Сравнительный анализ критериев классификации ряда групп патогенных ДНК- и РНК-содержащих вирусов на основе геномных данных

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

В обзоре рассмотрено обоснование критериев идентификации таксономической принадлежности некоторых групп патогенных ДНК- и РНК-содержащих вирусов на основе результатов секвенирования генома. Проанализированы данные секвенирования геномной нуклеиновой кислоты вирусов, геном которых представлен двухцепочечной ДНК (на примере ортопоксвирусов), одноцепочечной «плюс» РНК (на примере альфавирусов и флавивирусов), одноцепочечной несегментированной «минус» РНК (на примере филовирусов), одноцепочечной сегментированной «минус» РНК (на примере аренавирусов и флебовирусов). Для каждой группы вирусов установлены уровни генетической изменчивости, определяющие отнесение сравниваемых вирусов к таксонам разных порядков.

Об авторах

Татьяна Евгеньевна Сизикова

ФГБУ «48 Центральный научно-исследовательский институт» Минобороны России

Email: 48cnii@mil.ru
ORCID iD: 0000-0002-1817-0126

канд. биол. наук, старший научный сотрудник

Россия, Сергиев Посад

Виталий Николаевич Лебедев

ФГБУ «48 Центральный научно-исследовательский институт» Минобороны России

Email: 48cnii@mil.ru
ORCID iD: 0000-0002-6552-4599

д-р биол. наук, профессор, ведущий научный сотрудник

Россия, Сергиев Посад

Сергей Владимирович Борисевич

ФГБУ «48 Центральный научно-исследовательский институт» Минобороны России

Автор, ответственный за переписку.
Email: 48cnii@mil.ru
ORCID iD: 0000-0002-6742-3919

