Нормативно-правовое регулирование медицинской помощи по профилю «косметология» в Российской Федерации

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Теоретической и методологической базой проведённого исследования служат научные труды, теоретико-методологические разработки, актуальные публикации отечественных учёных, официальные нормативно-правовые акты и описание их применения в практической деятельности медицинских организаций, оказывающих услуги по профилю «косметология».

Целью исследования было изучение работ, посвящённых наиболее актуальным вопросам нормативно-правового регулирования оказания медицинской помощи населению Российской Федерации по профилю «косметология», выявление основных проблем, связанных с правовой регламентацией отрасли, и обобщение предложений медицинских организаций по её совершенствованию.

Применена методология обзорного исследования, которая позволяет выявлять и обобщать известную литературу по данной теме независимо от вида публикации и дизайна исследования. Представлен анализ нормативно-правового регулирования деятельности сотрудников и медицинских организаций, оказывающих услуги в сфере косметологии.

Выполнив первоначальный поиск литературы, авторы провели анализ, сопоставление, обобщение и систематизацию опубликованной информации. Это позволило распределить полученные данные по нескольким ключевым направлениям: нормативно-правовое регулирование отечественной косметологии — экскурс в историю; современные требования к деятельности врача применительно к медицинской косметологической помощи.

Авторы провели контент-анализ использования медицинскими организациями регионов Российской Федерации нормативно-правовой базы отрасли «косметология»; оценили её влияние на систему оказания косметологической помощи населению на современном этапе; выявили ряд проблем, связанных с правовой регламентацией деятельности медицинских организаций косметологического профиля; обобщили предложения по её совершенствованию.

Об авторах

Алексей Алексеевич Кубанов

Государственный научный центр дерматовенерологии и косметологии

Email: alex@cnikvi.ru
ORCID iD: 0000-0002-7625-0503
SPIN-код: 8771-4990

д.м.н., профессор

Россия, Москва

Ольга Александровна Колсанова

Медицинская клиника «Нью Лайф»

Email: kosmetologso@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0301-6310
SPIN-код: 6128-3388

к.м.н

Россия, Самара

Ольга Борисовна Чертухина

Самарский государственный медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: o.b.chertukhina@samsmu.ru
ORCID iD: 0000-0003-2230-7292
SPIN-код: 1962-4682

