Адъювантное действие агониста NOD1 и NOD2 полимурамила различается при иммунизации мышей разных инбредных линий неструктурными белками вируса гепатита С (Flaviviridae: Hepacivirus) и синергетически усиливается в комбинации с агонистом TLR4 пирогеналом
- Авторы: Леснова Е.И.1, Масалова О.В.1, Пермякова К.Ю.1,2, Демидова Н.А.1, Валуев-Эллистон В.Т.3, Иванов А.В.3, Кущ А.А.1
-
Учреждения:
- ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России
- ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина» Министерства сельского хозяйства Российской Федерации
- ФГБУН «Институт молекулярной биологии имени В.А. Энгельгардта» Российской академии наук
- Выпуск: Том 68, № 4 (2023)
- Страницы: 315-326
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://journal-vniispk.ru/0507-4088/article/view/133990
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-183
- EDN: https://elibrary.ru/pvluew
- ID: 133990
Цитировать
Аннотация
Введение. Гепатит С – заболевание печени с высокой хронизацией, являющееся причиной цирроза и гепатокарциномы. Главное препятствие для контроля за гепатитом С – отсутствие вакцин.
Цель работы – сравнение иммуногенной активности неструктурных рекомбинантных белков NS3, NS4 и NS5B вируса гепатита С (ВГС) как компонентов субъединичной кандидатной вакцины и анализ адъювантных свойств двух отечественных коммерческих препаратов: полимурамила и пирогенала.
Материалы и методы. Мышей линий BALB/c, DBA/2J и C57BL/6 иммунизировали трижды с интервалом 2 недели белками NS3, NS4 и NS5B без адъювантов или с полимурамилом (агонист рецепторов иммунного ответа NOD1 и NOD2) и пирогеналом (липополисахарид, агонист TLR-4). Гуморальный ответ определяли по активности антител в ИФА, клеточный – по индексу стимуляции пролиферации лимфоцитов и способности продуцировать IFN-γ при антигенспецифической стимуляции in vitro.
Результаты. Рекомбинантные белки проявляли различную иммуногенность. NS4 индуцировал антитела эффективнее, чем NS3 и NS5B. Значительные различия обнаружены в иммунном ответе мышей трех инбредных линий: уровень секреции IFN-γ у мышей BALB/c и DBA/2J на белок NS5B был в 30 раз выше, чем у мышей C57Bl/6. Индукция антител, напротив, у мышей BALB/c была ниже, чем у C57Bl/6 и у DBA/2J. Полимурамил не увеличивал гуморальный ответ на NS5B и усиливал клеточный ответ только у мышей C57BL/6. Сочетанное применение полимурамила с пирогеналом значительно увеличивало как гуморальный, так и клеточный ответ мышей на все рекомбинантные белки ВГС.
Выводы. Различные иммуногенные свойства и разные функции неструктурных белков ВГС в репликации вируса свидетельствуют о целесообразности их сочетанного включения в состав субъединичных вакцин. Впервые установлено, что иммунизация белками ВГС с комплексным адъювантом (полимурамил + пирогенал) оказывает синергетический эффект, значительно превышая действие каждого из них по отдельности.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Екатерина Ивановна Леснова
ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России
Автор, ответственный за переписку.
Email: wolf252006@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2801-6843
научный сотр.
Россия, 123098, г. МоскваОльга Владимировна Масалова
ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России
Email: ol.mas@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5571-5669
доктор биологических наук, ведущий научный сотр., зав. лабораторией
Россия, 123098, г. МоскваКристина Юрьевна Пермякова
ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России; ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина» Министерства сельского хозяйства Российской Федерации
Email: kristusha164@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3579-4416
младший научный сотр., зав. лабораторией
Россия, 123098, г. Москва; 109472, г. МоскваНаталья Андреевна Демидова
ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России
Email: ailande@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-1961-9789
научный сотр.
Россия, 123098, г. МоскваВладимир Треворович Валуев-Эллистон
ФГБУН «Институт молекулярной биологии имени В.А. Энгельгардта» Российской академии наук
Email: gansfaust@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0365-570X
кандидат биологических наук, научный сотрудник
Россия, 119991, г. МоскваАлександр Владимирович Иванов
ФГБУН «Институт молекулярной биологии имени В.А. Энгельгардта» Российской академии наук
Email: aivanov@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5659-9679
SPIN-код: 5776-5496
доктор биологических наук, кандидат химических наук, главный научный сотрудник, рук. лаборатории биохимии вирусных инфекций, зам. директора по научной работе
Россия, 119991, г. МоскваАлла Александровна Кущ
ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России
Email: vitallku@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3396-5533
SPIN-код: 6964-1715
доктор биол. наук, проф., ведущий научный сотр.
