Anti-Influenza activity of compounds derived from medicinal plants (Part I)

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

This review (I part) presents an analysis of publications devoted to the ant-viral antiinfluenza activity of medicinal plants. It has shown that 63 species are found to be promising sources for obtaining anti-influenza drugs. Their roots, stems, leaves and fruits contain different chemical compounds inhibiting reproduction of influenza virus, both in vitro and in vivo. These compounds have different mechanisms of action. Some of them act upon components of the viral particle, others upon signaling pathways in the host cells. The first part of our review focuses on 28 species.

Full Text

Грипп, являющийся высоко контагиозным вирусным заболеванием, до сих пор остается актуальной и опасной инфекцией во всем мире. Все больше работ посвящено появлению новых мутаций вируса гриппа, приводящих к резистентности ко многим используемым противовирусным химиотерапевтическим средствам. В настоящее время для терапии гриппозной инфекции широко применяются этиотропные препараты, относящиеся к трем классам: блокаторы М2-каналов (“Амантадин” и “Ремантадин”), ингибиторы нейраминидазы и ингибиторы РНК-полимеразы. “Амантадин” и “Ремантадин” в низких концентрациях взаимодействуют с участком на N-конце трансмембранного домена молекулы М2 белка и блокируют функцию протонного канала, препятствуя разборке вирусной частицы при эндоцитозе. При высоких концентрациях эти препараты ингибируют конформационные изменения в молекуле гемагглютинина, необходимые для слияния вирусной и эндосомальной мембран за счет повышения рН внутри эндосомы [1]. Ингибиторы нейраминидазы, осельтамивир фосфат (“Тамифлю”) и занамивир (“Реленза”), блокируют нейраминидазную активность, предотвращая выход и распространение вирусных частиц [2]. Ингибиторы полимеразы, рибавирин (“Виразол”/“Ребетол”) и балоксавир марбоксил (“Ксофлюза”), блокируют репликацию вируса, воздействуя на эндонуклеазную функцию полимеразного комплекса [3]. Однако высокая вариабельность генома вирусов гриппа дает им возможность приобретать резистентность к уже имеющимся препаратам. Так, все эпидемически актуальные штаммы вируса гриппа резистентны к блокаторам М2-канала, а в 2019 г. были зафиксированы случаи резистентности к балоксавиру марбоксилу, разрешенному для клинического применения в 2018 г. [4]. Кроме того, у этих препаратов есть и другие недостатки – это узкая специфичность, токсичность и высокая стоимость. Учитывая все вышеперечисленное, поиск и разработка новых и эффективных средств природного происхождения для терапии гриппозной инфекции являются актуальными.

Препараты на основе растительного сырья, издавна используемые человеком, не потеряли своей актуальности и в настоящее время. Они широко используются в современной медицине наряду с синтетическими и имеют ряд преимуществ: низкая токсичность, высокая эффективность, широкий спектр действия. Очень велики возможности комплексного применения лекарственных средств растительного происхождения, т.к. лекарственные растения в своем большинстве совместимы между собой, и при сочетании лекарственных растений часто проявляется синергизм их действия.

В настоящее время широко исследуется противовирусная активность экстрактов и биологически активных веществ, полученных из лекарственных растений.

ЛЕКАРСТВЕННЫЕ РАСТЕНИЯ, ОБЛАДАЮЩИЕ ПРОТИВОГРИППОЗНОЙ АКТИВНОСТЬЮ

Вайда красильная (Isatis indigotica Fortune), лекарственное растение из семейства Крестоцветных (Brassicaceae), широко используется в традиционной китайской медицине. Листья (Follium Isatidis) и корень (Radix Isatidis) вайды применяют для профилактики и лечения различных воспалительных и инфекционных заболеваний (грипп, паротит, эпидемический энцефалит В, эпидемический миелит и др.). Алкалоиды индиготин и индирубин, присутствующие в этом растении, обладают гепатопротекторным, противомикробным и противоопухолевым действием [5]. Помимо алкалоидов I. indigotica содержит множество других классов соединений, таких как органические кислоты, лигнаны, нуклеозиды, стероиды и аминокислоты. Противогриппозными свойствами, в основном, обладают соединения, выделенные из корня вайды красильной: клемастанин В, эпигоитрин, индирубин и эруковая кислота. Клемастанин В in vitro ингибирует репродукцию разных подтипов вируса гриппа человека и птиц. Мишенью для этого соединения являются ранние стадии жизненного цикла вируса: эндоцитоз и “раздевание” вирусной частицы. Кроме того, было показано, что клемастанин В нарушает процесс ядерного экспорта вРНП (вирусного рибонуклеопротеина) в клетках, инфицированных вирусом гриппа A/PR/8/34 (H1N1), возможно за счет воздействия на отдельные компоненты сигнальных путей клетки хозяина [6]. Другое соединение, выделенное из вайды красильной, алкалоид эпигоитрин, приводит к невосприимчивости мышей к вирусу гриппа подтипа H1N1. Так, у животных, получавших это вещество в дозах 88 мг/кг и 176 мг/кг, отмечалось снижение смертности и титров вируса в легких. Механизм действия этого соединения заключается в его взаимодействии с компонентами противовирусного митохондриального пути. Эпигоитрин снижает экспрессию белка MFN-2 (митофузина-2) и увеличивает экспрессию MAVS (митохондриального противовирусного сигнального белка), что приводит к повышению продукции IFN-β (интерферона-β) и IFITM3 (интерферон-индуцируемого мембранного белка 3) [7]. Похожим механизмом действия обладает и другой алкалоид I. indigotica, индирубин [8]. Не менее интересно с фармакологической точки зрения еще одно вещество, содержащееся в корнях вайды – эруковая кислота. Ее противогриппозный эффект заключается в снижении транскрипционной активности вирусной РНК-полимеразы. Она также обладает противовоспалительным механизмом действия. Блокируя NF-κB и p38 MAPK- сигнальные пути за счет снижения транскрипционной активности ISGF-3 (IFN-стимулируемого генетического фактора 3 типа), эруковая кислота ингибирует синтез провоспалительных цитокинов IL-6 (интерлейкина-6), TNF-α (фактора некроза опухоли-α), IL-10 (интерлейкин-10), IL-8 (интерлейкина-8), MCP-1 (моноцитарного хемотаксического фактора-1), MCP-2 (моноцитарного хемотаксического фактора-2) и RANTES (цитокина, синтезируемого нормальными Т-лимфоцитами) в клетках, инфицированных вирусом гриппа. У животных, получавших это вещество, отмечали снижение вирусной нагрузки в легких и уменьшение миграции цитотоксических Т-лимфоцитов в очаг воспаления. Все это способствовало уменьшению очагов поражения в ткани легкого и увеличивало продолжительность жизни животных [9].

Растения рода Ладанник (Cistus) широко используются в традиционной медицине. Противовирусный эффект выявлен у богатого высокомолекулярными фенолами экстракта (CYSTUS052), полученного из растения ладанник серый (Cistus × incanus L. Pandalis). Главными компонентами CYSTUS052 являются флаван-3-олы и проантоцианидины, которые ингибируют репродукцию разных подтипов вируса гриппа человека и птиц. Кроме того, его длительное применение не приводит к развитию резистентности вируса гриппа. Противовирусный эффект экстракта ладанника достигается за счет взаимодействия его полифенольных компонентов с поверхностью вирусной частицы, тем самым нарушая взаимодействие гемагглютинина с рецепторами на поверхности заражаемой клетки [10]. В экспериментах на мышах, инфицированных высокопатогенным вирусом птиц H7N7, было показано, что при аэрозольном введении CYSTUS052 у животных не регистрировали клинические симптомы и не наблюдали гистологические изменения в эпителиальных клетках бронхов [11]. Согласно результатам клинического исследования, прием препарата, содержащего этот экстракт ладанника, пациентами с заболеваниями верхних и нижних дыхательных путей, приводил к снижению продолжительности и тяжести заболевания [12].

Среди видов растительного сырья, богатого полифенольными соединениями, особый интерес представляет гранат обыкновенный (Punica granatum L.), который широко используется в традиционной медицине разных стран. Кожура плодов граната содержит множество различных флавоноидов, таких как кемпферол, кемпферолерол-3-О-глюкозид, эпикатехин, катехин, эпигаллокатехин-3-галлат, флаван-3-ол, кемпферол-3-О-рамногликозид, лютеолин 7-оглюкозид, лютеолин, нарингин, пеларгонидин, продельфиндин, кверцетин и рутин. Все эти вторичные метаболиты обладают противоопухолевой, противовирусной, противовоспалительной, антибактериальной и антиоксидантной активностями. N-бутанольная и этилацетатная фракции спиртового экстракта кожуры граната подавляют репродукцию вируса гриппа А in vitro [13]. Кроме того, этот экстракт способен ингибировать гемагглютинин и репликацию вРНК (вирусной РНК) [14]. Максимальный противогриппозный эффект экстракта обеспечивается основным полифенольным соединением, содержащимся в кожуре граната, – пуникалагином [15]. Как показали дальнейшие исследования, это вещество нарушает процесс выхода зрелых вирусных частиц из клетки, посредством ингибирования нейраминидазы [16].