д.м.н., профессор

Россия, Самара

Список литературы

  1. Алиева А.М., Резник Е.В., Гасанова Э.Т., и др. Клиническое значение определения биомаркеров крови у больных с хронической сердечной недостаточностью // Архивъ внутренней медицины. 2018. Т. 8, № 5. С. 333–345. doi: 10.20514/2226-6704-2018-8-5-333-345
  2. Алиева А.М., Пинчук Т.В., Алмазова И.И., и др. Клиническое значение определения биомаркера крови ST2 у больных с хронической сердечной недостаточностью // Consilium Medicum. 2021. Т. 23, № 6. С. 522–526. doi: 10.26442/20751753.2021.6.200606
  3. Алиева А.М., Байкова И.Е., Кисляков В.А., и др. Галектин-3: диагностическая и прогностическая ценность определения у пациентов с хронической сердечной недостаточностью // Терапевтический архив. 2019. Т. 91, № 9. С. 145–149. doi: 10.26442/00403660.2019.09.000226
  4. Алиева А.М., Алмазова И.И., Пинчук Т.В., и др. Фракталкин и сердечно-сосудистые заболевания // Consilium Medicum. 2020. Т. 22, № 5. С. 83–86. doi: 10.26442/20751753.2020.5.200186
  5. Kuro-o M., Matsumura Y., Aizawa H., et al. Mutation of the mouse klotho gene leads to a syndrome resembling ageing // Nature. 1997. Vol. 390, N. 6655. P. 45–51. doi: 10.1038/36285
  6. Тимощенко О.В., Никитин Ю.П. Белок Клото и атеросклероз // Атеросклероз. 2017. Т. 13, №4. С. 38-41. doi: 10.15372/ATER20170406
  7. Masuda H., Chikuda H., Suga T., et al. Regulation of multiple ageing-like phenotypes by inducible klotho gene expression in klotho mutant mice // Mech Ageing Dev. 2005. Vol. 126, N. 12. P. 1274–1283. doi: 10.1016/j.mad.2005.07.007
  8. Bi X., Yang K., Zhang B., Zhao J. The protective role of Klotho in CKD-associated cardiovascular disease // Kidney Dis. 2020. Vol. 6, N. 6. P. 395–406. doi: 10.1159/000509369
  9. Matsumura Y., Aizawa H., Shiraki-Iida T., et al. Identification of the human klotho gene and its two transcripts encoding membrane and secreted klotho protein // Biochem Biophys Res Commun. 1998. Vol. 242, N. 3. P. 626–630. doi: 10.1006/bbrc.1997.8019
  10. Bloch L., Sineshchekova O., Reichenbach D., et al. Klotho is a substrate for alpha-, beta- and gamma-secretase // FEBS Lett. 2009. Vol. 583, N 19. P. 3221–3224. doi: 10.1016/j.febslet.2009.09.009
  11. Veronesi F., Borsari V., Cherubini A., Fini M. Association of Klotho with physical performance and frailty in middle-aged and older adults: a systematic review // Exp Gerontol. 2021. Vol. 154. P. 111518. doi: 10.1016/j.exger.2021.111518
  12. Tomo S., Birdi A., Yadav D., et al. Klotho: a possible role in the pathophysiology of nephrotic syndrome // EJIFCC. 2022. Vol. 33, N 1. P. 3–10.
  13. Van Husen M., Fischer A.K., Lehnhardt A., et al. Fibroblast growth factor 23 and bone metabolism in children with chronic kidney disease // Kidney Int. 2010. Vol. 78, N 2. P. 200–206. doi: 10.1038/ ki.2010.107
  14. Andrukhova O., Smorodchenko A., Egerbacher M., et al. FGF23 promotes renal calcium reabsorption through the TRPV5 channel // EMBO J. 2014. Vol. 33, N 3. P. 229–246. doi: 10.1002/embj.201284188
  15. Yamazaki Y., Imura A., Urakawa I., et al. Establishment of sandwich ELISA for soluble alpha-Klotho measurement: аge-dependent change of soluble alpha-Klotho levels in healthy subjects // Biochem Biophys Res Commun. 2010. Vol. 398, N 3. P. 513–518. doi: 10.1016/j.bbrc.2010.06.110
  16. Pedersen L., Pedersen S.M., Brasen C.L., Rasmussen L.M. Soluble serum Klotho levels in healthy subjects. Comparison of two different immunoassays // Clin Biochem. 2013. Vol. 46, N 12. P. 1079–1083. doi: 10.1016/j.clinbiochem.2013.05.046
  17. Тюренков И.Н., Перфилова В.Н., Нестерова А.А., Глинка Г.Ю. Белок Клото и сердечно-сосудистая система // Биохимия. 2021. Т. 86, № 2. С. 158–174. doi: 10.31857/S0320972521020020
