Структурные мотивы и трёхмерные модели хеликазы (NS3) и РНК-зависимой РНК-полимеразы (NS5) флавиподобного Kindia tick virus (unclassified Flaviviridae)
- Авторы: Гладышева А.А.1,2, Гладышева А.В.1, Терновой В.А.1, Локтев В.Б.1,2
-
Учреждения:
- ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
- ФГАОУ ВО «Новосибирский национальный исследовательский государственный университет» Министерства образования и науки РФ
- Выпуск: Том 68, № 1 (2023)
- Страницы: 7-17
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://journal-vniispk.ru/0507-4088/article/view/125761
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-142
- ID: 125761
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Введение. Kindia tick virus (KITV) – недавно обнаруженный сегментированный неклассифицированный флавиподобный вирус семейства Flaviviridae, переносимый клещами и предположительно патогенный для человека.
Цель работы – поиск структурных мотивов вирусных полипептидов и моделирование пространственной структуры вирусных белков NS3 и NS5 многокомпонентного флавиподобного KITV.
Материалы и методы. Использованы полногеномные последовательности KITV, вирусов Зика, денге, японского энцефалита, Западного Нила и жёлтой лихорадки из базы данных GenBank. Биоинформатический анализ выполнен с помощью пакета программ AlphaFold2, RCSB PDB, UCSF Chimera, NCBI BLAST, MOTIF Search, Protomenal, Unipro UGENE, ESPript.
Результаты. Установлено, что структурные белки VP1–VP3 KITV не имеют аналогов с известными в настоящее время вирусными белками. Получены пространственные модели неструктурных белков NS3 и NS5 KITV, обладающие высоким уровнем топологического сходства с белками вирусов клещевого энцефалита и денге. У NS5 KITV обнаружены характерные для флавивирусов домены метилтрансферазы и РНК-зависимой РНК-полимеразы. Последний представлен субдоменами пальцев, ладони и большого пальца, а также типичными структурными мотивами A, B, C, D, E, F. Идентифицированы хеликазный домен и основные структурные мотивы I, Ia, II, III, IV, IVa, V, VI в NS3 KITV. Домена протеазы, типичного для NS3 флавивирусов, обнаружено не было. В аминокислотных последовательностях NS3 и NS5 KITV обнаружены высококонсервативные последовательности протяжённостью 3–7 аминокислот, характерные для KITV и флавивирусов. Картировано восемь аминокислотных замен, характерных для KITV/2018/1 и KITV/2018/2, пять из них локализованы в альфа-спиралях, три – в свободных петлях неструктурных белков.
Заключение. Полученные результаты свидетельствуют о структурном и функциональном сходстве белков NS3 и NS5 сегментированного флавиподобного KITV с флавивирусами, что подтверждает их возможную эволюционную взаимосвязь и таксономическое единство.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
А. А. Гладышева
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор); ФГАОУ ВО «Новосибирский национальный исследовательский государственный университет» Министерства образования и науки РФ
Email: gladysheva_aa@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0002-9490-1939
магистрант, стажер исследователь отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. Кольцово; 630090, г. НовосибирскА. В. Гладышева
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Автор, ответственный за переписку.
Email: gladysheva_av@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0002-7396-3954
SPIN-код: 5214-3421
Scopus Author ID: 57194590629
аспирант, младший научный сотрудник отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. КольцовоВ. А. Терновой
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: tern@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0003-1275-171X
к.б.н., ведущий научный сотрудник отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. КольцовоВ. Б. Локтев
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор); ФГАОУ ВО «Новосибирский национальный исследовательский государственный университет» Министерства образования и науки РФ
Email: loktev@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0002-0229-321X
д.б.н., профессор, заведующий отделом молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. Кольцово; 630090, г. НовосибирскСписок литературы
- Ternovoi V.A., Protopopova E.V., Shvalov A.N., Kartashov M.Yu., Bayandin R.B., Tregubchak T.V., et al. Complete coding genome sequence for a novel multicomponent Kindia tick virus detected from ticks collected in Guinea. bioRxiv. 2020. Preprint. https://doi.org/10.1101/2020.04.11.036723
