow

V. A. Artemiev

Shirshov Institute of Oceanology Russian Academy of Science

Email: demspa@rambler.ru
Russian Federation, Moscow

J. O. Pronina

Shirshov Institute of Oceanology Russian Academy of Science

Email: demspa@rambler.ru
Russian Federation, Moscow

M. V. Flint

Shirshov Institute of Oceanology Russian Academy of Science

Email: demspa@rambler.ru
Russian Federation, Moscow

References

  1. Белевич Т.А., Ильяш Л.В., Демидов А.Б., Флинт М.В. Распределение пикофитопланктона на Обском разрезе и в западной части Карского моря // Океанология. 2019. Т. 59. № 6. С. 964–973. https://doi.org/10.31857/S0030-1574596964-973
  2. Белевич Т.А., Милютина И.А., Демидов А.Б., Флинт М.В. Весенний пикофитопланктон Карского моря // Океанология. 2022. Т. 62. № 5. С. 743–753. https://doi.org/10.31857/S0030157422050021
  3. Демидов А.Б., Гагарин В.И., Еремеева Е.В. и др. Вертикальная изменчивость первичной продукции и хлорофилла в Карском море в середине лета: вклад подповерхностных максимумов в интегральные величины // Океанология. 2021. Т. 61. № 5. С. 737–752. https://doi.org/10.31857/S003015742105004X
  4. Демидов А.Б., Сергеева В.М., Гагарин В.И. и др. Первичная продукция и хлорофилл размерных групп фитопланктона Карского моря в период схода сезонного льда // Океанология. 2022. Т. 62. № 3. С. 403–415. https://doi.org/10.31857/S0030157422030030
  5. Демидов А.Б., Шеберстов С.В., Гагарин В.И. Оценка годовой величины первичной продукции Карского моря // Океанология. 2018. Т. 58. № 3. С. 391–403. https://doi.org/10.7868/S003015741803005X
  6. Демидов А.Б., Шеберстов С.В., Гагарин В.И., Хлебопашев П.В. Сезонная изменчивость первичной продукции фитопланктона Карского моря по спутниковым данным // Океанология. 2017. Т. 57. № 1. С. 103–117. https://doi.org/10.7868/S0030157417010026
  7. Acevedo-Trejos E., Brandt G., Merico A., Lan Smith S. Biogeographical patterns of phytoplankton community size structure in the oceans // Glob. Ecol. Biogeogr. 2013. V. 22. P. 1060–1070.
  8. Agawin N.S.R., Duarte C.M., Agush S. Nutrient and temperature control of the contribution of picoplankton biomass and production // Limnol. Oceanogr. 2000. V. 45. № 3. P. 591–600.
  9. Ardyna M., Babin M., Gosselin M. et al. Parameterization of vertical chlorophyll a in the Arctic Ocean: impact of the subsurface chlorophyll maximum on regional, seasonal and annual primary production estimates // Biogeosciences. 2013. V. 10. № 3. P. 1345–1399.
  10. Ardyna M., Gosselin M., Michel C. et al. Environmental forcing of phytoplankton community structure and function in the Canadian High Arctic: contrasting oligotrophic and eutrophic regions. Mar. Ecol. Prog. Ser. 2011. V. 442. P. 37–57.
  11. Arrigo K.R., van Dijken G.L. Continued increases in Arctic Ocean primary production // Progr. Oceanogr. 2015. V. 136. P. 60–70.
  12. Bouman H., Platt T., Sathyendranath S., Stuart V. Dependence of light-saturated photosynthesis on temperature and community structure // Deep-Sea Res. I. 2005. V. 52. P. 1284–1299. https://doi.org/10.1016/j.dsr.2005.01.008.
  13. Brown J.H., Gillooly J.F., Allen A.P. et al. Toward a metabolic theory of ecology // Ecology. 2004. V. 85. P. 1771–1789.
  14. Brown Z.W., Lowry K.E., Palmer M.A. et al. Characterizing the subsurface chlorophyll a maximum in the Chukchi Sea and Canada Basin // Deep-Sea Res. II. 2015. V. 118. P. 88–104.