Шалфей обыкновенный (Salvia plebeia R.Br.), растение, относящееся к семейству Яснотковые (Lamiaceae), издавна используется в традиционной медицине для лечения простуды, гриппа, гепатита, кашля. Флавоноиды (гиспидулин, непетин, лютеолин) и метиловый эфир розмариновой кислоты, выделенные из надземной части шалфея, активно ингибируют нейраминидазу вируса гриппа [17].

Особый интерес вызывает ятрофа рассеченная (Jatropha multifida L.), относящаяся к семейству Молочайных (Euphorbiaceae), т.к. содержит дитерпеноиды и фенольные соединения. Корни и стебли ятрофы рассеченной обладают антибактериальным, противоопухолевым, противомалярийным, противолейшманиозным и противоязвенным действием. В экспериментах in vitro было показано, что максимальным вирусингибирующим действием в отношении вируса A/PR/8/34 (H1N1) обладали два экстракта корня J. multifida – водный и хлороформный, отличающиеся друг от друга механизмами действия. Водный экстракт корня ингибирует процесс прикрепления вирусной частицы к поверхности клетки, а хлороформный – репродукцию вируса внутри клетки [18]. Не менее интересно и другое растение, относящееся к этому роду – ятрофа куркас (Jatropha curcas L.). Было установлено, что водный и метаноловый экстракты листьев J. curcas способны ингибировать гемагглютинин вируса гриппа A/H1N1/PUNE/2009 [19].

Баланофора обвернутая (Balanophora involucrata Hook.f. et Thomson) широко применяется в китайской традиционной медицине. Кверцитрин и флоридизин, содержащиеся в этилацетатном экстракте этого растения, способны активно ингибировать нейраминидазу вируса гриппа [20].

Содержащий большое количество разнообразных фенольных соединений представитель семейства бобовые (Fabaceae) – аспалатус линейный (Aspalathus linearis (Burm.f.) R.Dahlgren) обладает противоопухолевым, противовирусным и антиоксидантным действием. Щелочной экстракт листьев А. linearis весьма эффективен в отношении различных подтипов вирусов гриппа А и вирусов гриппа В, в том числе и в отношении осельтамивирустойчивых штаммов, и ингибирует поздние стадии жизненного цикла вируса [21].

В работе Liang Y. et al. [23] изучали противогриппозную активность неочищенного экстракта цветков купальницы китайской (Trollius chinensis Bunge), которая издавна используется в традиционной китайской медицине для лечения заболеваний верхних дыхательных путей, хронического тонзиллита и фарингита. Вирусингибирующее действие этого экстракта связано со снижением экспрессии TLR3 (Toll-подобного рецептора 3), TAK1 (киназы 1, активируемой трансформирующим фактором роста β), TBK1 (TANK-связывающей киназы) и IRF3 (регуляторного фактора интерферона 3) в легочной ткани мышей, инфицированных вирусом A/FM/1/47 (H1N1). В результате этого нарушается синтез IFN (интерферонов) I типа, провоспалительных цитокинов и хемокинов. Таким образом, экстракт цветков купальницы препятствует развитию такого серьезного осложнения, как пневмония [22]. Согласно результатам экспериментов in vitro, вератровая кислота, витексин и троллин, содержащиеся в цветках T. сhinensis, ингибируют репродукцию вируса гриппа за счет воздействия на TLR3-, TLR7- и TLR4 – сигнальные пути. Вследствие этого снижается индуцируемая вирусом продукция NO (оксида азота), IL-6 и TNF-α и стимулируется синтез интерферонов I типа. Цитотоксические Т-лимфоциты и NK-клетки, активируемые IFN-β (интерфероном-β) в дальнейшем способствуют элиминации вируса [23].

Водные и спиртовые экстракты корней герани кроваво-красной (Geraniun sanguineum L.) используются в традиционной медицине для лечения желудочно-кишечных заболеваний, различных инфекций. Метанольный экстракт корней G. sanguineum, называемый полифенольным комплексом (ПК), активно ингибирует репликацию в культуре клеток вирусов гриппа А и В. Его интраназальное или аэрозольное применение снижало смертность у мышей, инфицированных вирусом гриппа A/Aichi/2/68 (H3N2). В результате фитохимического анализа в ПК были выявлены различные флавоноиды, катехины, галлотанины и фенолокислоты. Этот экстракт ингибирует синтез НА (гемагглютинина) и репликацию вРНК (вирусной РНК) в инфицированных вирусом клетках [24]. Апигенин, кверцетин–3-О–галактозид, (–)-катехин, (–)-эпикатехин, хлорогеновая и кофейные кислоты, содержащиеся в ПК, обладают выраженным противогриппозным эффектом [25]. Экстракту корней герани свойственна и антиоксидантная активность. Его применение значительно снижает уровни малонового диальдегида, основного маркера перокисного окисления липидов, в легких и печени инфицированных мышей [26].

Гераниин, основное биологически активное вещество, содержащееся в герани Турнберга (Geranium thunbergii Siebold et Zucc.), демонстрирует активность в отношении ВПГ (вируса простого герпеса), ВИЧ-1 (вирус иммунодефицита человека 1 типа), вируса денге 2 типа и энтеровируса человека 71. Спиртовой экстракт этого растения наряду с гераниином содержит такие соединения, как кемпферитрин, корилагин, эллаговую и галловую кислоты, кемпферол 7-О-рамнозид, кверцетин, протокатеховую кислоту и кемпферол. В культуре клеток подавляет репродукцию вирусов гриппа А и В. Механизм действия спиртового экстракта заключается в ингибировании нейраминидазы вируса [27].

Горец китайский (Polygonum chinense L.), относящийся к семейству Гречишные (Polygonaceae), широко используемый в странах Азии для лечения ряда заболеваний, обладает противовирусной активностью. Согласно результатам фитохимических исследований, это растение содержит терпеноиды, алкалоиды, флавоноиды, танины, стероиды и гликозиды. Так, кверцетин, эллаговая кислота, метилгаллат и кофейная кислота ингибируют репродукцию вирусов гриппа А и В в культуре клеток. Механизм действия кверцетина на сегодняшний день изучен достаточно хорошо. Он взаимодействует с одной из субъединиц гемагглютинина HA2 и блокирует присоединение вируса к поверхности клетки [28]. Эллаговая кислота и метилгаллат воздействуют на ранние стадии жизненного цикла вируса гриппа, а кофейная кислота ингибирует нейраминидазу даже осельтамивир-устойчивых штаммов [29].

С фармакологической точки зрения представляют интерес также растения, относящиеся к семейству Орхидные (Orchidaceae). Блетилла полосатая (Bletilla striata (Thunb.) Rchb.f.) широко используется в традиционной китайской медицине благодаря своим противомикробным, антиоксидантным и противовоспалительным свойствам. Она содержит полисахариды, бибензил, производные фенантрена и дигидрофенантрена, флавоноиды и фенольные соединения. Производные фенантрена и дигидрофенантрена 2,2',7'-тригидрокси-3',4,5',7- тетраметокси-9',10'-дигидро-1,1'-дифенантрен, 4,4',7,7'-тетрагидрокси-2,2',8,8'-тетраметокси-1,1'-дифенантрен, 4,4',7,7'-тетрагидрокси- 2,2'-диметокси-1,1'-дифенантрен, 2-гидроксил- 4,7-диметоксифенантрен, 2,2'-дигидроксил-4,4', 7,7'-9',10'-дигидро-1,6'-дифенантрен, выделенные из этанолового экстракта ризомов орхидеи, ингибируют NA(нейраминидазу) и транскрипцию мРНК матриксного белка вируса. Соединение 2,7-дигидроксил-4-метокси-9,10-дигидрофенантрен имеет в качестве мишени только нейраминидазу, а 2,2',7'-тригидрокси-3',4,5',7- тетраметокси-9',10'-дигидро-1,1'-дифенантрен и 4,4',7-тригидрокси-2,2',7'-триметокси-1,1'-дифенантрен – матриксный белок [30].

Дендробиум благородный (Dendrobium nobile Lindl.) обладает широким спектром фармакологической активности, обусловленной содержанием в нем алкалоидов, сесквитерпеноидов, ароматических соединений и полифенолов. Среди такого большого количества различных биологических веществ большой интерес представляет алкалоид дендробин. Согласно результатам экспериментов in vitro, дендробин демонстрирует активность в отношении разных подтипов вируса гриппа А, в том числе и в отношении осельтамивир-устойчивого штамма. Дендробин блокирует ранние стадии вирусного жизненного цикла, он способен связываться с высококонсервативным участком NP (белка нуклеокапсида), ограничивая его ядерный экспорт и олигомеризацию, что приводит к нарушению процесса репликации в РНК [31].

Одуванчик лекарственный (Taraxacum officinale F.H.Wigg.) семейства Сложноцветные (Asteraceae) в традиционной медицине используется для лечения лимфаденита, гепатита, инфекций мочевыводящих путей, простуды и лихорадки. Противогриппозная активность его водного экстракта in vitro обеспечивается за счет ингибирования активности вирусной РНК- полимеразы [32].

Противогриппозной активностью обладает водный экстракт корней Пиона молочноцветкового (Paeonia lactiflora Pall.) из семейства Пионовые (Paeoniaceae). Он содержит три активных в отношении вируса гриппа соединения: галловую кислоту, метилгаллат и пентагаллоилглюкозу. Пентагаллоилглюкоза ингибирует и HA, и NA (нейраминидазу) вируса, а галловая кислота и метилгаллат только нейраминидазу [33].

