Открытый доступ Открытый доступ  Доступ закрыт Доступ предоставлен  Доступ закрыт Только для подписчиков

Том 163, № 1 (2025)

Обложка

Весь выпуск

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Научные обзоры

Сенесцентные клетки и их место в структуре гистогенеза

Деев Р.В., Маркина Ю.В., Кириченко Т.В., Живодерников И.В., Маркин А.М., Еремин И.И., Котенко К.В.

Аннотация

Старение, или сенесценция (от лат. senex — старец), представляет собой биологический процесс, заключающийся в постепенной деградации частей и систем организма на различных иерархических уровнях структурной организации материи. Комплексные представления о клеточном старении сегодня являются доминирующей концепцией, описывающей процессы старения организма в целом. Показано, что некоторые клетки в составе формирующихся (пренатальный гистогенез) и дефинитивных тканей претерпевают ряд морфофункциональных изменений: увеличение в размерах; повреждение кариолеммы; образование особых участков гетерохроматина; формирование секреторного фенотипа с выработкой провоспалительных цитокинов, β-галоктозидазы, TGFβ и других факторов; блокировка митоза за счёт активной транскрипции генов р16INK4A и p21CIP1, участвующих в индукции клеточного старения. Предполагают, что такие клетки, названные сенесцентными, являются самостоятельным функциональным этапом цитогенеза в составе тканей, а не только переходной формой от активно функционирующего компонента дифферона к клеткам, погибающим путём программируемых видов клеточной гибели. Гистогенетическое значение сенесцентных клеток в физиологической и репаративной регенерации тканей, а также влияние на гистофизиологию требуют дальнейшего изучения. Фармакологическая элиминация сенесцентных клеток в составе тканей является активно разрабатываемым разделом антивозрастной терапии.

Морфология. 2025;163(1):5-16
pages 5-16 views

Оригинальные исследования

Влияние экзогенного мелатонина на морфологические особенности перевиваемой меланомы B16 у мышей

Арешидзе Д.А., Мнихович М.В., Деев Р.В., Козлова М.А., Ануркина А.И., Мищенко Д.В., Сашенкова Т.Е., Турчин А.Н.

Аннотация

Обоснование. Постоянное освещение в течение длительного времени подавляет гормонсинтезирующую функцию шишковидной железы, приводя к снижению уровня мелатонина и, как следствие, к ускоренному старению организма, увеличению частоты возникновения возраст-ассоциированных патологий, включая новообразования, а также к сокращению продолжительности жизни. Мелатонин обладает выраженным противоопухолевым действием, особенно выделяют его антипролиферативный эффект. Меланома — одно из наиболее злокачественных новообразований у человека, происходящих из меланинобразующих клеток. В последние годы среди больных меланомой увеличивается доля пациентов старших возрастных групп, что позволяет отнести это заболевание к возраст-ассоциированным. Имеются доказательства того, что дефицит мелатонина и вызванное им нарушение структуры циркадных ритмов организма является одним из факторов, вызывающих развитие меланомы.

Цель — изучение влияния экзогенного мелатонина на морфологические особенности перевиваемой меланомы B16 у мышей.

Методы. Исследование проведено на самцах мышей-гибридов линии BDF1 (n = 60) в возрасте 8 недель, массой 21– 22 г. Всем животным выполняли подкожную трансплантацию меланомы В16/F10 в виде взвеси. Далее мышей разделяли на две группы — контрольную и экспериментальную. Животным экспериментальной группы с первого дня исследования внутрижелудочно вводили мелатонин (Sigma, США) в дозе 5 мг/кг. На 15-е сутки после перевивания опухоли изымали саму опухоль, а также лёгкие и печень. Проводили патоморфологическое исследование опухоли, определяли наличие метастазов в лёгких и печени. На гистологических срезах опухоли, окрашенных гематоксилином и эозином, измеряли площадь некроза, а также вычисляли ядерно-цитоплазматическое соотношение в опухолевых клетках, для чего измеряли площадь поперечного сечения ядер и площадь поперечного сечения клеток. Построение графиков и статистическую обработку результатов выполняли в программе GraphPad Prism v8.41 (США).

Результаты. Установлено, что в исследованном периоде введение мелатонина снижает смертность мышей с меланомой, уменьшает частоту метастазирования опухоли и её размеры. Кроме того, в меланомах экспериментальной группы мышей визуализируются признаки регресса опухоли в виде очагов дистрофических и альтеративных изменений, а также статистически значимо увеличивается площадь некроза опухоли.

Заключение. Проведённое исследование показало, что экзогенный мелатонин обладает выраженным противоопухолевым эффектом в отношении перевиваемой меланомы B16 у мышей. Полученные результаты позволяют планировать более тщательные и мультидисциплинарные исследования для углублённого изучения механизмов противоопухолевого действия мелатонина.

Морфология. 2025;163(1):17-27
pages 17-27 views

Влияние инфракрасной и зелёной фотобиомодуляции на количество MyoD-положительных клеток в соединительной ткани в очаге повреждения скелетной мышцы в процессе регенерации

Тахавиев Р.В., Брюхин Г.В., Головнева Е.С.