  18. Kim J., Hwang K., Park K., et al. Biological role of anti-aging protein Klotho // J Lifestyle Med. 2015. Vol. 5, N 1. P. 1–6. doi: 10.15280/jlm.2015.5.1.1
  19. Dalton G.D., Xie J., An S., Huang C. New insights into the mechanism of action of soluble Klotho // Front Endocrinol (Lausanne). 2017. Vol. 8. P. 323. doi: 10.3389/fendo.2017.00323
  20. Doi S., Zou Y., Togao O., et al. Klotho inhibits transforming growth factor-β1 (TGF-β1) signaling and suppresses renal fibrosis and cancer metastasis in mice // J Biol Chem. 2011. Vol. 286, N 10. P. 8655–8665. doi: 10.1074/jbc.M110.174037
  21. Olejnik A., Franczak A., Krzywonos-Zawadzka A., et al. The biological role of Klotho protein in the development of cardiovascular diseases // Biomed Res Int. 2018. P. 5171945. doi: 10.1155/2018/5171945
  22. Моршнева А.В. Транскрипционные факторы FoxO как много функциональные регуляторы клеточных процессов // Цито логия. 2020. Т. 62, № 10. С. 687–698. doi: 10.31857/S0041377120100041
  23. Cui W., Leng B., Wang G. Klotho protein inhibits H2O2-induced oxidative injury in endothelial cells via regulation of PI3K/AKT/Nrf2/HO-1 pathways // Can J Physiol Pharmacol. 2019. Vol. 97, N 5. P. 370–376. doi: 10.1139/cjpp-2018-0277
  24. Yao Y., Wang Y., Zhang Y., Liu C. Klotho ameliorates oxidized low-density lipoprotein (ox-LDL)-induced oxidative stress via regulating LOX-1 and PI3K/Akt/eNOS pathways // Lipids Health Dis. 2017. Vol. 16, N 1. P. 77. doi: 10.1186/s12944-017-0447-0.
  25. Takenaka T., Kobori H., Miyazaki T., et al. Klotho protein supplementation reduces blood pressure and renal hypertrophy in db/db mice, a model of type 2 diabetes // Acta Physiol (Oxf). 2019. Vol. 225, N 2. P. e13190. doi: 10.1111/apha.13190
  26. Lim S.W., Jin L., Luo K., et al. Klotho enhances FoxO3-mediated manganese superoxide dismutase expression by negatively regulating PI3K/AKT pathway during tacrolimus-induced oxidative stress // Cell Death Dis. 2017. Vol. 8, N 8. P. e2972. doi: 10.1038/cddis.2017.365
  27. Yamamoto M., Clark J.D., Pastor J.V., et al. Regulation of oxidative stress by the anti-aging hormone klotho // J Biol Chem. 2005. Vol. 280, N 45. P. 38029–38034. doi: 10.1074/jbc.m509039200
  28. Thurston R.D., Larmonier C.B., Majewski P.M., et al. Downre gu lation of aging-related Klotho gene in experimental colitis: the role of TNF and IFN-γ // Gastroenterology. 2010. Vol. 138, N 4. P. 1384–1394. doi: 10.1053/j.gastro.2009.12.002
  29. Mitobe M., Yoshida T., Sugiura H., et al. Oxidative stress decreases klotho expression in a mouse kidney cell line // Nephron Exp Nephrol. 2005. Vol. 101, N 2. P. e67–e74. doi: 10.1159/000086500
  30. Oh H.J., Nam B.Y., Lee M.J., et al. Decreased circulating klotho levels in patients undergoing dialysis and relationship to oxidative stress and inflammation // Perit Dial Int. 2015. Vol. 35, N 1. P. 43–51. doi: 10.3747/pdi.2013.00150
  31. Kusaba T., Okigaki M., Matui A., et al. Klotho is associated with VEGF receptor-2 and the transient receptor potential canonical-1 Ca2+ channel to maintain endothelial integrity // Proc Natl Acad Sci USA. 2010. Vol. 107, N 45. P. 19308–19313. doi: 10.1073/pnas.1008544107
  32. Semba R.D., Cappola A.R., Sun K., et al. Plasma klotho and cardiovascular disease in adults // J Am Geriatr Soc. 2011. Vol. 59, N 9. P. 1596–1601. doi: 10.1111/j.1532-5415.2011. 03558.x
  33. Kokkinaki M., Abu-Asab M., Gunawardena N., et al. Klotho regulates retinal pigment epithelial functions and protects against oxidative stress // Neurosci. 2013. Vol. 33, N 41. P. 16346–16359. doi: 10.1523/JNEUROSCI.0402-13.2013