Цезальпиния десятицветковая (Caesalpinia decapetala (Roth) Alston) содержит большое количество разнообразных биологически активных веществ: дитерпеноиды кассана, спатуленол, лупеол, ресвератрол, кверцетин, стигмастерол, астралагин и ситостерол. Экстракты цезальпинии обладают обезболивающим, антиоксидантным противоопухолевым и противовирусным действием. Согласно результатам экспериментов in vitro, этаноловый экстракт, полученный из стеблей и листьев C. decapetala, обладает активностью не только в отношении разных подтипов вируса гриппа человека, но также и в отношении вируса гриппа птиц. Механизм действия этого экстракта связан с ингибированием NA вируса. Экстракт защищает мышей от летальной гриппозной инфекции, снижает смертность, уменьшает вирусную нагрузку и очаги поражения в легких [34].

Коммелина обыкновенная или синеглазка (Commelina communis L.) – традиционное растение китайской медицины. Коммелина содержит алкалоиды, флавоноиды, полифенолы, полисахариды, стеролы и терпены. Противогриппозной активностью обладает алкалоид гомоноджиримицин [35]. В экспериментах на мышах было показано, что применение этого алкалоида в дозе 1 мг/кг снижало смертность и вирусную нагрузку в легких у животных, инфицированных вирусом гриппа A/PR/8/34 H1N1. Гомоноджиримицин предотвращает развитие воспаления в тканях легкого за счет снижения уровня TNF-α и IL-6. Кроме того, отмечается повышенная продукция INF-γ (интерферона-γ) и IL-10, необходимых для элиминации вируса из организма [36].

На сегодняшний день достаточно хорошо изучены противовирусные свойства растений рода Солодка (Glycyrrhiza). Основным вторичным метаболитом корня солодки является тритерпеновый гликозид глицирризин (глицирризиновая кислота). Он обладает противоопухолевым, антиоксидантным, противовоспалительным и противовирусным действием. Глицирризин активен в отношении герпес-, корона-, альфа- и флавивирусов, вируса иммунодефицита человека, вируса везикулярного стоматита, вируса полиомиелита I типа, вируса коровьей оспы и в отношении вируса гриппа А. Противогриппозный эффект этого вторичного метаболита связан с продукцией IFN-γ T-лимфоцитами [37]. Хальконы эхинантин и изоликвиритигенин, выделенные из корня солодки гладкой (Glycyrrhiza inflata Batalin), активно ингибируют нейраминидазу вируса [38]. Похожим механизмом действия обладает глицирол, содержащийся в солодке уральской (Glycyrrhiza uralensis Fisch. ex DC.) [39]. Этанольный экстракт этого растения подавляет индуцируемый вирусом синтез хемокина RANTES/CCL5, предотвращая тем самым развитие воспалительной реакции в тканях легкого [40].

Водный экстракт растения бархат амурский (Phellodendron amurense Rupr.), используемый в китайской традиционной медицине, демонстрирует активность in vitro и in vivo в отношении разных подтипов вируса гриппа А. Этот экстракт стимулирует врожденный иммунный ответ за счет воздействия на компоненты двух сигнальных путей – интерферона I типа и NF-κB. Противогриппозные свойства корней бархата амурского связаны с алкалоидом берберином [41]. Механизм его действия на вирус гриппа изучен достаточно широко. Берберин ингибирует нейраминидазную активность вируса, уменьшает воспалительный ответ в легких за счет снижения продукции NO, TNF-α и MCP-1 [42]. Этот алкалоид может нарушать ядерный экспорт вирусного нуклеопротеина посредством блокирования MAPK/ERK – сигнального пути [43].

Моринга масличная (Moringa oleifera Lam.) содержит алкалоиды, флавоноиды, фенольные кислоты, изотиоцианаты и фенилкарбамат, которые обладают противомикробным, противовоспалительным, противоопухолевым и противовирусным действием. Экстракт листьев моринги активен в отношении вируса ветряной оспы, ВИЧ и вируса гепатита. Соединения Моринга А, глюкоморингин и витексин подавляют репродукцию вируса гриппа А подтипа H1N1 в культуре клеток. Их механизм действия связан со снижением уровня провоспалительных цитокинов TNF-α, IL-6 и IL-1β в клетках хозяина [44]. Кроме того, вещество Моринга А ингибирует экспрессию и перенос в ядро TFEB (фактора транскрипции клеточного белка EB), что приводит к ослаблению аутофагии инфицированных клеток [45].

Канариум белый (Canarium album (Lour) Raeusch. ex DC.), относящийся к семейству Бурзеровые (Burseraceae), широко используется в традиционной китайской медицине для лечения респираторных заболеваний человека. Он содержит большое количество различных биологически активных веществ, обладающих противовоспалительным, антиоксидантным, противо-диабетическим и противовирусным действием. Канаролеозиды B и С, мирицитин и кемпферол, содержащиеся в экстракте плодов C. album, ингибируют NA вируса гриппа, кверцетин – HA, а канаролеозид A – оба вирусных гликопротеина [46]. Изокорилагин блокирует выход зрелых вирусных частиц из клетки за счет взаимодействия с высококонсервативными аминокислотными остатками в молекуле нейраминидазы. Кроме того, он активен в отношении вирусов гриппа А, относящихся к разным подтипам [47]. Метилбревифолинкарбоксилат, содержащийся в этилацетатном экстракте плодов C. album, ингибирует активность РНК-полимеразы за счет взаимодействия с кэп-связывающим доменом белка PB2 [48]. Уролитин М5, полученный из неочищенного экстракта канариума, обладает активностью в отношении вирусов гриппа А подтипов H1N1, H3N2 и в отношении вирусов, устойчивых к осельтамивиру. Механизм его действия заключается в ингибировании NA. Применение уролитина M5 в дозе 200 мг/кг снижало смертность животных в опытной группе по сравнению с контролем, уменьшало вирусную нагрузку в легких и повреждение легочной ткани за счет понижения уровней экспрессии NF-κB, IL-6 и TNF-α [49].

Почки растения клейстокаликс покрытый (Cleistocalyx operculatus (Roxb.) Merr. et L. M. Perry), широко используемого в традиционной медицине стран Азии, содержат тритерпеноиды, флавоноиды и эфирные масла, обладающие антиоксидантным и противовоспалительным действием. (Е)-4,2',4'-тригидрокси-6'-метокси-3',5'-диметилхалкон, 2',4'-дигидрокси-6'-метокси-3',5'-диметилхалкон, 2′,4′-дигидрокси-3'-метил-6'-метоксихалкон и 2,2',4'-тригидрокси-6'-метокси-3',5'-диметилхалкон, полученные из метанолового экстракта почек, активно ингибируют нейраминидазу вирусов гриппа подтипов H1N1 и H9N2 [50]. Похожим механизмом действия обладает мирицетин-3',5'-диметиловый эфир 3-O-β-галактопиранозид, содержащийся в листьях этого растения [51].

Не вызывает сомнений противовирусная активность бузины черной (Sambucus nigra L.). В традиционной медицине широко используются цветки и плоды этого растения, содержащие флавоноиды, фенольные кислоты, катехины и проантоцианидины. Ягоды бузины обладают противовирусным, иммуномодулирующим действием, антиоксидантным, антибактериальным и противоопухолевым действием. Флавоноиды 5,7,3',4'-тетра-О-метилкверцетин и 7-дигидрокси-4-оксо-2-(3,4,5-тригидроксифенил)хроман-3-ил-3,4,5-тригидроксициклогексан карбоксилат, содержащиеся в экстракте плодов, за счет прямого взаимодействия с частицами вируса гриппа подтипа H1N1, нарушают процесс проникновения в клетку [52]. Высокие дозы водного экстракта влияют на проникновение, сборку и “почкование” вирусных частиц за счет ингибирования взаимодействия HA c липидными рафтами мембраны хозяйской клетки [53]. Природный цианидин-3-самбубиозид, содержащийся в этом растении, блокирует нейраминидазу вируса за счет взаимодействия с определенными аминокислотными остатками ее активного центра (356–364 а.о. и 395–432 а.о) [54]. Фракции, полученные из сока ягод бузины, при пероральном введении уменьшали вирусную нагрузку в легких мышей, инфицированных вирусом, а также увеличивали уровень нейтрализующих антител и Ig A (иммуноглобулина А) в сыворотке крови и в жидкости бронхоальвеолярного лаважа [55]. Кроме того, экстракт плодов значительно увеличивал продукцию провоспалительных цитокинов IL-6, IL-8 и TNF-α [56]. Клинические исследования показали эффективность сиропа на основе сока плодов бузины [57].