д-р биол. наук, профессор, академик РАН РФ, начальник института

Россия, Сергиев Посад

Список литературы

  1. Lwoff A., Tournier P. The classification of viruses. Annu. Rev. Microbiol. 1966; 20: 45–74. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.mi.20.100166.000401
  2. Гинцбург А.Л. Генодиагностика инфекционных заболеваний. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. 1998; 75(3): 86–95. EDN: https://elibrary.ru/mozshn
  3. Глик Б., Пастернак Дж. Молекулярная биотехнология. Принципы и применение. Пер. с англ. М.: Мир; 2002.
  4. Алексеева А.Е., Бруснигина Н.Ф. Возможности и перспективы применения методов массивного параллельного секвенирования в диагностике и эпидемиологическом надзоре за инфекционными заболеваниями. Журнал МедиАль. 2014; (2): 6–28. EDN: https://elibrary.ru/sgxcgt
  5. Eisenstein M. Oxford Nanopore announcement sets sequencing sector abuzz. Nat. Biotechnol. 2012; 30(4): 295–6. DOI: https://doi.org/10.1038/nbt0412-295
  6. Кузнецова И.В., Ефременко Д.В., Куличенко А.Н. Применение принципов многофакторного генетического анализа возбудителей инфекционных болезней в работе СПЭБ Роспотребнадзора в период массовых мероприятий. Проблемы особо опасных инфекций. 2018; (2): 68–72. DOI: https://doi.org/10.21055/0370-1069-2018-2-68-72 EDN: https://elibrary.ru/xrvhfz
  7. Behbehani A.M. The smallpox story: life and death of old disease. Microbiol. Rev. 1983; 47(4): 455–505. DOI: https://doi.org/10.1128/mr.47.4.455-509.1983
  8. Онищенко Г.Г., Максимов В.А., Воробьев А.А., Подкуйко В.Н., Мельников С.А. Актуальность возврата к оспопрививанию: проблемы и перспективы. Вестник Российской академии медицинских наук. 2006; (7): 32–8. EDN: https://elibrary.ru/htvfyn
  9. Lofquist J.M., Weimert N.A., Hayney M.S. Smallpox: A review of clinical disease and vaccination. Am. J. Heath Syst. Pharm. 2003; 60(8): 749–56. DOI: https://doi.org/10.1093/ajhp/60.8.749
  10. Booss J., Davis L.E. Smallpox and smallpox vaccination. Neurological implications. Neurology. 2003; 60(8): 1241–5. DOI: https://doi.org/10.1212/01.wnl.0000063319.64515.6b
  11. Fenner F. Smallpox and Its Eradication. Geneva: WHO; 1988.
  12. Михеев М.В., Фещенко В.М., Щелкунов С.Н. Филогенетический анализ хемокинсвязывающего белка ортопоксвирусов. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2004; (1): 29–36. EDN: https://elibrary.ru/okkpev
  13. Сафронов П.Ф., Рязанкина О.И., Петров Н.А., Тотменин А.В., Колосова И.В., Щелкунов С.Н. Структурно-функциональная организация генома вируса оспы коров, штамм GRI-90. Сообщение 2. Сравнительный анализ структуры левого видоспецифического района генома ортопоксвирусов. Молекулярная биология. 1999; 33(2): 291–302.
  14. Маренникова С.С., Щелкунов С.Н. Патогенные для человека ортопоксвирусы. М.; 1998.
  15. Сафронов П.Ф., Тотменин А.В., Рязанкина О.И., Щелкунов С.Н. Структурно-функциональная организация генома вируса оспы коров, штамм GRI-90. Сообщение 3. Функциональная характеристика левого видоспецифического района генома ортопоксвирусов. Молекулярная биология. 1999; 33(2): 303–13.
  16. Emerson G.L., Li Y., Frace M.A., Olsen-Rasmussen M.A., Khristova M.L., Govil D., et al. The phylogenetics and ecology of the orthopoxviruses endemic to North America. PLoS One. 2009; 4(10): e7666. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0007666
  17. Mauldin M.R., Antwerpen M., Emerson G.L., Li Y., Zoeller G., Carroll D.S., et al. Cowpox virus: what’s in a name? Viruses. 2017; 9(5): 101. DOI: https://doi.org/10.3390/v9050101
  18. Springer Y.P., Hsu C.H., Werle Z.R., Olson L.E., Cooper M.P., Castrodale L.J., et al. Novel orthopoxvirus infection in an Alaska resident. Clin. Infect. Dis. 2017; 64(12): 1737–41. DOI: https://doi.org/10.1093/cid/cix219