  15. Brugel S., Nozais C., Poulin M. et al. Phytoplankton biomass and production in the southeastern Beaufort Sea in autumn 2002 and 2003 // Mar. Ecol. Progr. Ser. 2009. V. 377. P. 63–77.
  16. Cermeño O.P., Estévez-Blanco P., Marañón E., Fernandez E. Maximum photosynthetic efficiency of size-fractionated phytoplankton assessed by 14C uptake and fast repetition rate fluorometry // Limnol. Oceanogr. 2005. V. 50. № 5. P. 1438–1446.
  17. Chisholm S.W. Phytoplankton size. In: Falkowski P.G., Woodhead A.D. (Eds.), Primary Productivity and Biogeochemical Cycles in the Sea. New York: Springer, 1992. P. 213–237.
  18. Cota G.F., Pomeroy L.R., Harrison W.G. et al. Nutrients, primary production and microbial heterotrophy in the southeastern Chukchi Sea: Arctic summer nutrient depletion and heterotrophy // Mar. Ecol. Progr. Ser. 1996. V. 135. P. 247–258.
  19. Cullen J.J. Subsurface chlorophyll maximum layers: enduring enigma or mystery solved? // Annu. Rev. Mar. Sci. 2015. V. 7. P. 207–239.
  20. Demidov A.B., Belevich T.A., Sheberstov S.V. Optimal Assimilation Number of Phytoplankton in the Siberian Seas: Spatiotemporal Variability, Environmental Control and Estimation using a Region-Specific Model // J. Mar. Sci. Eng. 2023. V. 11. № 522. https://doi.org/10.3390/jmse11030522
  21. Demidov A.B., Gagarin V.I., Vorobieva O.V. et al. Spatial and vertical variability of primary production in the Kara Sea in July and August 2016: The influence of the river plume and subsurface chlorophyll maxima // Pol. Biol. 2018. V. 41. № 3. P. 563–578. https://doi.org/10.1007/s00300-017-2217-x
  22. Demidov A.B., Kostyleva A.V., Artemiev V.A. et al. Vertical distribution of primary production and chlorophyll a in the eastern Kara Sea: Relations with river plume effects in late summer and autumn // Cont. Shelf Res. 2024. https://doi.org/10.1016/j.csr.2024.105176
  23. Demidov A.B., Mosharov S.A., Makkaveev P.N. Patterns of the Kara Sea primary production in autumn: Biotic and abiotic forcing of subsurface layer // J. Mar. Sys. 2014. V. 132. P. 130–149.
  24. Demidov A., Sukhanova I., Belevich T. et al. Size-fractionated surface phytoplankton in the Kara and Laptev seas: environmental control and spatial variability // Mar. Ecol. Progr. Ser. 2021. V. 664. P. 59–77. doi.org/10.3354/meps13652
  25. Estrada M., Bayer-Giraldi M., Felipe J. et al. Light and nutrient effects on microbial communities collected during spring and summer in the Beaufort Sea // Aquat. Microb. Ecol. 2009. V. 54. P. 217–231. https://doi.org/10.3354/ame01268
  26. Falkowski P.G., Stone D.P. Nitrate Uptake in Marine Phytoplankton: Energy Sources and the Interaction with Carbon Fixation // Mar. Biol. 1975. V. 32. P. 77–84.
  27. Finkel Z.V. Does phytoplankton cell size matter? The evolution of modern marine food webs. In: Falkowski P.G, Knoll A.H (Eds.) Evolution of Aquatic Photoautotrophs. San Diego, Academic Press: 2007. P. 333–350.
  28. Finkel Z.V., Beardall J., Flynn K.J. et al. Phytoplankton in a changing world: cell size and elemental stoichiometry. J. Plankton Res. 2010. V. 32. P. 119–137.
  29. Goldman J.C., McCarthy J.J., Peavey D.G. Growth rate influence on the chemical composition of phytoplankton in oceanic waters // Nature. 1979. V. 279. P. 210–215. https://doi.org/10.1038/279210a0.
  30. Grasshoff K., Kremling K., Ehrhardt M. Methods of seawater analysis, 3rd edn. New York: Wiley, 1999.
  31. Harrison W.G., Cota G.F. Primary production in polar waters: relation to nutrient availability // Polar Res. 1991. V. 10. P. 87–104. https://doi.org/10.3402/polar.v10i1.6730.