Россия, 123098, г. МоскваСписок литературы
- Park S.H., Rehermann B. Immune responses to HCV and other hepatitis viruses. Immunity. 2014; 40(1): 13–24. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2013.12.010
- Dustin L.B. Innate and adaptive immune responses in chronic HCV infection. Curr. Drug Targets. 2017; 18(7): 826–43. https://doi.org/10.2174/1389450116666150825110532
- Wang Y., Rao H., Chi X., Li B., Liu H., Wu L., et al. Detection of residual HCV-RNA in patients who have achieved sustained virological response is associated with persistent histological abnormality. EBioMedicine. 2019; 46: 227–35. https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2019.07.043
- Polyak S.J., Crispe I.N., Baumert T.F. Liver abnormalities after elimination of HCV infection: persistent epigenetic and immunological perturbations post-cure. Pathogens. 2021; 10(1): 44. https://doi.org/10.3390/pathogens10010044
- Sun D., Dai M., Shen S., Li C., Yan X. Analysis of naturally occurring resistance-associated variants to NS3/4A protein inhibitors, NS5A protein inhibitors, and NS5B polymerase inhibitors in patients with chronic hepatitis C. Gene Expr. 2018; 18(1): 63–9. https://doi.org/10.3727/105221617X15100607143377
- Ghweil A.A., Helal M.M. Reactivation of herpesvirus in patients with hepatitis C treated with direct-acting antiviral agents. Infect. Drug Resist. 2019; 12: 759–62. https://doi.org/10.2147/IDR.S184598
- Todryk S.M., Bassendine M.F., Bridge S.H. Revisiting the elusive hepatitis C vaccine. Vaccines (Basel). 2021; 9(2): 114. https://doi.org/10.3390/vaccines9020114
- Kozak M., Hu J. The integrated consideration of vaccine platforms, adjuvants, and delivery routes for successful vaccine development. Vaccines (Basel). 2023; 11(3): 695. https://doi.org/10.3390/vaccines11030695
- Bailey J.R., Barnes E., Cox A.L. Approaches, progress, and challenges to hepatitis C vaccine development. Gastroenterology. 2019; 156(2): 418–30. https://doi.org/10.1053/j.gastro.2018.08.060
- Carty M., Guy C., Bowie A.G. Detection of viral infections by innate immunity. Biochem. Pharmacol. 2021; 183: 114316. https://doi.org/10.1016/j.bcp.2020.114316
- Caucheteux S.M., Hu-Li J., Mohammed R.N., Ager A., Paul W.E. Cytokine regulation of lung Th17 response to airway immunization using LPS adjuvant. Mucosal Immunol. 2017; 10(2): 361–72. https://doi.org/10.1038/mi.2016.54
- Vegna S., Gregoire D., Moreau M., Lassus P., Durantel D., Assenat E., et al. NOD1 participates in the innate immune response triggered by hepatitis C virus polymerase. J. Virol. 2016; 90(13): 6022–35. https://doi.org/10.1128/JVI.03230-15
- Guryanova S.V., Khaitov R.M. Strategies for using muramyl peptides – modulators of innate immunity of bacterial origin – in medicine. Front. Immunol. 2021; 12: 607178. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.607178
- Budikhina A.S., Murugina N.E., Maximchik P.V., Dagil Y.A., Nikolaeva A.M., Balyasova L.S., et al. Interplay between NOD1 and TLR4 receptors in macrophages: nonsynergistic activation of signaling pathways results in synergistic induction of proinflammatory gene expression. J. Immunol. 2021; 206(9): 2206–20. https://doi.org/10.4049/jimmunol.2000692
- Hennessy C., McKernan D.P. Anti-viral pattern recognition receptors as therapeutic targets. Cells. 2021; 10(9): 2258. https://doi.org/10.3390/cells10092258
- Абдулмеджидова А.Г., Масалова О.В., Атанадзе С.Н., Уланова Т.И., Бурков А.Н., Худяков Ю.Е. и др. Характеристика панели моноклональных антител к рекомбинантному белку NS3 вируса гепатита С. Вопросы вирусологии. 2002; 47(1): 21–5.