Коптис китайский (Coptis chinensis Franch.) из семейства Лютиковые (Ranunculaceae) издавна использовался в традиционной китайской медицине. Вместе с корой магнолии лекарственной (Magnolia officinalis Rehder et E.H. Wilson) входил в состав лекарственного сбора, предназначенного для терапии сезонных простуд и гриппа. Корневища коптиса содержат большое количество изохинолинового алкалоида берберина. В экспериментах in vitro показано, что берберин ингибирует ЦПД (цитопатогенное действие) и нейраминидазную активность вируса гриппа А H1N1. В опытах in vivo применение этого вещества приводило к снижению смертности и вирусной нагрузки в легких в опытной группе по сравнению с контролем. Отсутствие повреждений в органе-мишени на 2, 4 и 6 сутки после заражения вирусом связано со снижением продукции NO и подавлением транскрипции и экспрессии двух цитокинов TNF-α, MCP-1 [42]. Кроме того, риск развития вирусной пневмонии уменьшается благодаря тому, что этот изохинолиновый алкалоид супрессирует TLR7 – сигнальный путь [58]. Механизм действия берберина связан также с ингибированием MAPK/ERK – сигнального пути, что приводит к нарушению экспорта вРНП из ядра в цитоплазму [43]. Кроме того, это вещество обладает антиоксидантным действием. Берберин блокирует NLRP3 (белок Nod-подобного рецептора 3) активацию инфламмасомы в макрофагах, инфицированных вирусом гриппа, посредством стимулирования митофагии и снижения уровня активных форм кислорода в митохондриях [59].

Лаггера птеродонта (Laggera pterodonta (DC.) Sch.Bip. ex Oliv.), растение, широко используемое в традиционной китайской медицине для лечения гриппа, фаринголарингита и бронхита. Три дикаффеоилхиновые кислоты, содержащиеся в водном экстракте этого растения, обладали активностью в культуре клеток в отношении ВПГ-1, ВПГ-2 и вируса гриппа А [60]. Cесквитерпеновая фракция L. pterodonta in vitro ингибировала репродукцию вируса гриппа на ранних стадиях жизненного цикла. Механизм действия тестируемого вещества связан с нарушением процесса фосфорилирования p65/NF-κB и p38/MAPK, что приводит к снижению экспрессии цитокинов и хемокинов (TNF-α, IL-8, IP-10, MIG, MIP-1α, IFN-α, IL-6, MCP-1 и RANTES), участвующих в развитии воспаления в легочной ткани [61]. Guan W. et al. [62] изучали активность основного сексвитерпена, содержащегося в L. pterodonta, – птеродонтовой кислоты. В результате этих исследований было показано, что птеродонтовая кислота нарушает процесс экспорта вРНП из ядра в цитоплазму и уменьшает воспалительный ответ за счет ингибирования NF-κB сигнального пути [62]. Возможными мишенями для этой кислоты также могут выступать все три белка полимеразного комплекса вируса (PB1, PB2 и PA), NP, неструктурный белок NS и матриксный протеин M. В дозе 100 мкг/мл птеродонтовая кислота снижает экспрессию RIG-1 (гена 1, индуцируемого ретиноевой кислотой), блокируя тем самым NF-κB-сигнальный путь. Противовоспалительный механизм действия этого вещества обеспечивается за счет ингибирования экспрессии STAT-1 (преобразователя сигнала и активатора транскрипции 1), IFN-α/β и PD-L1 (лиганда программируемой смерти 1), PD-L2 (лиганда программируемой смерти 2). Нарушение ядерного экспорта вРНП связано c тем, что птеродонтовая кислота блокирует TRAIL/FasL – стимулируемую активацию каспаз [63]. Активный компонент L. pterodonta С8, содержащий птеродонтовую кислоту, и птеродондиол, обладает широким спектром действия в отношении разных подтипов вируса гриппа А и уменьшает воспалительный ответ на инфекцию. Снижение выработки провоспалительных цитокинов связано с воздействием на TLR7 – сигнальный путь посредством ингибирования экспрессии TLR7, MyD88 и TRAF6 (фактора 6, ассоциированного с рецептором TNF). Кроме того, птеродонтовая кислота и птеродондиол нарушают процессы фосфорилирования и транслокации p65 (субъединицы NF-κB) в ядро, что также способствует уменьшению воспалительной реакции [64].

Шлемник байкальский (Scutellaria baicalensis Georgi), широко используемый в китайской медицине, обладает жаропонижающим, противоопухолевым, противовоспалительным, противобактериальным и противовирусным действием. Основными биологически активными компонентами шлемника байкальского являются байкалин, байкалеин, вогонин, вогонин 7-О-глюкуронид, ороксилин А, ороксилин А 7-О-глюкуронид, апигенин и хризин. Байкалин и байкалеин ингибируют репликацию вирусов парагриппа, ВИЧ-1, гепатита В и коронавируса SARS (тяжелого острого респираторного синдрома). Этилацетатный и хлороформный экстракты шлемника in vitro ингибируют нейраминидазу вируса гриппа А. Согласно результатам хроматографического анализа, в этих экстрактах преобладают байкалеин и хризин. Механизм действия байкалеина заключается во взаимодействии с аминокислотными остатками в положениях 222, 224, 246 и 347 в активном участке NA1 [65]. Другой активный флавоноид, байкалин, может ингибировать репродукцию вируса гриппа A/PR/8/34 (H1N1) за счет стимулирования продукции IFN-γ CD4+, CD8+ – Т лимфоцитами и NK-клетками [66]. Его мишенью является нейраминидаза [67]. Следует отметить, что байкалин обладает еще одним противовирусным механизмом. Он может блокировать аутофагию, индуцированную вирусом гриппа [68]. Флавоноид вогонин обладает противовирусной активностью как в отношении вируса гриппа А, так и вируса гриппа В. В дозе 10 мкг/мл он стимулирует синтез IFN-β и IFN-γ и, как следствие из этого, продукцию MxA (белка устойчивости к миксовирусу) и OAS (олигоаденилат синтазы) в инфицированных клетках. Помимо этого, вогонин может ингибировать репродукцию вируса в культуре клеток за счет нарушения процесса фосфорилирования AMPK (5'АМФ-активируемой протеинкиназы), ключевого регулятора липидного и углеводного обмена [69]. Показано, что экстракт и содержащиеся в нем байкалеин, ороксилин А, вогонин и хризин активно ингибируют вирус гриппа H1N1 в культуре клеток MDCK и продукцию NO ЛПСстимулируемыми клетками RAW264.7. Применение обогащенного флавоноидами экстракта значительно снижало смертность животных, а также уменьшало вирусную нагрузку в легочной ткани. Одновременно с этим в легких животных, получавших экстракт, регистрировали снижение уровня TNF-α, IL-6, MCP-1 и увеличение уровней IFN-γ и IL-10 [70].

Анализ представленных в обзоре научных данных показал, что лекарственные и дикорастущие растения, применяемые в традиционной медицине ряда стран, содержат соединения, обладающие активностью в отношении вирусов гриппа. Механизм их действия весьма разнообразен: от ингибирования гемагглютинина, нейраминидазы и белков полимеразного комплекса вируса до воздействия на сигнальные пути клетки и их компоненты, активно используемые вирусом на разных этапах своего жизненного цикла. Полученные сведения могут лежать в основе поиска и разработки новых противовирусных средств.

Вся информация об активных компонентах лекарственных растений, обладающих противогриппозной активностью, представлена в таблице (табл. 1).

 

Таблица 1. Перечень биологически активных компонентов лекарственных растений, обладающих противогриппозной активностью

Table1. List of biologically active components of medicinal plants with anti-influenza activity

Природный источник

Natural source

Основные компоненты

Major constituents

Механизмы действия

Mechanisms of action

Литературные источники

References

Isatis indigotica

Клемастанин В

Clemastanin B

Влияет на эндоцитоз и раздевание вирусной частицы, нарушает процесс ядерного экспорта вРНП

Affects endocytosis and uncoating of the viral particle, disrupts the process of nuclear export of vRNPs

[6]

Эпигоитрин, индирубин

Epigoitrin, indirubin

Снижает экспрессию белка MFN-2 и увеличивает экспрессию MAVS

Decreases MFN-2 protein expression and increases MAVS expression

[7, 8]

Эруковая кислота

Erucic acid

Снижает транскрипционную активность вирусной РНК-полимеразы, транскрипционную активность ISGF-3 и ингибирует синтез провоспалительных цитокинов IL-6, TNF-α, IL-10, IL-8, MCP-1, MCP-2 и RANTES

Reduces the transcriptional activity of viral RNA polymerase, the transcriptional activity of ISGF-3 and inhibits the synthesis of pro-inflammatory cytokines IL-6, TNF-α, IL-10, IL-8, MCP-1, MCP-2 and RANTES

[9]

Cistus incanus

CYSTUS052

Нарушает взаимодействие гемагглютинина с рецепторами на поверхности клетки хозяина

Disrupts the interaction of hemagglutinin with receptors on the host cell surface

[10]

Punica

granatum

Спиртовой экстракт (пуникалагин)

Alcohol extract (Punicalagin)

Ингибирует HA и репликацию вирусной РНК

Inhibits HA and replication of viral RNA

[14, 15]

Пуникалагин

Punicalagin

Ингибирует NA

Inhibits NA

[16]

Salvia

plebeia

Гиспидулин, непетин, лютеолин, метиловый эфир розмариновой кислоты

Hispidulin, nepetin, luteolin, rosmarinic acid methyl ester

Ингибируют NA

Inhibit NA

[17]

Jatropha

multifida

Водный экстракт корня

Aqueous root extract

Ингибирует прикрепление вирусной частицы к поверхности хозяйской клетки

Inhibits the attachment of the viral particle to the surface of the host cell

[18]

Хлороформный экстракт корня

Chloroform root extract

Ингибирует репродукцию вируса внутри клетки

Inhibits viral replication in host cell

[18]