  19. Vora N.M., Li Y., Geleishvili M., Emerson G.L., Khmaladze E., Maghlakelidze G., et al. Human infection with a zoonotic orthopoxvirus in the country of Georgia. N. Engl. J. Med. 2015; 372(13): 1223–30. DOI: https://doi.org/10.1056/NEJMoa1407647
  20. Cardeti G., Gruber C.E.M., Eleni C., Carletti F., Castilletti C., Manna G., et al. Fatal outbreak in Tonkean macaques caused by possibly novel orthopoxvirus, Italy, January 2015. Emerg. Infect. Dis. 2017; 23(12): 1941–9. DOI: https://doi.org/10.3201/ eid2312.162098
  21. Gao J., Gigante C., Khmaladze E., Liu P., Tang S., Wilkins K., et al. Genome sequences of Akhmeta virus, an early divergent old world orthopoxvirus. Viruses. 2018; 10(5): 252. DOI: https://doi.org/10.3390/v10050252
  22. Lanave G., Dowgier G., Decaro N., Albanese F., Brogi E., Parisi A., et al. Novel orthopoxvirus and lethal disease in Cat, Italy. Emerg. Infect. Dis. 2018; 24(9): 1665–73. DOI: https://doi.org/10.3201/eid2409.171283
  23. Волчков В.Е., Волчкова В.А., Нетесов С.В. Полная нуклеотидная последовательность генома вируса ВСЭЛ. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 1991; (5): 8–15.
  24. Agular P., Adams A.P., Suarez V., Beingolea L., Vargas J., Manock S., et al. Genetic characterization of VEE virus from Bolivia, Ecuador and Peru: identification of a new subtype ID lineage. PLoS Negl. Trop. Dis. 2009; 3(9): e514. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0000514
  25. Chang G.J., Trent D.W. Nucleotide sequence of the genomic region encoding the 26S mRNA of EEE virus and the deduced aminoacid sequence of the viral structural proteins. J. Gen. Virol. 1987; 62(Pt. 8): 2129–42. DOI: https://doi.org/10.1099/0022-1317-68-8-2129.
  26. Weaver S.C., Pfeffer M., Marriott K., Kang W., Kinney R.M. Genetic evidence for the origins of Venezuelan equine encephalitis virus subtype IAB outbreaks. Am. J. Trop. Med. Hyg. 1999; 60(3): 441–8. DOI: https://doi.org/10.4269/ajtmh.1999.60.441
  27. Arrigo N.C., Adams A.P., Weaver S.C. Evolutionary patterns of eastern equine encephalitis virus in North versus South America suggest ecological differences and taxonomic revision. J. Virol. 2010; 84(2): 1014–25. DOI: https://doi.org/10.1128/JVI.01586-09
  28. Forrester N.L., Weitheim J.O., Dugan V.G., Auguste A.J., Lin D., Adams A.P., et al. Evolution and spread of VEE complex alphavirus in the Americas. PLoS Negl. Trop. Dis. 2017; 11(8): e0005693. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0005693
  29. Weaver S.C., Winegar R., Manger I.D., Forrester N.L. Alpaviruses: Population genetics and determinants emergence. Antiviral. Res. 2012; 94(3): 242–57. DOI: https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2012.04.002
  30. Powers A.M., Huang H.V., Roehrig J.T., Strauss E.G., Weaver S.C. Togaviridae. In: King A.M.G., Adams M.J., Carstens E.B., Lefcovitz E.J., eds. Virus Taxonomy, Ninth Report of International Committee on taxonomy of Viruses. Oxford: Elsevier; 2011: 1103–10.
  31. Kinney R.M., Pfeffer M., Tsuchiya K.R., Chang G.J., Roehrig J.T. Nucleotide sequences of 26S mRNAs of the viruses, defining the VEE antigenic complex. Am. J. Trop. Med. Hyg. 1998; 59(6): 952–64. DOI: https://doi.org/10.4269/ajtmh.1998.59.952
  32. Quiroz E., Aguilar P.V., Cisneros J., Tesh R.B., Weaver S.C. Venezuelan equine encephalitis in Panama: fatal endemic disease and genetic diversity of etiologic viral strains. PLoS Negl. Trop. Dis. 2009; 3(6): e472. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0000472
  33. Brault A.C., Powers A.M., Weaver S.C. Vector infection determinants of Venezuelan equine encephalitis virus reside within the E2 envelope glycoprotein. J. Virol. 2002; 76(12): 6387–92. DOI: https://doi.org/10.1128/jvi.76.12.6387-6392.2002