- Ivanov A.V., Korovina A.N., Tunitskaya V.L., Kostyuk D.A., Rechinsky V.O., Kukhanova M.K., et al. Development of the system ensuring a high-level expression of hepatitis C virus nonstructural NS5B and NS5A proteins. Protein Expr. Purif. 2006; 48(1): 14–23. https://doi.org/10.1016/j.pep.2006.02.011
- Masalova O.V., Lakina E.I., Abdulmedzhidova A.G., Atanadze S.N., Semiletov Y.A., Shkurko T.V., et al. Characterization of monoclonal antibodies and epitope mapping of the NS4 protein of hepatitis C virus. Immunol. Lett. 2002; 83(3): 187–96. https://doi.org/10.1016/s0165-2478(02)00081-0
- Li H.C., Yang C.H., Lo S.Y. Hepatitis C viral replication complex. Viruses. 2021; 13(3): 520. https://doi.org/10.3390/v13030520
- Масалова О.В., Леснова Е.И., Андреев С.М., Шершакова Н.Н., Козлов В.В., Пермякова К.Ю. и др. Адъювантное действие дисперсного фуллерена С60 на иммунный ответ против конструкций, имитирующих аминокислотные и нуклеотидные последовательности неструктурного белка NS5B вируса гепатита С. Вопросы вирусологии. 2022; 67(6): 516–26. https://doi.org/10.36233/0507-4088-149 https://elibrary.ru/laaczg
- Liu T., Matsuguchi T., Tsuboi N., Yajima T., Yoshikai Y. Differences in expression of toll-like receptors and their reactivities in dendritic cells in BALB/c and C57BL/6 mice. Infect. Immun. 2002; 70(12): 6638–45. https://doi.org/10.1128/IAI.70.12.6638-6645.2002
- Boonyarattanasoonthorn T., Elewa Y.H.A., Tag-El-Din-Hassan H.T., Morimatsu M., Agui T. Profiling of cellular immune responses to Mycoplasma pulmonis infection in C57BL/6 and DBA/2 mice. Infect. Genet. Evol. 2019; 73: 55–65. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2019.04.019
- Huang H., Even Z., Wang Z., Li L., Erickson A., Golovko M., et al. Proteomics profiling reveals regulation of immune response to Salmonella enterica serovar Typhimurium infection in mice. Infect. Immun. 2023; 91(1): e0049922. https://doi.org/10.1128/iai.00499-22
- Casanova T., Van de Paar E., Desmecht D., Garigliany M.M. Hyporeactivity of alveolar macrophages and higher respiratory cell permissivity characterize DBA/2J mice infected by influenza A virus. J. Interferon Cytokine Res. 2015; 35(10): 808–20. https://doi.org/10.1089/jir.2014.0237
- Srivastava B., Błazejewska P., Hessmann M., Bruder D., Geffers R., Mauel S., et al. Host genetic background strongly influences the response to influenza a virus infections. PLoS One. 2009; 4(3): e4857. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0004857
- Marzec J., Cho H.Y., High M., McCaw Z.R., Polack F., Kleeberger S.R. Toll-like receptor 4-mediated respiratory syncytial virus disease and lung transcriptomics in differentially susceptible inbred mouse strains. Physiol. Genomics. 2019; 51(12): 630–43. https://doi.org/10.1152/physiolgenomics.00101.2019
- Leclerc C., Dériaud E., Megret F., Briand J.P., Van Regenmortel M.H., Deubel V. Identification of helper T cell epitopes of dengue virus E-protein. Mol. Immunol. 1993; 30(7): 613–25. https://doi.org/10.1016/0161-5890(93)90072-j
- Tailor N., Warner B.M., Griffin B.D., Tierney K., Moffat E., Frost K., et al. Generation and characterization of a SARS-CoV-2-susceptible mouse model using adeno-associated virus (AAV6.2FF)-mediated respiratory delivery of the human ACE2 gene. Viruses. 2022; 15(1): 85. https://doi.org/10.3390/v15010085
- Tamiya S., Yoshikawa E., Suzuki K., Yoshioka Y. Susceptibility analysis in several mouse strains reveals robust T-cell responses after mycoplasma pneumoniae infection in DBA/2 mice. Front Cell Infect. Microbiol. 2021; 10: 602453. https://doi.org/10.3389/fcimb.2020.602453
- Gieni R.S., Fang Y., Trinchieri G., Umetsu D.T., DeKruyff R.H. Differential production of IL-12 in BALB/c and DBA/2 mice controls IL-4 versus IFN-gamma synthesis in primed CD4 lymphocytes. Int. Immunol. 1996; 8(10): 1511–20. https://doi.org/10.1093/intimm/8.10.1511