  34. Zhao Y., Meng C., Wang Y., et al. IL-1β inhibits β-Klotho expression and FGF19 signaling in hepatocytes // Am J Physiol Endocrinol Metab. 2016. Vol. 310, N 4. P. E289–300. doi: 10.1152/ajpendo.00356.2015
  35. Graham S.E., Clarke S.L., Wu K.H., et al. The power of genetic diversity in genome-wide association studies of lipids // Nature. 2021. Vol. 600, N 7890. P. 675–679. doi: 10.1038/s41586-021-04064-3
  36. Arking D.E., Becker D.M., Yanek L.R., et al. KLOTHO allele status and the risk of early-onset occult coronary artery disease // Hum Genet. 2003. Vol. 72, N 5. P. 1154–1161. doi: 10.1086/375035
  37. Majumdar V., Nagaraja D., Christopher R. Association of the functional KL-VS variant of Klotho gene with early-onset ischemic stroke // Biochem Biophys Res Commun. 2010. Vol. 403, N 3-4. P. 412–416. doi: 10.1016/j.bbrc.2010.11.045
  38. Oguro R., Kamide K., Kokubo Y., et al. Association of carotid atherosclerosis with genetic polymorphisms of the klotho gene in patients with hypertension // Geriatr Gerontol Int. 2010. Vol. 10, N 4. P. 311–318. doi: 10.1111/j.1447-0594.2010. 00612.x
  39. Imamura A., Okumura K., Ogawa Y., et al. Klotho gene polymorphism may be a genetic risk factor for atherosclerotic coronary artery disease but not for vasospastic angina in Japanese // Clin Chim Acta. 2006. Vol. 371, N 1-2. P. 66–70. doi: 10.1016/j.cca.2006.02.021
  40. Telci D., Dogan A.U., Ozbek E., et al. KLOTHO gene polymorphism of G395A is associated with kidney stones // Am J Nephrol. 2011. Vol. 33, N 4. P. 337–343. doi: 10.1159/000325505
  41. Kawano K.I., Ogata N., Chiano M., et al. Klotho gene polymorphisms associated with bone density of aged postmenopausal women // J Bone Miner Res. 2002. Vol. 1, N 10. P. 1744–1751. doi: 10.1359/jbmr.2002.17.10.1744
  42. Majumdar V., Jose D., Christopher R. Influence of Klotho genotypes on plasma NO(x) levels in South Indian population // Thromb Res. 2011. Vol. 128, N 3. P. 251–255. doi: 10.1016/j.thromres.2011.04.002
  43. Pavlatou M.G., Remaley A.T., Gold P.W. Klotho: a humeral mediator in CSF and plasma that influences longevity and suscep tibility to multiple complex disorders, including depression // Transl Psychiatry. 2016. Vol. 6, N 8. P. e876. doi: 10.1038/tp.2016.135
  44. Rhee E.J., Oh K.W., Yun E.J., et al. Relationship between polymorphisms G395A in promoter and C1818T in exon 4 of the KLOTHO gene with glucose metabolism and cardiovascular risk factors in Korean women // J Endocrinol Invest. 2006. Vol. 29, N 7. P. 613–618. doi: 10.1007/BF03344160
  45. Elghoroury E.A., Fadel F.I., Elshamaa M.F., et al. Klotho G-395A gene polymorphism: impact on progression of end-stage renal disease and development of cardiovascular complications in children on dialysis // Pediatr Nephrol. 2018. Vol. 33, N 6. P. 1–9. doi: 10.1007/s00467-017-3877-z
  46. Valdivielso J.M., Bozic M., Galimudi R.K., et al. Association of the rs495392 Klotho polymorphism with atheromatosis progression in patients with chronic kidney disease // Nephrol Dial Transplant. 2019. Vol. 34, N 12. P. 2079–2088. doi: 10.1093/ndt/gfy207
  47. Keles N., Caliskan M., Dogan B., et al. Is low serum Klotho level associated with alterations in coronary flow reserve? // Echocardiography. 2016. Vol. 33, N 6. P. 881–888. doi: 10.1111/echo.13176
  48. Kresovich J.K., Bulka C.M. Low serum Klotho associated with all-cause mortality among a nationally representative sample of American adults // Gerontol A Biol Sci Med Sci. 2022. Vol. 77, N 3. P. 452–456. doi: 10.1093/gerona/glab308