  34. Brault A.C., Powers A.M., Holmes E.C., Woelk C.H., Weaver S.C. Positively-charged amino acid substitutions in the E2 envelope glycoprotein are associated with the emergence of VEE virus. J. Virol. 2002; 76(4): 1718–30. DOI: https://doi.org/10.1128/jvi.76.4.1718-1730.2002
  35. Greene I.P., Paessler S., Austgen L., Anischenko M., Brault A.C., Bowen R.A., et al. Envelope glycoprotein mutations mediate equine amplification and virulence of epizootic VEE virus. J. Virol. 2005; 79(14): 9128–33. DOI: https://doi.org/10.1128/JVI.79.14.9128-9133.2005
  36. Anischenko M., Bowen R.A. Paessler S., Austgen L., Greene I.P., Weaver S.C. Venezuelan encephalitis emergence mediated by a phylogenetically predicted virus mutation. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2006; 103(13): 4994–9. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.0509961103
  37. Agular P.V., Estrada-Franco J.C., Navarro-Lopes R., Ferro C., Haddow A.D., Weaver S.C. Endemic VEE in the Americas: Hidden under dengue umbrella. Future Virol. 2011; 6(6): 721–40. DOI: https://doi.org/10.2217/FVL.11.5
  38. Sharma A., Knollmann-Ritchel B. Current understanding of molecular basis of VEE virus pathogenesis and vaccine development. Viruses. 2019; 11(2): 164. DOI: https://doi.org/10.3390/v11020164
  39. Lednicky J.A., White S.K., Mavian C.N., Badry M.A., Telisma T., Salemi M., et al. Emergence of Madariaga virus as cause of acute febrile illness of children, Haiti 2015. PLoS Negl. Trop. Dis. 2019; 13(1): e006972. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0006972
  40. Edgar R.C. MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput. Nucleic Acids Res. 2004; 32(5): 1792–7. DOI: https://doi.org/10.1093/nar/gkh340
  41. Barrows N.J., Campos R.K., Liao K., Prasanth K.R., Soto-Acosta R., Yeh S., et al. Biochemistry and molecular biology of flaviviruses. Chem. Rev. 2018; 118(8): 4448–82. DOI: https://doi.org/10.1021/acs.chemrev.7b00719
  42. Pierson T.C., Diamond M.S. Flaviviruses. In: Knipe D.M., Howley P.M., eds. Field virology. Philadelphia; 2013: 714–94.
  43. Karabatsos N. International Catalogue of Arboviruses: Including Certain other Viruses of Vertebrates. San Antonio: Published for the Subcommittee on Information Exchange of the American Committee on Arthropod-borne Viruses by the American Society of Tropical Medicine and Hygiene; 1985.
  44. Kuno G., Chang G.J., Tsuchiya K.R., Karabatsos N., Cropp C.B. Phylogeny of the genus Flavivirus. J. Virol. 1998; 72(1): 73–83. DOI: https://doi.org/10.1128/JVI.72.1.73-83.1998
  45. de Souza Lopes O., de Abreu Sacchetta L., Coimbra T.L., Pinto G.H., Glasser C.M. Emergence of a new arbovirus disease in Brazil. II. Epidemiologic studies on 1975 epidemic. Am. J. Epidemiol. 1978; 108(5): 394–401. DOI: https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.aje.a112637
  46. Saivish M.V., da Costa V.G., da Silva R.A., Dutra da Silva G.C., Menezes G., Moreli M.L. Rocio Virus: An updated view on an elusive flavivirus. Viruses. 2021; 13(11): 2293. DOI: https://doi.org/10.3390/v13112293
  47. Mitchell C.J., Monath T.P., Cropp C.B. Experimental transmission of Rocio virus by mosquitoes. Am. J. Trop. Med. Hyg. 1981; 30(2): 465–72. DOI: https://doi.org/10.4269/ajtmh.1981.30.465
  48. Tiriba A.C., Miziara A.M., Lorenço R., da Costa R.B., Costa C.S., Pinto G.H. Primary human epidemic encephalitis induced by Arbovirus found at the sea shore south of the State of São Paulo. Clinical study in an emergency hospital. AMB Rev. Assoc. Med. Bras. 1976; 22(11): 415–20. (in Portuguese)
  49. Medeiros D.B., Nunes M.R., Vasconcelos P.F., Chang G.J., Kuno G. Complete genome characterization of Rocio virus (Flavivirus: Flaviviridae), a Brazilian flavivirus isolated from a fatal case of encephalitis during an epidemic in Sao Paulo state. J. Gen. Virol. 2007; 88(8): 2237-46. DOI: https://doi.org/10.1099/vir.0.82883-0