- Saha P., Xiao X., Li Y., Golonka R.M., Abokor A.A., Yeoh B.S., et al. Distinct iron homeostasis in C57BL/6 and Balb/c mouse strains. Physiol. Rep. 2020; 8(9): e14441. https://doi.org/10.14814/phy2.14441
- Watanabe H., Numata K., Ito T., Takagi K., Matsukawa A. Innate immune response in Th1- and Th2-dominant mouse strains. Shock. 2004; 22(5): 460–6. https://doi.org/10.1097/01.shk.0000142249.08135.e9
- Mosley Y.C., Radder J.E., HogenEsch H. Genetic variation in the magnitude and longevity of the IgG subclass response to a diphtheria-tetanus-acellular pertussis (DTaP) vaccine in mice. Vaccines (Basel). 2019; 7(4): 124. https://doi.org/10.3390/vaccines7040124
- Girardin S.E., Boneca I.G., Viala J., Chamaillard M., Labigne A., Thomas G., et al. Nod2 is a general sensor of peptidoglycan through muramyl dipeptide (MDP) detection. J. Biol. Chem. 2003; 278(11): 8869–72. https://doi.org/10.1074/jbc.C200651200
- Girardin S.E., Boneca I.G., Carneiro L.A., Antignac A., Jéhanno M., Viala J., et al. Nod1 detects a unique muropeptide from gram-negative bacterial peptidoglycan. Science. 2003; 300(5625): 1584 7. https://doi.org/10.1126/science.1084677
- Tukhvatulin A.I., Gitlin I.I., Shcheblyakov D.V., Artemicheva N.M., Burdelya L.G., Shmarov M.M., et al. Combined stimulation of Toll-like receptor 5 and NOD1 strongly potentiates activity of NF-κB, resulting in enhanced innate immune reactions and resistance to Salmonella enterica serovar Typhimurium infection. Infect. Immun. 2013; 81(10): 3855–64. https://doi.org/10.1128/IAI.00525-13
- Tukhvatulin A.I., Dzharullaeva A.S., Tukhvatulina N.M., Shcheblyakov D.V., Shmarov M.M., Dolzhikova I.V., et al. Powerful complex immunoadjuvant based on synergistic effect of combined TLR4 and NOD2 activation significantly enhances magnitude of humoral and cellular adaptive immune responses. PLoS One. 2016; 11(5): e0155650. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0155650
- Tukhvatulin A., Dzharullaeva A., Erokhova A., Zemskaya A., Balyasin M., Ozharovskaia T., et al. Adjuvantation of an influenza hemagglutinin antigen with TLR4 and NOD2 agonists encapsulated in poly(D,L-Lactide-Co-Glycolide) nanoparticles enhances immunogenicity and protection against lethal influenza virus infection in mice. Vaccines (Basel). 2020; 8(3): 519. https://doi.org/10.3390/vaccines8030519
- Hedl M., Li J., Cho J.H., Abraham C. Chronic stimulation of Nod2 mediates tolerance to bacterial products. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2007; 104(49): 19440–5. https://doi.org/10.1073/pnas.0706097104
- Pashenkov M.V., Murugina N.E., Budikhina A.S., Pinegin B.V. Synergistic interactions between NOD receptors and TLRs: Mechanisms and clinical implications. J. Leukoc. Biol. 2019; 105(4): 669–80. https://doi.org/10.1002/JLB.2RU0718-290R
- Bagchi A., Herrup E.A., Warren H.S., Trigilio J., Shin H.S., Valentine C., et al. MyD88-dependent and MyD88-independent pathways in synergy, priming, and tolerance between TLR agonists. J. Immunol. 2007; 178(2): 1164–71. https://doi.org/10.4049/jimmunol.178.2.1164
- Magalhaes J.G., Lee J., Geddes K., Rubino S., Philpott D.J., Girardin S.E. Essential role of Rip2 in the modulation of innate and adaptive immunity triggered by Nod1 and Nod2 ligands. Eur. J. Immunol. 2011; 41(5): 1445–55. https://doi.org/10.1002/eji.201040827
- Owen A.M., Luan L., Burelbach K.R., McBride M.A., Stothers C.L., Boykin O.A., et al. MyD88-dependent signaling drives toll-like receptor-induced trained immunity in macrophages. Front. Immunol. 2022; 13: 1044662. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.1044662
Дополнительные файлы