  32. Holmes R.M., McClelland J.W., Peterson B.J. et al. Seasonal and annual fluxes of nutrients and organic matter from large rivers to the Arctic Ocean and surrounding seas // Estuaries and Coasts. 2012. V. 35. P. 369–382.
  33. Holm-Hansen O., Lorenzen C.J., Holmes R.W., Strickland J.D.H. Fluorometric determination of chlorophyll // J. Cons. Perm. Int. Explor. Mer. 1965. V. 30. P. 3–15.
  34. Holm-Hansen O., Riemann B. Chlorophyll a determination: improvements in methodology // Oikos. 1978. V. 30. P. 438–447.
  35. Iserles A. A First Course in the Numerical Analysis of Differential Equations // Cambridge University Press, 2009, 459 p.
  36. Kahru M., Lee Z., Mitchell B.G., Nevison Cynthia D. Effects of sea ice cover on satellite-detected primary production in the Arctic Ocean // Biol. Lett. 2016. V. 12. https://doi.org/10.1098/rsbl.2016.0223
  37. Kameda T., Ishizaka J. Size-fractionated primary production estimated by a two-phytoplankton community model applicable to ocean color remote sensing // J. Oceanogr. 2005. V. 61. P. 663–672.
  38. Kim Y., Youn S-H., Oh H-J. et al. Seasonal Compositions of Size-Fractionated Surface Phytoplankton Communities in the Yellow Sea // J. Mar. Sci. Eng. 2022. V. 10. https://doi.org/10.3390/jmse10081087
  39. Kostadinov T.S., Siegel D.A., Maritorena S. Global variability of phytoplankton functional types from space: assessment via the particle size distribution // Biogeosciences. 2010. V. 7. P. 3239–3257.
  40. Kremer C.T., Thomas M.K., Litchman E. Temperature- and size-scaling of phytoplankton population growth rates: Reconciling the Eppley curve and the metabolic theory of ecology // Limnol. Oceanogr. 2017. V. 62. P. 1658–1670. https://doi.org/10.1002/lno.10523.
  41. Kudryavtseva E., Kravchishina M., Pautova L. et al. Sea ice as a factor of primary production in the European Arctic: phytoplankton size classes and carbon fluxes // J. Mar. Sci. Eng. 2023. V. 11. https://doi.org/10.3390/jmse11112131
  42. Le Quéré C., Harrison S.P., Prentice I.C. et al. Ecosystem dynamics based on plankton functional types for global ocean biogeochemistry models. Glob. Change. Biol. 2005. V. 11. P. 2016–2040.
  43. Li W.K.W., McLaughlin F.A., Lovejoy C., Carmack E.C. Smallest algae thrive as the Arctic Ocean freshens // Science. 2009. V. 326. P. 539.
  44. Lee S.H., Ryu J., Lee D. et al. Spatial variations of small phytoplankton contributions in the northern Bering Sea and the southern Chukchi Sea. GIScience Remote Sens. 2019. V. 56. P. 794–810. https://doi.org/10.1080/15481603.2019.1571265
  45. Lee S.H., Yun M.S., Jang H.K. et al. Size-differential photosynthetic traits of phytoplankton in the Chukchi Sea // Cont. Shelf Res. 2023. V. 255. https://doi.org/10.1016/j.csr.2023.104933
  46. Lewis K.M., van Dijken G.L., Arrigo K.R. Changes in phytoplankton concentration now drive increased Arctic Ocean primary production // Science. 2020. V. 369. P. 198–202. https://doi.org/10.1126/science.aay8380
  47. Lohrenz S.E. Estimation of primary production by the simulated in situ method // ICES mar. Sci. Symp. 1993. V. 197. P. 159–171.
  48. Lyngsgaard M.M., Markager S., Richardson K. How well does chlorophyll explain the seasonal variation in phytoplankton activity? // Estuaries and Coasts. 2017. V. 40. P. 1263–1275. https://doi.org/10.1007/s12237-017-0215-4