Jatropha

curcas

Водный и метаноловый экстракт листьев

Aqueous and methanol leaf extracts

Ингибирует HA

Inhibits HA

[19]

Balanophora

involucrata

Кверцитрин и флоридизин

Quercitrin and floridizine

Ингибируют NA

Inhibit NA

[20]

Aspalathus

linearis

Щелочной экстракт

Alkaline extract

Ингибирует поздние стадии жизненного цикла вируса

Inhibits late stages of the virus life cycle

[21]

Trollius

chinensis

Неочищенный экстракт цветков

Crude flower extract

Снижает экспрессию TLR3, TAK1, TBK1 и IRF3

Reduces the expression of TLR3, TAK1, TBK1 and IRF3

[22]

Вератровая кислота, витексин, троллин

Veratric acid, vitexin, trollin

Снижают продукцию NO, IL-6 и TNF-α, стимулируют синтез интерферонов I типа

Reduce the production of NO, IL-6 and TNF-α, stimulate the synthesis of type I interferons

[23]

Geraniun

sanguineum

Полифенольный комплекс (апигенин, кверцетин –3- О-галактозид, (-)-катехин, (-)-эпикатехин, хлорогеновая и кофейные кислоты)

Polyphenolic complex (apigenin, quercetin – 3-O-galactoside, (-)-catechin, (-)-epicatechin, chlorogenic and caffeic acids)

Ингибирует синтез НА и репликацию вРНК

Inhibits HA synthesis and vRNA replication

[24, 25]

Geranium

thunbergii

Спиртовой экстракт

Alcohol extract

Ингибирует NA

Inhibits NA

[27]

Polygonum

chinense

Кверцетин

Quercetin

Блокирует присоединение вируса к поверхности клетки

Blocks virus attachment to the cell surface

[28]

Эллаговая кислота, метилгаллат

Ellagic acid, methyl gallate

Ингибируют вирус на ранних стадиях жизненного цикла

Inhibit the virus at early stages of its life cycle

[29]

Кофейная кислота

Caffeic acid

Ингибирует NА

Inhibits NA

[29]

Bletilla

striata

2,2',7'-тригидрокси-3',4,5',7- тетраметокси-9',10'-дигидро-1,1'-дифенантрен, 4,4',7,7'-тетрагидрокси-2,2',8,8'-тетраметокси-1,1'-дифенантрен, 4,4',7,7'-тетрагидрокси-2,2'-диметокси-1,1'-дифенантрен, 2-гидроксил-4,7-диметоксифенантрен, 2,2'-дигидроксил-4,4',7,7'-9',10'-дигидро-1,6'-дифенантрен

2,2',7'-trihydroxy-3',4,5',7-tetramethoxy-9',10'-dihydro-1,1'-diphenanthrene, 4,4',7,7'-tetrahydroxy-2,2',8,8'-tetramethoxy-1,1'-diphenanthrene, 4,4',7,7'-tetrahydroxy-2,2'-dimethoxy-1,1'-diphenanthrene, 2-hydroxyl-4,7-dimethoxyphenanthrene, 2,2'-dyhydroxyl-4,4',7,7'-9',10'-dihydro-1,6′-diphenanthrene

Ингибируют NА и транскрипцию мРНК матриксного белка вируса

Inhibit NA and transcription of virus matrix protein mRNA

[30]

 

2,7-дигидроксил-4-метокси-9,10-дигидрофенантрен

2,7-dyhydroxyl-4-methoxy-9,10-dihydrophenanthrene

Ингибирует NA

Inhibits NA

[30]

 

2,2,7'-тригидрокси-4,4',7-триметокси-9',10'-дигидро-1,1'-дифенантрен, 4,4',7-тригидрокси-2,2',7'-триметокси-1,1'-дифенантрен

2,2,7'-trihydroxy-4,4',7-trimethoxy-9',10'-dihydro-1,1'-diphenanthrene, 4,4',7-trihydroxy-2,2',7'-trimethoxy-1,1'-diphenanthrene

Ингибируют транскрипцию мРНК матриксного белка вируса

Inhibit transcription of virus matrix protein mRNA

[30]

Dendrobium

nobile

Дендробин

Dendrobin

Ограничивает ядерный экспорт и олигомеризацию белка NP

Restricts nuclear export of NP and its oligomerization

[31]

Taraxacum

officinale

Водный экстракт

Aqueous extract

Ингибирует активность РНК-полимеразы вируса

Inhibits the activity of viral RNA polimerase

[32]

Paeonia

lactiflora

Пентагаллоилглюкоза

Pentagalloylglucose

Ингибирует HA и NA

Inhibits HA and NA

[33]

Галловая кислота и метилгаллат

Gallic acid and methyl gallate

Ингибирует NA

Inhibit NA

[33]

Caesalpinia

decapetala

Этаноловый экстракт

Ethanol extract

Ингибирует NA

Inhibits NA

[34]

Commelina

communis

Гомоноджиримицин

Homonojirimycin

Снижает уровни TNF-α и IL-6, повышает продукцию INF-γ и IL-10

Decreases TNF-α and IL-6 levels, increases the production of INF-γ and IL-10

[36]

Glycyrrhiza

inflata

Эхинантин и изоликвиритигенин

Echinanthine and isoliquiritigenin

Ингибирует NA

Inhibits NA

[38]

Glycyrrhiza

uralensis

Глицерол

Glycerolum

Ингибирует NA

Inhibits NA

[39]

Этанольный экстракт

Ethanol extract

Подавляет синтез RANTES/CCL5

Inhibits the synthesis RANTES/CCL5

[40]

Phellodendron amurense

Берберин

Berberine

Ингибирует NА, снижает продукцию NO, TNF-α и MCP-1, блокирует MAPK/ERK – сигнальный путь и нарушает ядерный экспорт вирусного нуклепротеина

Inhibits NA, reduces the production of NO, TNF-α and MCP-1, blocks MAPK/ERK signaling pathway and disrupts nuclear export of the viral nucleoprotein

[42, 43]

Moringa oleifera

Моринга А, глюкоморингин и витексин

Moringa A, glucomoringin and vitexin

Снижают уровни провоспалительных цитокинов TNF-α, IL-6 и IL-1β

Reduce the levels of pro-inflammatory cytokines TNF-α, IL-6 and IL-1β

[44]

Моринга А

Moringa A

Ингибирует экспрессию и перенос в ядро TFEB

Inhibits expression of TFEB and its transport to the nucleus

[45]

Canarium album

Канаролеозиды B и С, мирицетин и кемпферол

Canaroleosides B and C, myricetin and kaempferol

Ингибируют NA

Inhibit NA

[46]

Кверцетин

Quercetin

Ингибирует HA

Inhibits HA

[46]

Канаролеозид A

Canaryleoside A

Ингибирует HA и NA

Inhibits HA and NA

[46]

Изокорилагин

Isocorylagin

Блокирует выход зрелых вирусных частиц, ингибирует активность NA

Blocks the release of mature viral particles, inhibits NA activity

[47]

Метилбревифолинкарбоксилат

Methyl brevifolincarboxylate

Ингибирует кэп-связывающий домен PB2

Inhibits the PB2 cap-binding domain

[48]

Уролитин М5

Urolithin M5

Ингибирует NA, понижает уровни экспрессии NF-κB, IL-6 и TNF-α

Inhibits NA, decreases expression levels of NF-κB, IL-6 and TNF-α

[49]

Cleistocalyx operculatus

(Е)-4,2',4'-тригидрокси-6'-метокси-3',5'-диметилхалкон, 2',4'-дигидрокси-6'-метокси-3',5'-диметилхалкон, 2′,4′-дигидрокси-3'-метил-6'-метоксихалкон и 2,2',4'-тригидрокси-6'-метокси-3',5'-диметилхалкон

(E)-4,2',4'-trihydroxy-6'-methoxy-3',5'-dimethylchalcone, 2',4'-dihydroxy-6'-methoxy-3',5'-dimethylchalcone, 2′,4′-dihydroxy-3'-methyl-6'-methoxychalcone and 2,2',4'-trihydroxy-6'-methoxy-3',5'-dimethylchalcone

Ингибируют NA

Inhibit NA

[50]

Мирицетин-3',5'-диметиловый эфир 3-O-β-галактопиранозид

Myricetin-3',5'-dimethyl ester 3-O-β-galactopyranoside

Ингибирует NA

Inhibits NA

[51]

Sambucus nigra

5,7,3',4'-тетра-О-метилкверцетин и 7-дигидрокси-4-оксо-2-(3,4,5-тригидроксифенил)хроман-3-ил-3,4,5-тригидроксициклогексан карбоксилат

5,7,3',4'-tetra-O-methylquercetin and 7-dihydroxy-4-oxo-2-(3,4,5-trihydroxyphenyl)chroman-3-yl-3,4,5-trihydroxycyclohexanecarboxylate

Блокируют проникновение вируса в клетку хозяина

Block virus entry into host cell

[52]

Водный экстракт плодов

Aqueous fruit extract

Ингибирует взаимодействие HA c липидными рафтами мембраны хозяйской клетки

Inhibits the interaction of HA with lipid rats of the host cell membrane

[53]

Цианидин-3-самбубиозид

Cyanidin-3-sambubiocide

Ингибирует NA

Inhibits NA

[54]

Фракции из сока ягод

Berry juice fractions

Увеличивает уровень нейтрализующих антител и секреторного Ig A

Increases the level of neutralizing antibodies and the level of secretory Ig A

[55]