  50. Faye O., Freire C.C., Imarino A., Faye O., Oliveira J.V.C., Diallo M., et al. Molecular evolution of Zika virus during its emerging in the 20th century. PLoS Negl. Trop. Dis. 2014; 8(1): е2636. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0002636
  51. Kiley M.P., Bowen E.T., Eddy G.A., Isaacson M., Johnson K.M., McCormick J.B., et al. Filoviridae: A taxonomic home for Marburg and Ebola viruses? Intervirology. 1982; 18(1-2): 24–32. DOI: https://doi.org/10.1159/000149300
  52. Kuhn J.H., Becker S., Ebihara H., Geisbert T.W., Johnson K.M., Kawaoka Y., et al. Proposal for a revised taxonomy of the family Filoviridae: classification, names of taxa and viruses, and virus abbreviations. Arch. Virol. 2010; 155(12): 2083–103. DOI: https://doi.org/10.1007/s00705-010-0814-x
  53. Biedenkopf N., Bukreyev A., Chandran K., Di Paola N., Formenty P.B.H., Griffiths A., et al. Renaming of genera Ebolavirus and Marburgvirus to Orthoebolavirus and Orthomarburgvirus, respectively, and introduction of binomial species names within family Filoviridae. Arch. Virol. 2023; 168(8): 220. DOI: https://doi.org/10.1007/s00705-023-05834-2
  54. Kuhn J.H., Adachi T., Adhikari N.K.J., Arribas J.R., Bah I.E., Bausch D.G., et al. New filovirus disease classification and nomenclature. Nat. Rev. Microbiol. 2019; 17(5): 261–3. DOI: https://doi.org/10.1038/s41579-019-0187-4
  55. Le Guenno B., Formenty P., Wyers M., Gounon P., Walker F., Boesch C. Isolation and partial characterisation of a new strain of Ebola virus. Lancet. 1995; 345(8960): 1271–4. DOI: https://doi.org/10.1016/s0140-6736(95)90925-7
  56. Towner J.S., Sealy T.K., Khristova M.L., Albarino C.G., Conlan S., Reeder S.A., et al. Newly discovered Ebola virus associated with hemorrhagic fever outbreak in Uganda. PLoS Pathog. 2008; 4(11): e1000212. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1000212
  57. Miranda M.E.G., Miranda N.L.J. Reston ebolavirus in humans and animals in the Philippines: A review. J. Infect. Dis. 2011; 204(3): 757–60. DOI: https://doi.org/10.1093/infdis/jir296
  58. Goldstein T., Anthony S.J., Gbakima A., Bird B.H., Bangura J., Tremeau-Bravard A. The discovery of Bombali virus adds further support for bats as hosts of ebolaviruses. Nat. Microbiol. 2018; 3(10): 1084–9. DOI: https://doi.org/10.1038/s41564-018-0227-2
  59. de La Vega M.A., Stein D., Kobinger G.P. Ebolavirus evolution: past and present. PLoS Pathog. 2015; 11(11): e1005221. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1005221
  60. Towner J.S., Khristova M.L., Sealy T.K., Vincent M.J., Erickson B.R., Bawies D.A., et al. Marburg virus genomics and association with a large hemorrhagic fever outbreak in Angola. J. Virol. 2006; 80(13): 6497–516. DOI: https://doi.org/10.1128/JVI.00069-06
  61. Carroll S.A., Towner J.S., Sealy T.K., McMullan L.K., Khristova M.L., Burt F.J., et al. Molecular evolution of viruses of the family Filoviridae based on 97 whole-genome sequences. J. Virol. 2013; 87(5): 2608–16. DOI: https://doi.org/10.1128/jvi.03118-12
  62. He B., Feng Y., Zhang H., Xu L., Yang W., Zhang Y., et al. Filovirus RNA in fruit bats, China. Emerg. Infect. Dis. 2015; 21(9): 1675–7. DOI: https://doi.org/10.3201/eid2109.150260
  63. Negredo A., Palacios G., Vazquez-Moron S., Gonzales F., Dopazo H., Molero F., et al. Discovery of an Ebola-like filovirus in Europe. PLoS Pathog. 2011; 7(10): e1002304. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1002304
  64. Di Paola N., Sanchez-Lockhart M., Zeng X., Kuhn J.H., Palacios G. Viral genomics in Ebola virus research. Nat. Rev. Microbiol. 2020; 18(7): 365–78. DOI: https://doi.org/10.1038/s41579-020-0354-7
  65. Southern P.J. Arenaviridae: The viruses and their replication. In: Fields B.N., Knipe D.M., Howley P.M. Field’s Virology. Volume 1. Philadelphia: Lippincott-Raven Publishers; 1996: 1505–19.