  49. Martin-Nunez E., Donate-Correa J., Lopez-Castillo A., et al. Soluble levels and endogenous vascular gene expression of KLOTHO are related to inflammation in human atherosclerotic disease // Clin Sci (Lond). 2017. Vol. 131, N 21. P. 2601–2609. doi: 10.1042/CS20171242
  50. Keles N., Caliskan M., Dogan B., et al. Low serum level of Klotho is an early predictor of atherosclerosis // Tohoku Exp Med. 2015. Vol. 237, N 1. P. 17–23. doi: 10.1620/tjem.237.17
  51. Kazemi Fard T., Ahmadi R., Akbari T., et al. Klotho, FOXO1 and cytokines associations in patients with coronary artery disease // Cytokine. 2021. Vol. 141. P. 155443. doi: 10.1016/j.cyto.2021.155443
  52. Corsetti G., Pasini E., Scarabelli T.M., et al. Decreased expression of Klotho in cardiac atria biopsy samples from patients at higher risk of atherosclerotic cardiovascular disease // J Geriatr Cardiol. 2016. Vol. 13, N 8. P. 701–711. doi: 10.11909/j.issn.1671-5411.2016.08.009
  53. Wei N., Zhang R., Zhu Z., et al. Adropin and irisin deficiencies are associated with presence of diagonal earlobe crease in CAD patients // Front Cardiovasc Med. 2021. Vol. 8. P. 719763. doi: 10.3389/fcvm.2021.719763
  54. Wang J., Zhu Z.F., Liu F.Q., et al. Patients with earlobe crease may associate with lower concentration of the age-suppressing hormone Klotho // Int J Gen Med. 2021. Vol. 14. P. 8797–8803. doi: 10.3389/fcvm.2021.719763
  55. Martin-Nunez E., Perez-Castro A., Tagua V.G., et al. Klotho expression in peripheral blood circulating cells is associated with vascular and systemic inflammation in atherosclerotic vascular disease // Sci Rep. 2022. Vol. 12, N 1. P. 8422. doi: 10.1038/s41598-022-12548-z
  56. Liu W., Chen X., Wu M., et al. Recombinant Klotho protein enhances cholesterol efflux of THP-1 macrophage-derived foam cells via suppressing Wnt/β-catenin signaling pathway // BMC Cardiovasc Disord. 2020. Vol. 20, N 1. P. 120. doi: 10.1186/s12872-020-01400-9
  57. Sun X., Chen L., He Y., Zheng L. Circulating α-Klotho levels in relation to cardiovascular diseases: a mendelian randomization study // Front Endocrinol (Lausanne). 2022. Vol. 13. P. 842846. doi: 10.3389/fendo.2022.842846
  58. Navarro-Gonzalez J.F., Donate-Correa J., Muros de Fuentes M., et al. Reduced Klotho is associated with the presence and severity of coronary artery disease // Heart. 2014. Vol. 100, N 1. P. 34–40. doi: 10.1136/heartjnl-2013-304746
  59. Goçer K., Aykan A.C., Kilinc M., Gocer N.S. Association of serum FGF-23, klotho, fetuin-A, osteopontin, osteoprotegerin and hs-CRP levels with coronary artery disease // Scand J Clin Lab Invest. 2020. Vol. 80, N 4. P. 277–281. doi: 10.1080/00365513.2020.1728786
  60. Bergmark B.A., Udell J.A., Morrow D.A., et al. Klotho, fibroblast growth factor-23, and the renin-angiotensin system — an analysis from the PEACE trial // Eur J Heart Fail. 2019. Vol. 21, N 4. P. 462–470. doi: 10.1002/ejhf.1424
  61. Xu J.P., Zeng R.X., He M.H., et al. Associations between serum soluble α-Klotho and the prevalence of specific cardiovascular disease // Front Cardiovasc Med. 2022. Vol. 9. P. 899307. doi: 10.3389/fcvm.2022.899307
  62. Koga S., Ikeda S., Akashi R., et al. Serum soluble Klotho is inversely related to coronary artery calcification assessed by intravascular ultrasound in patients with stable coronary artery disease // J Cardiol. 2021. Vol. 77, N 6. P. 583–589. doi: 10.1016/j.jjcc.2020.11.014
  63. Abdallah E., Mosbah O., Khalifa G., et al. Assessment of the relationship between serum soluble Klotho and carotid intima-media thickness and left ventricular dysfunction in hemodialysis patients // Kidney Res Clin Pract. 2016. Vol. 35, N 1. P. 42–49. doi: 10.1016/j.krcp.2015.12.006