  49. Makkaveev P.N. The total alkalinity in the anoxic waters of the Black sea and in sea-river mixture zones. Intergovernmental Oceanographic Commission. Joint IOC-JGOFS CO2 Advisory Panel Meeting. Seven Session. Annex V. UNESCO, 1998.
  50. Marañón E. Phytoplankton size structure. In: Steele, J. H., Turekian, K., Thorpe, S. A. (Eds.), Encyclopedia of Ocean Sciences. Academic Press, Oxford: 2009.
  51. Marañón E. Cell size as a key determinant of phytoplankton metabolism and community structure // Annu. Rev. Mar. Sci. 2015. V. 7. P. 241–64. https://doi.org/10.1146/annurev-marine-010814-015955
  52. Marañón E., Cermeño P., Latasa M., Tadonléké R.D. Temperature, resources, and phytoplankton size structure in the ocean // Limnol. Oceanogr. 2012. V. 57. № 5. P. 1266–1278. https://doi.org/10.4319/lo.2012.57.5.1266
  53. Martin J., Tremblay J.-E., Gagnon J. et al. Prevalence, structure and properties of subsurface chlorophyll maxima in Canadian Arctic waters // Mar. Ecol. Progr. Ser. 2010. V. 412. P. 69–84.
  54. Mei Z.P., Legendre L., Gratton Y. et al. Phytoplankton production in the North Water Polynya: size-fractions and carbon fluxes, April to July 1998 // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2003. V. 256. P. 13–27.
  55. Millero F.J. Thermodynamics of the carbon dioxide system in oceans // Geochim. et Cosmochim. Acta. 1995. V.59. № 4. P. 661–677.
  56. Moschonas G., Gowen R.J., Paterson R.F. et al. Nitrogen dynamics and phytoplankton community structure: the role of organic nutrients // Biogeochemistry. 2017. V. 134. P. 125–145. https://doi.org/10.1007/s10533–017–0351–8.
  57. Mousing E.A, Ellegaard M., Richardson K. Global patterns in phytoplankton community size structure – evidence for a direct temperature effect // Mar. Ecol. Progr. Ser. 2014. V. 497. P. 25–38.
  58. Mousing E.A., Richardson K., Ellegaard M. Global patterns in phytoplankton biomass and community size structure in relation to macronutrients in the open ocean // Limnol. Oceanogr. 2018. V. 63. P. 1298–1312.
  59. Moran X.A.G., Lopez-Urrutia A., Calvo-Diaz A., Li W.K.W. Increasing importance of small phytoplankton in a warmer ocean // Glob. Change Biol. 2010. V. 16. P. 1137–1144.
  60. Mouw C.B, Ciochetto A.B, Yoder J.A. A satellite assessment of environmental controls of phytoplankton community size structure // Global Biogeochem. Cycles. 2019. V. 33. P. 540–558.
  61. Nair A., Sathyendranath S., Platt T. et al. Remote sensing of phytoplankton functional types // Remote Sens. Environ. 2008. V. 112. P. 3366–3375.
  62. Pesant S., Legendre L., Gosselin M. et al. Size-differential regimes of phytoplankton production in the Northeast Water Polynya (77° – 81° N) // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1996. V. 142. P. 75–86.
  63. Roy S., Sathyendranath S., Bouman H., Platt T. The global distribution of phytoplankton size spectrum and size classes from their light-absorption spectra derived from satellite data // Remote Sens. Environ. 2013. V. 139. P. 185–197.
  64. Richardson K., Bendtsen J., Kragh T., Mousing E.A. Constraining the distribution of photosynthetic parameters in the global ocean // Front. Mar. Sci. 2016. V. 3. № 269. https://doi.org/10.3389/fmars.2016.00269
  65. Richardson K., Markager S., Buch E. et al. Seasonal distribution of primary production, phytoplankton biomass and size distribution in the Greenland Sea // Deep-Sea Res. I. 2005. V. 52. P. 979–999.