  66. Hallam S.J., Koma T., Maruyama J., Paessler S. Review of Mammarenavirus Biology and Replication. Front. Microbiol. 2018; 9: 1751. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.01751
  67. Munning J.T., Forester N., Paesler S.J.T. Lassa virus isolates from Mali and Ivory Coast represent an emerging fifth lineage. Front. Microbiol. 2015; 6: 1037. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2015.01037
  68. Whitmer S.L.M., Strecker T. Cadar D., Dienes H.P., Faber K., Patel K., et al. New lineage of Lassa virus Togo 2016. Emerg. Infect. Dis. 2018; 24(3): 596–602. DOI: https://doi.org/10.3201/eid2403.171905
  69. Charrel R.N., Feldmann H., Fulhorst C.F., Khelifa R., de Chesse R., de Lambalerie X. Phylogeny of New World arenaviruses based on the complete coding sequences of the small genomic segment identified an evolutionary lineage produced by intrasegmental recombination. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2002; 296(5): 1118–24. DOI: https://doi.org/10.1016/s0006-291x(02)02053-3
  70. Li A., Liu L., Wu W., Liu Y., Huang X., Li C., et al. Molecular evolution and genetic diversity analysis of SFTS virus based on next-generation sequencing. Biosaf. Health. 2021; 3(02): 105–15. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bsheal.2021.02.002
  71. Ning Y.J., Feng K., Min Y.Q., Cao W.C., Wang M., Deng F., et al. Disruption of type I interferon signaling by the nonstructural protein of severe fever with thrombocytopenia syndrome virus via the hijacking of STAT2 and STAT1 into inclusion bodies. J. Virol. 2015; 89(8): 4227–36. DOI: https://doi.org/10.1128/JVI.00154-15
  72. Qu B., Qi X., Wu X., Liang M., Li C., Cardona C.J., et al. Supression of the interferon and NF-kB responses by severe fever with thrombocytopenia syndrome virus. J. Virol. 2012; 86(16): 8388–401. DOI: https://doi.org/10.1128/JVI.00612-12
  73. Huang X., Liu L., Du Y., Wu W., Wang H., Su J., et al. The evolutionary history and spatiotemporal dynamics of the fever, thrombocytopenia and leukocytopenia syndrome virus (FTLSV) in China. PLoS Negl. Trop. Dis. 2014; 8(10): e3237. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0003237
  74. Lam T.T., Liu W., Bowden T.A., Cui N., Zhuang L., Liu K., et al. Evolutionary and molecular analysis of the emergent severe fever with thrombocytopenia syndrome virus. Epidemics. 2013; 5(1): 1–10. DOI: https://doi.org/10.1016/j.epidem.2012.09.002
  75. Zhang Y.Z., Zhou D.J., Qin X.C., Tian J.H., Xiong Y., Wang J.B., et al. The ecology, genetic diversity, and phylogeny of Huaiyangshan virus in China. J. Virol. 2012; 86(5): 2864-8. DOI: https://doi.org/10.1128/JVI.06192-11
  76. Xu B., Liu L., Huang X., Ma H., Zhang Y., Du Y., et al. Metagenomic analysis of fever, thrombocytopenia and leucopenia syndrome (FTLS) in Henen province, China: Discovery of a new Bunyavirus. PLoS Patog. 2011; 7(11): e1002369. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1002369
  77. Liu L., Chen W., Yang Y., Jiang Y. Molecular evolution of fever, thrombocytopenia and leukocytopenia virus (FTLSV) based on whole-genome sequences. Infect. Genet. Evol. 2016; 39: 55-63. DOI: https://doi.org/10.1016/j.meegid.2015.12.022
  78. Lefkowitz E.J., Dempsey D.M., Hendrickson R.C., Orton R.J., Siddell S.G., Smith D.B. Virus taxonomy: the database of the International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV). Nucleic Acids Res. 2018; 46(D1): D708–17. DOI: https://doi.org/10.1093/nar/gkx932

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рисунок. Положение вирусов Ахмета, Аляска и оспы кошек на филогенетическом дереве ортопоксвирусов Старого Света

Скачать (379KB)
Метаданные

© Сизикова Т.Е., Лебедев В.Н., Борисевич С.В., 2024

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».