Экстракт плодов

Fruit extract

Увеличивает продукцию провоспалительных цитокинов IL-6, IL-8 и TNF-α

Increases the production of pro-inflammatory cytokines IL-6, IL-8 and TNF-α

[56]

Coptis chinensis

Берберин

Berberine

Ингибирует ЦПД и нейраминидазную активность вируса, снижает продукцию NO и подавляет транскрипцию и экспрессию TNF-α, MCP-1, супрессирует TLR7 – сигнальный путь, ингибирует MAPK/ERK – сигнальный путь

Inhibits CPE and neuraminidase activity of the virus, reduces NO production and suppresses the transcription and expression of TNF-α, MCP-1, suppresses TLR7 signaling pathway, inhibits MAPK/ERK signaling pathway

[42, 43, 58]

Laggera pterodonta

Cесквитерпеновая фракция

Sesquiterpene fraction

Снижает экспрессию TNF-α, IL-8, IP-10, MIG, MIP-1α, IFN-α, IL-6, MCP-1 и RANTES

Ингибирует фосфорилирирование p65/NF-κB и p38/MAPK

Reduces the expression of TNF-α, IL-8, IP-10, MIG, MIP-1α, IFN-α, IL-6, MCP-1 and RANTES

Inhibits p65/NF-κB and p38/MAPK phosphorylation

[61]

Птеродонтовая кислота

Pterodontic acid

Ингибирует NF-κB-сигнальный путь и нарушает ядерный экспорт вРНП

Inhibits the NF-κB-signaling pathway and disrupts nuclear export of vRNP

[62, 63]

Компонент С8 (птеродонтовая кислота и птеродондиол)

Component C8 (pterodontic acid and pterodondiol)

Ингибирует экспрессию TLR7, MyD88 и TRAF6 и снижает выработку провоспалительных цитокинов

Inhibits the expression of TLR7, MyD88 and TRAF6 and reduces the production of pro-inflammatory cytokines

[64]

Scutellaria baicalensis

Байкалеин

Baicalein

Ингибирует NA

Inhibits NA

[65]

Байкалин

Baicalin

Ингибирует NА, стимулирует выработку IFNγ CD4+, CD8+ -Т лимфоцитами и NK-клетками, ингибирует аутофагию

Inhibits NA, stimulates the production of IFNγ by CD4+, CD8+-T lymphocytes and NK cells, inhibits autophagy

[66, 67, 68]

Вогонин

Wogonin

Стимулирует синтез IFN-β и IFN-γ, нарушает процесс фосфорилирования AMPK

Stimulates the synthesis of IFN-β and IFN-γ, disrupts the process of AMPK phosphorylation

[69]

Примечание. вРНП – вирусный рибонуклеопротеин, MFN-2 – митофузин-2, MAVS – митохондриальный противовирусный сигнальный белок, ISGF-3 – интерферон-стимулируемый генетический фактор 3 типа, IL – интерлейкин, TNF-α – фактор некроза опухоли α, MCP-1 – моноцитарный хемотаксический фактор-1, MCP-2 – моноцитарный хемотаксический фактор-2, RANTES – цитокин, синтезируемый нормальными Т-лимфоцитами, HA – гемагглютинин, NA – нейраминидаза, TLR – Toll-подобные рецепторы, TAK1 – киназа 1, активируемая трансформирующим фактором роста β, TBK1 – TANKсвязывающая киназа 1, NO – оксид азота, NP – нуклеопротеин, INF – интерферон, TFEB – транскрипционный фактор EB, Ig – иммуноглобулин, ЦПД – цитопатогенное действие, IP-10 – INF-γ-индуцируемый белок 10, MIG – монокин, индуцируемый IFN-γ, MIP-1α – воспалительный белок макрофагов- 1α, MyD88 – миелоидный фактор дифференциации 88, TRAF6 – фактор 6, ассоциированный с рецептором TNF, AMPK – 5'АМФ-активируемая протеинкиназа.

Notes. vRNP – viral ribonucleoprotein, MFN-2 – mitofunsin-2, MAVS – mitochondrial antiviral-signaling protein, ISGF-3 – Interferon-stimulated gene factor 3, IL – interleukin, TNF-α – tumor necrosis factor α, MCP-1 – monocyte chemotactic protein-1, MCP-2 – monocyte chemotactic protein-2, RANTES – regulated on activation, normal T cell expressed and secreted, NA – neuraminidase, TLR – Toll-like receptors, TAK1 – transforming growth factor β-activated kinase, TBK1 – TANK-binding kinase 1, NO – nitric oxide, HA – hemagglutinin, NP – nucleoprotein, INF – interferon, TFEB – transcription factor EB, Ig – immunoglobulin, CPE – cytopathic effect, IP-10 – IFN-γ-induced protein 10, MIG – monokine induced by IFN-γ, MIP-1α – macrophage inflammatory protein-1α, MyD88 – myeloid differentiation factor 88, TRAF6 – TNF receptor associated factor 6, AMPK – 5′AMP-activated protein kinase.

×

About the authors

V. A. Fedorova

Smorodintsev Research Institute of Influenza of the Ministry of Health of the Russian Federation

Author for correspondence.
Email: vikusik_bio_24@mail.ru
Russian Federation, St. Petersburg

K. V. Sivak

Smorodintsev Research Institute of Influenza of the Ministry of Health of the Russian Federation

Email: vikusik_bio_24@mail.ru
Russian Federation, St. Petersburg

K. I. Stosman

Smorodintsev Research Institute of Influenza of the Ministry of Health of the Russian Federation