  64. Кесплери Э.В., Полунина О.С., Ахминеева А.Х., и др. Анализ уровня белка Клото у пациентов с инфарктом миокарда на фоне хронической обструктивной болезни легких с разными проявлениями // Туберкулез и болезни легких. 2021. Т. 99, № 8. С. 27–32. doi: 10.21292/2075-1230-2021-99-8-27-32
  65. Orces C.H. The association between serum soluble klotho levels and abdominal aorta calcification in older adults // Aging Clin Exp Res. 2022. Vol. 34, N 6. P. 1447–1452. doi: 10.1007/s40520-021-02053-0
  66. Zhou X., Li S., Wang Z., et al. Klotho protein: a potential therapeutic agent during myocardial ischemia and reperfusion // Int J Cardiol. 2015. Vol. 191. P. 227–228. doi: 10.1016/j.ijcard.2015.05.029
  67. Olejnik A., Krzywonos-Zawadzka A., Banaszkiewicz M., Bil-Lula I. Klotho protein contributes to cardioprotection during ischaemia/reperfusion injury // J Cell Mol Med. 2020. Vol. 24, N 11. P. 6448–6458. doi: 10.1111/jcmm.15293
  68. Olejnik A., Banaszkiewicz M., Krzywonos-Zawadzka A., Bil-Lula I. The Klotho protein supports redox balance and metabolic functions of cardiomyocytes during ischemia/reperfusion injury // Cardiol J. 2021. doi: 10.5603/CJ. a2021.0174
  69. Myung J., Beom J.H., Kim J.H., et al. Recombinant Klotho protein ameliorates myocardial ischemia/reperfusion injury by attenuating sterile inflammation // Biomedicines. 2022. Vol. 10, N 4. P. 894. doi: 10.3390/biomedicines10040894
  70. Qiu X., Guo Q., Xiong W., et al. Therapeutic effect of astragaloside-IV on bradycardia is involved in up-regulating klotho expression // Life Sci. 2016. Vol. 144, P. 94–102. doi: 10.1016/j.lfs.2015.11.021
  71. Cheng L., Zhang L., Yang J., Hao L. Activation of peroxisome proliferator-activated receptor γ inhibits vascular calcification by upregulating Klotho // Exp Ther Med. 2017. Vol. 13, N 2. P. 467–474. doi: 10.3892/etm.2016.3996
  72. Narumiya H., Sasaki S., Kuwahara N., et al. HMG-CoA reductase inhibitors up-regulate anti-aging klotho mRNA via RhoA inactivation in IMCD3 cells // Cardiovasc Res. 2004. Vol. 64, N 2. P. 331–336. doi: 10.1016/j.cardiores.2004.07.011
  73. Youssef O.M., Morsy A.I., El-Shahat M.A., et al. The neuroprotective effect of simvastatin on the cerebellum of experimentally-induced diabetic rats through klotho upregulation: an immunohistochemical study // J Chem Neuroanat. 2020. Vol. 108. P. 101803. doi: 10.1016/j.jchemneu.2020.101803
  74. Maquigussa E., Paterno J.C., de Oliveira Pokorny G.H., et al. Klotho and PPAR gamma activation mediate the renoprotective effect of losartan in the 5/6 nephrectomy model // Front Physiol. 2018. Vol. 9. P. 1033. doi: 10.3389/fphys.2018.01033
  75. Yoon H.E., Ghee J.Y., Piao S., et al. Angiotensin II blockade upregulates the expression of Klotho, the anti-ageing gene, in an experimental model of chronic cyclosporine nephropathy // Nephrol Dial Transplant. 2011. Vol. 26, N 3. P. 800–813. doi: 10.1093/ndt/gfq537
  76. Haussler M.R., Whitfield G.K., Haussler C.A., et al. 1,25-Di hydro xy vitamin D and Klotho: a tale of two renal hormones coming of age // Vitam Horm. 2016. Vol. 100. P. 165–230. doi: 10.1016/bs.vh.2015.11.005
  77. Pavlov S., Nikitchenko Y., Tykhonovska М. The impact of the chemical agents of different pharmacological groups on the klotho protein concentration in the cardiomyocyte and neurocyte suspension in 120-minute hypoxia in vitro // Georgian Med News. 2020. N 306. P. 184–188

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Кубанов А.А., Колсанова О.А., Чертухина О.Б., 2022

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
 


Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».