- Qin X.C., Shi M., Tian J.H., Lin X.D., Gao D.Y., He J.R., et al. A tick-borne segmented RNA virus contains genome segments derived from unsegmented viral ancestors. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2014; 111(18): 6744–9. https://doi.org/10.1073/pnas.1324194111
- Ladner J.T., Wiley M.R., Beitzel B., Auguste A.J., Dupuis A.P., Lindquist M.E., et al. A multicomponent animal virus isolated from mosquitoes. Cell Host Microbe. 2016; 20(3): 357–67. https://doi.org/10.1016/j.chom.2016.07.011
- Kholodilov I.S., Litov A.G., Klimentov A.S., Belova O.A., Polienko A.E., Nikitin N.A., et al. Isolation and characterisation of Alongshan virus in Russia. Viruses. 2020; 12(4): 362. https://doi.org/10.3390/v12040362
- Zhang X., Wang N., Wang Z., Liu Q. The discovery of segmented flaviviruses: implications for viral emergence. Curr. Opin. Virol. 2020; 40: 11–8. https://doi.org/10.1016/j.coviro.2020.02.001
- Kholodilov I.S., Belova O.A., Morozkin E.S., Litov A.G., Ivannikova A.Y., Makenov M.T., et al. Geographical and tick-dependent distribution of flavi-like Alongshan and Yanggou tick viruses in Russia. Viruses. 2021; 13(3): 458. https://doi.org/10.3390/v13030458
- Jia N., Liu H.B., Ni X.B., Bell-Sakyi L., Zheng Y.C., Song J.L., et al. Emergence of human infection with Jingmen tick virus in China: A retrospective study. EBioMedicine. 2019; 43: 317–24. https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2019.04.004
- Терновой В.А., Гладышева А.В., Семенцова А.О., Зайковская А.В., Волынкина А.С., Котенев Е.С. и др. Обнаружение РНК нового многокомпонентного вируса у больных Крымской-Конго геморрагической лихорадкой на юге России. Вестник Российской академии медицинских наук. 2020; 75(2): 192–34. https://doi.org/10.15690/vramn1192
- Emmerich P., Jakupi X., von Possel R., Berisha L., Halili B., Günther S., et al. Viral metagenomics, genetic and evolutionary characteristics of Crimean-Congo hemorrhagic fever orthonairovirus in humans, Kosovo. Infect. Genet. Evol. 2018; 65: 6–11. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2018.07.010
- Gao X., Zhu K., Wojdyla J.A., Chen P., Qin B., Li Z., et al. Crystal structure of the NS3-like helicase from Alongshan virus. IUCrJ. 2020; 7(Pt. 3): 375–82. https://doi.org/10.1107/S2052252520003632
- Robert X., Gouet P. Deciphering key features in protein structures with the new ENDscript server. Nucleic Acids Res. 2014; 42(W1): W320–4. https://doi.org/10.1093/nar/gku316
- Jumper J., Evans R., Pritzel A., Green T., Figurnov M., Ronneberger O., et al. Highly accurate protein structure prediction with AlphaFold. Nature. 2021; 596(7873): 583–9. https://doi.org/10.1038/s41586-021-03819-2
- Pettersen E.F., Goddard T.D., Huang C.C., Couch G.S., Greenblatt D.M., Meng E.C., et al. UCSF Chimera? A visualization system for exploratory research and analysis. J. Comput. Chem. 2004; 25(13): 1605–12. https://doi.org/10.1002/jcc.20084
- Tunyasuvunakool K., Adler J., Wu Z., Green T., Zielinski M., Žídek A., et al. Highly accurate protein structure prediction for the human proteome. Nature. 2021; 596(7873): 590–6. https://doi.org/10.1038/s41586-021-03828-1
- Guo J.J., Lin X.D., Chen Y.M., Hao Z.Y., Wang Z.X., Yu Z.M., et al. Diversity and circulation of Jingmen tick virus in ticks and mammals. Virus Evol. 2020; 6(2): veaa051. https://doi.org/10.1093/ve/veaa051
- Du Pont K.E., McCullagh M., Geiss B.J. Conserved motifs in the flavivirus NS3 RNA helicase enzyme. Wiley Interdiscip. Rev RNA. 2022; 13(2): e1688. https://doi.org/10.1002/wrna.1688
- Dubankova A., Boura E. Structure of the yellow fever NS5 protein reveals conserved drug targets shared among flaviviruses. Antiviral Res. 2019; 169: 104536. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2019.104536
- Duan Y., Zeng M., Jiang B., Zhang W., Wang M., Jia R., et al. Flavivirus RNA-dependent RNA polymerase interacts with genome UTRs and viral proteins to facilitate flavivirus RNA replication. Viruses. 2019; 11(10): 929. https://doi.org/10.3390/v11100929
- Lu G., Gong P. A structural view of the RNA-dependent RNA polymerases from the Flavivirus genus. Virus Res. 2017; 234: 34–43. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2017.01.020
- Potapova U., Feranchuk S., Leonova G., Belikov S. The rearrangement of motif F in the flavivirus RNA-directed RNA polymerase. Int. J. Biol. Macromol. 2018; 108: 990–8. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2017.11.009
Дополнительные файлы