Email: vikusik_bio_24@mail.ru
Russian Federation, St. Petersburg

References

  1. Gasparini R., Amicizia D., Lai P.L., Bragazzi N.L., Panatto D. 2014. Compounds with anti-influenza activity: present and future of strategies for the optimal treatment and management of influenza. Part I: Influenza life-cycle and currently available drugs. – J. Prev. Med. Hyg. 55(3): 69–85. https://doi.org/10.15167/2421-4248/jpmh2014.55.3.432
  2. Gubareva L.V., Kaiser L., Hayden F.G. 2000. Influenza virus neuraminidase inhibitors. – Lancet. 355(9206): 827–835. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(99)11433-8
  3. Yang T. 2019. Baloxavir Marboxil: The first cap-dependent endonuclease inhibitor for the treatment of influenza. – Ann. Pharmacother. 53(7): 754–759. https://doi.org/10.1177/1060028019826565
  4. Uehara T., Hayden F.G., Kawaguchi K., Omoto S., Hurt A.C., De Jong M.D., Hirotsu N., Sugaya N., Lee N., Baba K., Shishido T., Tsuchiya K., Portsmouth S., Kida H. 2020. Treatment-emergent influenza variant viruses with reduced baloxavir susceptibility: impact on clinical and virologic outcomes in uncomplicated influenza. – J. Infect. Dis. 221(3): 346–355. https://doi.org/10.1093/infdis/jiz244
  5. Chen Q., Lan H.Y., Peng W., Rahman K., Liu Q.C., Luan X., Zhang H. 2021. Isatis indigotica: a review of phytochemistry, pharmacological activities and clinical applications. – J. Pharm. Pharmacol. 73(9): 1137–1150. https://doi.org/10.1093/jpp/rgab014
  6. Yang Z., Wang Y., Zheng Z., Zhao S., Zhao J., Lin Q., et al. 2013. Antiviral activity of Isatis indigotica root-derived clemastanin B against human and avian influenza A and B viruses in vitro. – Int. J. Mol. Med. 31(4): 867–873. https://doi.org/10.3892/ijmm.2013.1274
  7. Luo Z., Liu L.F., Wang X.H., Li W., Jie C., Chen H., et al. 2019. Epigoitrin, an alkaloid from Isatis indigotica, reduces H1N1 infection in stress-induced susceptible model in vivo and in vitro. – Front. Pharmacol. 10: 78. https://doi.org/10.3389/fphar.2019.00078
  8. Jie C., Luo Z., Chen H., Wang M., Yan C., Mao Z.F., et al. 2017. Indirubin, a bisindole alkaloid from Isatis indigotica, reduces H1N1 susceptibility in stressed mice by regulating MAVS signaling. – Oncotarget. 8(62): 105615–105629. https://doi.org/10.18632/oncotarget.22350
  9. Liang X., Huang Y., Pan X., Hao Y., Chen X., Jiang H., et al. 2020. Erucic acid from Isatis indigotica Fort. suppresses influenza A virus replication and inflammation in vitro and in vivo through modulation of NF-κB and p38 MAPK pathway. – J. Pharm. Anal. 10(2): 130–146. https://doi.org/10.1016/j.jpha.2019.09.005
  10. Ehrhardt C., Hrincius E.R., Korte V., Mazur I., Droebner K., Poetter A, et al. 2007. A polyphenol rich plant extract, CYSTUS052, exerts anti influenza virus activity in cell culture without toxic side effects or the tendency to induce viral resistance. – Antiviral Res. 76(1): 38–47. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2007.05.002
  11. Droebner K., Ehrhardt C., Poetter A., Ludwig S., Planz O. 2007. CYSTUS052, a polyphenol-rich plant extract, exerts anti-influenza virus activity in mice. – Antiviral Res. 76(1): 1–10. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2007.04.001
  12. Kalus U., Grigorov A., Kadecki O., Jansen J.P., Kiesewetter H., Radtke H. 2009. Cistus incanus (CYSTUS052) for treating patients with infection of the upper respiratory tract. A prospective, randomised, placebo-controlled clinical study. – Antiviral Res. 84(3): 267–271. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2009.10.001
  13. Moradi M.T., Karimi A., Shahrani M., Hashemi L., Ghaffari-Goosheh M.S. 2019. Anti-Influenza Virus Activity and Phenolic Content of Pomegranate (Punica granatum L.) Peel Extract and Fractions. – Avicenna J. Med. Biotechnol. 11(4): 285–291. https://www.ajmb.org/Article?id=10395
  14. Moradi M.T., Karimi A., Rafieian-Kopaei M., Rabiei-Faradonbeh M., Momtaz H. 2020. Pomegranate peel extract inhibits internalization and replication of the influenza virus: An in vitro study. – Avicenna J. Phytomed. 10(2): 143–151. https://doi.org/10.22038/ajp.2019.13855
  15. Haidari M., Ali M., Ward Casscells S.W., Madjid M. 2009. Pomegranate (Punica granatum) purified polyphenol extract inhibits influenza virus and has a synergistic effect with oseltamivir. – Phytomedicine. 16(12): 1127–1136. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2009.06.002
  16. Li P., Du R., Chen Z., Wang Y., Zhan P., Liu X., et al. 2021. Punicalagin is a neuraminidase inhibitor of influenza viruses. – J. Med. Virol. 93(6): 3465–3472. https://doi.org/10.1002/jmv.26449
  17. Bang S., Ha T.K.Q., Lee C., Li W., Oh W.K., Shim S.H. 2016. Antiviral activities of compounds from aerial parts of Salvia plebeia R. Br. – J. Ethnopharmacol. 192: 398–405. https://doi.org/10.1016/j.jep.2016.09.030
  18. Shoji M., Woo S.Y., Masuda A., Win N.N., Ngwe H., Takahashi E., et al. 2017. Anti-influenza virus activity of extracts from the stems of Jatropha multifida Linn. collected in Myanmar. – BMC Complement. Altern. Med. 17: 96. https://doi.org/10.1186/s12906-017-1612-8
  19. Patil D., Roy S., Dahake R., Rajopadhye S., Kothari S., Deshmukh R., Chowdhary A. 2013. Evaluation of Jatropha curcas Linn. leaf extracts for its cytotoxicity and potential to inhibit hemagglutinin protein of influenza virus. – Indian J. Virol. 24(2): 220–226. https://doi.org/10.1007/s13337-013-0154-z
  20. Sun X., Zhang L., Cao Y., Li J., Atanasov A.G., Huang L. 2020. Anti-neuraminidase activity of chemical constituents of Balanophora involucrata. – Biomed. Chromatogr. 34(12): e4949. https://doi.org/10.1002/bmc.4949
  21. Rahmasaria R., Haruyama T., Charyasriwong S., Nishida T., Kobayashi N. 2017. Antiviral Activity of Aspalathus linearis against human influenza virus. – Nat. Prod. Commun. 12(4): 599–602. https://doi.org/10.1177/1934578X1701200432
  22. Liang Y., Liu X., Hu J., Huang S., Ma X., Liu X., et al. 2023. The crude extract from the flowers of Trollius chinensis Bunge exerts anti-influenza virus effects through modulation of the TLR3 signaling pathway. – J. Ethnopharmacol. 300: 115743. https://doi.org/10.1016/j.jep.2022.115743
  23. Shi D., Chen M., Liu L., Wang Q., Liu S., Wang L., Wang R. 2020. Anti-influenza A virus mechanism of three representative compounds from Flos Trollii via TLRs signaling pathways. – J. Ethnopharmacol. 253: 112634. https://doi.org/10.1016/j.jep.2020.112634
  24. Serkedjieva J., Hay A.J. 1998. In vitro anti-influenza virus activity of a plant preparation from Geranium sanguineum L. – Antiviral Res. 37(2): 121–130. https://doi.org/10.1016/S0166-3542(97)00067-3
  25. Pantev A., Ivancheva S., Staneva L., Serkedjieva J. 2006. Biologically active constituents of a polyphenol extract from Geranium sanguineum L. with anti-influenza activity. – Z. Naturforsch. C. J. Biosci. 61(7–8): 508–516. https://doi.org/10.1515/znc-2006-7-807
  26. Murzakhmetova M., Moldakarimov S., Tancheva L., Abarova S., Serkedjieva J. 2008. Antioxidant and prooxidant properties of a polyphenol-rich extract from Geranium sanguineum L. in vitro and in vivo. – Phytother. Res. 22(6): 746–751. https://doi.org/10.1002/ptr.2348
  27. Choi J.G., Kim Y.S., Kim J.H., Chung H.S. 2019. Antiviral activity of ethanol extract of Geranii Herba and its components against influenza viruses via neuraminidase inhibition. – Sci. Rep. 9: 12132. https://doi.org/10.1038/s41598-019-48430-8
  28. Wu W., Li R., Li X., He J., Jiang S., Liu S., Yang J. 2015. Quercetin as an antiviral agent inhibits influenza A virus (IAV) entry. – Viruses. 8(1): 6. https://doi.org/10.3390/v8010006
  29. Tran T.T., Kim M., Jang Y., Lee H.W., Nguyen H.T., Nguyen T.N., et al. 2017. Characterization and mechanisms of anti-influenza virus metabolites isolated from the Vietnamese medicinal plant Polygonum chinense. – BMC Complement. Altern. Med. 17: 162. https://doi.org/10.1186/s12906-017-1675-6
  30. Shi Y., Zhang B., Lu Y., Qian C., Feng Y., Fang L., et al. 2017. Antiviral activity of phenanthrenes from the medicinal plant Bletilla striata against influenza A virus. – BMC Complement. Altern. Med. 17: 273. https://doi.org/10.1186/s12906-017-1780-6
  31. Li R., Liu T., Liu M., Chen F., Liu S., Yang J. 2017. Anti-influenza A virus activity of dendrobine and its mechanism of action. – J. Agric. Food Chem. 65(18): 3665–3674. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.7b00276
  32. He W., Han H., Wang W., Gao B. 2011. Anti-influenza virus effect of aqueous extracts from dandelion. – Virol. J. 8: 538. https://doi.org/10.1186/1743-422X-8-538
  33. Zhang T., Lo C.Y., Xiao M., Cheng L., Mok C.K.P., Shaw P.C. 2020. Anti-influenza virus phytochemicals from Radix Paeoniae Alba and characterization of their neuraminidase inhibitory activities. – J. Ethnopharmacol. 253: 112671. https://doi.org/10.1016/j.jep.2020.112671
  34. Zhang L., Chen J., Ke C., Zhang H., Zhang S., Tang W., et al. 2020. Ethanol extract of Caesalpinia decapetala inhibits influenza virus infection in vitro and in vivo. – Viruses. 12(5): 557. https://doi.org/10.3390/v12050557
  35. Zhang G., Zhang B., Zhang X., Bing F. 2013. Homonojirimycin, an alkaloid from dayflower inhibits the growth of influenza A virus in vitro. – Acta Virol. 57(1): 85–86. https://doi.org/10.4149/av_2013_01_85
  36. Zhang G.B., Tian L.Q., Li Y.M., Liao Y.F., Li J., Bing F.H. 2013. Protective effect of homonojirimycin from Commelina communis (dayflower) on influenza virus infection in mice. – Phytomedicine. 20(11): 964–968. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2013.04.009