  66. Robinson A., Bouman H.A., Tilstone G.H., Sathyendranath S. Size class dependent relationships between temperature and phytoplankton photosynthesis-irradiance parameters in the Atlantic Ocean // Front. Mar. Sci. 2018. V.4. № 435. https://doi.org/10.3389/fmars.2017.00435
  67. Schloss I.R., Nozais C., Mas S. et al. Picophytoplankton and nanophytoplankton abundance and distribution in the southeastern Beaufort Sea (Mackenzie Shelf and Amundsen Gulf) during Fall 2002 // J. Mar. Sys. 2008. V. 74. P. 978–993. https://doi.org/10.1016/j.jmarsys.2008.01.004
  68. Shiomoto A., Inoue K. Seasonal variations of size-fractionated chlorophyll a and primaryproduction in the coastal area of Hokkaido in the Okhotsk Sea // SN Applied Sciences. 2020. V. 2. https://doi.org/10.1007/s42452-020-03739-2
  69. Sieburth J.M., Smetacek V., Lenz J. Pelagic ecosystem structure: heterotrophic compartments of the plankton and their relationship to plankton size fractions // Limnol. Oceanogr. 1978. V. 23. P. 1256–1263. https://doi.org/10.1002/lno.11768
  70. Simo-Matchim A.G, Gosselin M., Blais M. et al. Seasonal variations of phytoplankton dynamics in Nunatsiavut fjords (Labrador, Canada) and their relationships with environmental conditions // J. Mar. Sys. 2016. V. 156. P. 56–75.
  71. Song H., Ji R., Jin M. et al. Strong and regionally distinct links between ice-retreat timing and phytoplankton production in the Arctic Ocean // Limnol. Oceanogr. 2021. V. 66. P. 2498–2508.
  72. Steemann Nielsen E. The use of radioactive carbon (C14) for measuring organic production in the sea // J. Cons. Perm. Ins. Explor. Mer. 1952. № 18. P. 117–140.
  73. Steemann Nielsen E. Experimental methods for measuring organic production in the sea // Rapp. P.-v. Réun. Cons. perm. int. Explor. Mer. 1958. V. 144. P. 38–46.
  74. Ting C.A.I., Qiang H.A.O., Youcheng B.A.I. et al. Variability of size-fractionated chlorophyll a in the high-latitude Arctic Ocean in summer 2020 // Adv. Polar Sci. 2022. V. 33. № 3. P. 253–266. https://doi.org/10.13679/j.advps.2021.0056
  75. Tiselius P., Belgrano A., Andersson L., Lindahl O. Primary productivity in a coastal ecosystem: a trophic perspective on a long-term time series // J. Plankton Res. 2016. V. 38. № 4. P. 1092–1102. https://doi.org/10.1093/plankt/fbv094.
  76. Tremblay J.-È., Robert D., Varela D.E. et al. Current state and trends in Canadian Arctic marine ecosystems: I. Primary production // Climatic Change. 2012. V. 115. Is. 1. P. 161–178. https://doi.org/10.1007/s10584-012-0496-3
  77. Uitz J., Claustre H., Gentili B., Stramski D. Phytoplankton class‐specific primary production in the world’s oceans: Seasonal and interannual variability from satellite observations // Global Biogeochem. Cycles. 2010. V. 24. https://doi.org/10.1029/2009GB003680
  78. Uitz J., Huot Y., Bruyant F. et al. Relating phytoplankton photophysiological properties to community structure on large scales // Limnol. Oceanogr. 2008. V. 53. № 2. P. 614–630.
  79. Vaulot D., Eikrem W., Viprey M., Moreau H. The diversity of small eukaryotic phytoplankton (< 3 µm) in marine ecosystems // FEMS Microbiol. Rev. 2008. V. 32. P. 795–820.
  80. Yun M.S., Chung K.H., Zimmerman S. et al. Phytoplankton productivity and its response to higher light levels in the Canada Basin // Pol. Biol. 2012. V. 35. P. 257–268.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2024 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».