  37. Utsunomiya T., Kobayashi M., Pollard R.B., Suzuki F. 1997. Glycyrrhizin, an active component of licorice roots, reduces morbidity and mortality of mice infected with lethal doses of influenza virus. – Antimicrob. Agents Chemother. 41(3): 551–556. https://doi.org/10.1128/aac.41.3.551
  38. Dao T.T., Nguyen P.H., Lee H.S., Kim E., Park J., Lim S.I., Oh W.K. 2011. Chalcones as novel influenza A (H1N1) neuraminidase inhibitors from Glycyrrhiza inflata. – Bioorg. Med. Chem. Lett. 21(1): 294–298. https://doi.org/10.1016/j.bmcl.2010.11.016
  39. Ryu Y.B., Kim J.H., Park S.J., Chang J.S., Rho M.C., Bae K.H., et al. 2010. Inhibition of neuraminidase activity by polyphenol compounds isolated from the roots of Glycyrrhiza uralensis. – Bioorg. Med. Chem. Lett. 20(3): 971–974. https://doi.org/10.1016/j.bmcl.2009.12.106
  40. Ko H.C., Wei B.L., Chiou W.F. 2006. The effect of medicinal plants used in Chinese folk medicine on RANTES secretion by virus-infected human epithelial cells. – J. Ethnopharmacol. 107(2): 205–210. https://doi.org/10.1016/j.jep.2006.03.004
  41. Kim J.H., Weeratunga P., Kim M.S., Nikapitiya C., Lee B.H., Uddin M.B., et al. 2016. Inhibitory effects of an aqueous extract from Cortex Phellodendri on the growth and replication of broad-spectrum of viruses in vitro and in vivo. – BMC Complement. Altern. Med. 16: 265. https://doi.org/10.1186/s12906-016-1206-x
  42. Wu Y., Li J.Q., Kim Y.J., Wu J., Wang Q., Hao Y. 2011. In vivo and in vitro antiviral effects of berberine on influenza virus. – Chin. J. Integr. Med. 17(6): 444–452. https://doi.org/10.1007/s11655-011-0640-3
  43. Botwina P., Owczarek K., Rajfur Z., Ochman M., Urlik M., Nowakowska M., Szczubiałka K., Pyrc K. 2020. Berberine hampers influenza A replication through inhibition of MAPK/ERK pathway. – Viruses. 12(3): 344. https://doi.org/10.3390/v12030344
  44. Xiong Y., Rajoka M.S.R., Zhang M.X., He Z. 2022. Isolation and identification of two new compounds from the seeds of Moringa oleifera and their antiviral and anti-inflammatory activities. – Nat. Prod. Res. 36(4): 974–983. https://doi.org/10.1080/14786419.2020.1851218
  45. Xiong Y., Rajoka M.S.R., Mehwish H.M., Zhang M., Liang N., Li C., He Z. 2021. Virucidal activity of Moringa A from Moringa oleifera seeds against influenza A viruses by regulating TFEB. – Int. Immunopharmacol. 95: 107561. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2021.107561
  46. Xiao M., Lim-Ho Kong B., Zhang Y., Yang Y., Lu J., Lee H.K., et al. 2022. Anti-influenza mechanism of phenolic phytochemicals from Canarium album (Lour.) DC. leaf extract. – J. Ethnopharmacol. 292: 115175. https://doi.org/10.1016/j.jep.2022.115175
  47. Chen F., Yang L., Huang Y., Chen Y., Sang H., Duan W., Yang J. 2020. Isocorilagin, isolated from Canarium album (Lour.) Raeusch, as a potent neuraminidase inhibitor against influenza A virus. – Biochem. Biophys. Res. Commun. 523(1): 183–189. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2019.12.043
  48. Chen F., Yang L., Zhai L., Huang Y., Chen F., Duan W., Yang J. 2020. Methyl brevifolincarboxylate, a novel influenza virus PB2 inhibitor from Canarium Album (Lour.) Raeusch. – Chem. Biol. Drug Des. 96(5): 1280–1291. https://doi.org/10.1111/cbdd.13740
  49. Xiao M., Cao F., Huang T., Tang Y.S., Zhao X., Shaw P.C. 2022. Urolithin M5 from the leaves of Canarium album (Lour.) DC. inhibits influenza virus by targeting neuraminidase. – Molecules. 27(17): 5724. https://doi.org/10.3390/molecules27175724
  50. Dao T.T., Tung B.T., Nguyen P.H., Thuong P.T., Yoo S.S., Kim E.H., et al. 2010 C-methylated flavonoids from Cleistocalyx operculatus and their inhibitory effects on novel influenza A (H1N1) neuraminidase. – J. Nat. Prod. 73(10): 1636–1642. https://doi.org/10.1021/np1002753
  51. Ha T.K., Dao T.T., Nguyen N.H., Kim J., Kim E., Cho T.O., Oh W.K. 2016. Antiviral phenolics from the leaves of Cleistocalyx operculatus. – Fitoterapia. 110: 135–141. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2016.03.006
  52. Roschek B. Jr., Fink R.C., McMichael M.D., Li D., Alberte R.S. 2009. Elderberry flavonoids bind to and prevent H1N1 infection in vitro. – Phytochemistry. 70(10): 1255–1261. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2009.06.003
  53. Shahsavandi S., Ebrahimi M.M., Farahani A.H. 2017. Interfering with lipid raft association: a mechanism to control influenza virus infection by Sambucus nigra. – Iran J. Pharm. Res. 16(3): 1147–1154. https://doi.org/10.22037/ijpr.2017.2091
  54. Swaminathan K., Dyason J.C., Maggioni A., von Itzstein M., Downard K.M. 2013. Binding of a natural anthocyanin inhibitor to influenza neuraminidase by mass spectrometry. – Anal. Bioanal. Chem. 405(20): 6563–6572. https://doi.org/10.1007/s00216-013-7068-x
  55. Kinoshita E., Hayashi K., Katayama H., Hayashi T., Obata A. 2012. Anti-influenza virus effects of elderberry juice and its fractions. – Biosci. Biotechnol. Biochem. 76(9): 1633–1638. https://doi.org/10.1271/bbb.120112
  56. Torabian G., Valtchev P., Adil, Q, Dehghani F. 2019. Anti-influenza activity of elderberry (Sambucus nigra). – J. Funct. Foods, 54: 353–360. https://doi.org/10.1016/j.jff.2019.01.031
  57. Hawkins J., Baker C., Cherry L., Dunne E. 2019. Black elderberry (Sambucus nigra) supplementation effectively treats upper respiratory symptoms: A meta-analysis of randomized, controlled clinical trials. – Complement. Ther. Med. 42: 361–365. https://doi.org/10.1016/j.ctim.2018.12.004
  58. Yan Y.Q., Fu Y.J., Wu S., Qin H.Q., Zhen X., Song B.M., et al. 2018. Anti-influenza activity of berberine improves prognosis by reducing viral replication in mice. – Phytother. Res. 32(12): 2560–2567. https://doi.org/10.1002/ptr.6196
  59. Liu H., You L., Wu J., Zhao M., Guo R., Zhang H., Su R., Mao Q., et al. 2020. Berberine suppresses influenza virus-triggered NLRP3 inflammasome activation in macrophages by inducing mitophagy and decreasing mitochondrial ROS. – J. Leukoc. Biol. 108(1): 253–266. https://doi.org/10.1002/JLB.3MA0320-358RR
  60. Shi S., Huang K., Zhang Y., Zhao Y., Du Q. 2007. Purification and identification of antiviral components from Laggera pterodonta by high-speed counter-current chromatography. – J Chromatogr. B. 859(1): 119–124. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2007.09.016
  61. Wang Y., Zhou B., Lu J., Chen Q., Ti H., Huang W., Li J., et al. 2017. Inhibition of influenza virus via a sesquiterpene fraction isolated from Laggera pterodonta by targeting the NF-κB and p38 pathways. – BMC Complement. Altern. Med. 17(1): 25. https://doi.org/10.1186/s12906-016-1528-8
  62. Guan W., Li J., Chen Q., Jiang Z., Zhang R., Wang X., Yang Z., Pan X. 2017. Pterodontic acid isolated from Laggera pterodonta inhibits viral replication and inflammation induced by influenza A virus. – Molecules. 22(10): 1738. https://doi.org/10.3390/molecules22101738
  63. Wang Y., Zeng Z., Chen Q., Yan W., Chen Y., Xia X., Song W., Wang X. 2019. Pterodontic acid isolated from Laggera pterodonta suppressed RIG-I/NF-KB/STAT1/Type I interferon and programmed death-ligand 1/2 activation induced by influenza A virus in vitro. – Inflammopharmacology. 27(6): 1255–1263. https://doi.org/10.1007/s10787-019-00571-y
  64. Wang Y., Li J., Yan W., Chen Q., Jiang Z., Zhang R., Pan X., Wang X. 2018. An active component containing pterodontic acid and pterodondiol isolated from Laggera pterodonta inhibits influenza A virus infection through the TLR7/MyD88/TRAF6/NFκB signaling pathway. – Mol. Med. Rep. 18(1): 523–531. https://doi.org/10.3892/mmr.2018.8947
  65. Hour M.J., Huang S.H., Chang C.Y., Lin Y.K., Wang C.Y., Chang Y.S., Lin C.W. 2013. Baicalein, ethyl acetate, and chloroform extracts of Scutellaria baicalensis inhibit the neuraminidase activity of pandemic 2009 H1N1 and seasonal influenza A viruses. – Evid. Based Complement. Alternat. Med. Article ID 750803. https://doi.org/10.1155/2013/750803
  66. Chu M., Xu L., Zhang M.B., Chu Z.Y., Wang Y.D. 2015. Role of baicalin in anti-influenza virus A as a potent inducer of IFN-gamma. – Biomed. Res. Int. Article ID 263630. https://doi.org/10.1155/2015/263630
  67. Ding Y., Dou J., Teng Z., Yu J., Wang T., Lu N., Wang H., Zhou C. 2014. Antiviral activity of baicalin against influenza A (H1N1/H3N2) virus in cell culture and in mice and its inhibition of neuraminidase. – Arch. Virol. 159(12): 3269–3278. https://doi.org/10.1007/s00705-014-2192-2
  68. Zhu H.Y., Han L., Shi X.L., Wang B.L., Huang H., Wang X., et al. 2015. Baicalin inhibits autophagy induced by influenza A virus H3N2. – Antiviral Res. 113: 62–70. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2014.11.003
  69. Seong R.K., Kim J.A., Shin O.S. 2018. Wogonin, a flavonoid isolated from Scutellaria baicalensis, has anti-viral activities against influenza infection via modulation of AMPK pathways. – Acta Virol. 62(1): 78–85. https://doi.org/10.4149/av_2018_109
  70. Zhi H.J., Zhu H.Y., Zhang Y.Y., Lu Y., Li H., Chen D.F. 2019. In vivo effect of quantified flavonoids-enriched extract of Scutellaria baicalensis root on acute lung injury induced by influenza A virus. – Phytomedicine. 57: 105–116. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2018.12.009

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2024 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».