Аннотация

Обоснование. Воздействие лазерного облучения способствует более быстрой регенерации поперечнополосатой мышечной ткани за счёт усиления пролиферации и дифференцировки клеток. Эффективность фотобиомодуляции зависит от многих факторов, в том числе от объекта и продолжительности облучения, длины волны и мощности излучения. MyoD (myogenic differentiation) — транскрипционный фактор, регулирующий миогенез. Литературных данных о влиянии инфракрасной и зелёной фотобиомодуляции различной продолжительности на усиление функциональной активности MyoD-положительных клеток (MyoD+) и увеличение их числа в очаге повреждения мы не обнаружили. При этом поиск методов восстановления скелетных мышечных волокон после повреждения по-прежнему остаётся актуальным.

Цель исследования — проанализировать влияние лазеров инфракрасного и зелёного спектра на количество MyoD+ клеток в соединительной ткани в очаге повреждения скелетной мышцы.

Методы. Исследование проведено на 208 крысах (самцы линии Wistar), разделённых на 6 экспериментальных групп: контроль (0 группа, n = 8); резаная рана мышцы (I группа, n = 40); резаная рана мышцы с последующим кратковременным (60 с) воздействием инфракрасного лазера на область раны (II группа, n = 40); резаная рана с продолжительным (180 с) воздействием инфракрасного лазера (III группа, n = 40); резаная рана с кратковременным (60 с) воздействием зелёным лазером (IV группа, n = 40); резаная рана с продолжительным (180 с) воздействием зелёным лазером (V группа, n = 40). Лазерное облучение проводили однократно в непрерывном режиме, сразу после повреждения мышцы. На гистологических срезах, окрашенных гематоксилином и иммуногистохимическим методом с использованием антител к MyoD, подсчитывали количество MyoD+ клеток на 1 мм2 площади среза в очаговой зоне повреждённой поперечнополосатой скелетной мышцы на 1, 3, 7, 14 и 30 сутки наблюдения.

Результаты. Установлено, что после фотобиомодуляции увеличивается число ядер в соединительной ткани очаговой зоны повреждения на разных сроках эксперимента. При этом количество MyoD+ клеток на 1 мм2 значительно увеличивается спустя 1 сутки после кратковременной фотобиомодуляции зелёного и инфракрасного спектра. Наиболее выраженное стимулирующее влияние на MyoD+ клетки выявлено после кратковременного облучения зелёным лазером.

Заключение. Использование зелёной и инфракрасной фотобиомодуляции приводит к раннему увеличению числа MyoD+ клеток в соединительной ткани в очаге повреждения скелетной мышцы. Наиболее выраженное увеличение числа клеток, дифференцирующихся в миогенном направлении, установлено у крыс после кратковременной фотобиомодуляции зелёным лазером.

Морфология. 2025;163(1):29-38
pages 29-38 views

Влияние свёртывания крови на иммунологическую реактивность клеток крови ex vivo

Пышенко А.А., Любавская Т.Я., Селедцова И.А., Селедцов В.И.

Аннотация

Обоснование. Взаимодействие системы гемостаза и иммунной системы обеспечивает защиту организма от внешних патогенов. Тем не менее, влияние свёртывания крови на иммунную клеточную реактивность изучено недостаточно.

Цель — исследовать влияние свёртывания крови на её иммунореактивные свойства ex vivo.

Материалы и методы. Образцы донорской крови инкубировали с гепарином (для исследования плазмы) или без гепарина (для исследования сыворотки). Антиоксидантную активность плазмы и сыворотки оценивали по интенсивности хемилюминесценции после добавления перекиси водорода или озонированного физиологического раствора. Содержание цитокинов определяли иммуноферментным методом после инкубации крови с липополисахаридом (ЛПС) в течение 3 или 18 ч.

Результаты. Сыворотка обладала значительно большей антиоксидантной активностью, чем плазма. Процесс свёртывания крови заметно снижал как спонтанную, так и ЛПС-индуцированную секрецию клетками крови фактора некроза опухоли TNF-α, не оказывая при этом существенного влияния на секрецию интерлейкинов IL-1, IL-6, IL-8 и С-реактивного белка. С другой стороны, этот процесс приводил к усилению как спонтанной, так и ЛПС-индуцированной секреции клетками крови фактора роста эндотелия сосудов VEGF. В сывороточных пробах с ЛПС также выявили выраженный прирост содержания прокальцитонина.

Заключение. Cвёртывание крови усиливает антиоксидантные свойства крови, ослабляет воспалительную активность иммунореактивных клеток и, тем самым, способствует развитию регенеративных процессов.

Морфология. 2025;163(1):49-57
pages 49-57 views

Морфометрическое исследование сосудов кожи после механической травмы на основе их маркирования антителами к фактору фон Виллебранда

Березовская Т.И., Коняев Г.В.

Аннотация

Обоснование. Одним из важнейших факторов гистогенеза в процессе регенерации тканей является ангиогенез. При исследовании ран различной этиологии идентификация сосудов на препаратах, окрашенных по стандартному методу гематоксилином и эозином, затруднена. Это связано с особенностями гистологического строения сосудистой стенки и сложностью гистотопографического расположения сосудов. Иммуногистохимическая реакция с антителами к специфическому белку эндотелиоцитов фактору фон Виллебранда (vWF) — один из наиболее информативных способов детекции сосудов. Применение данного метода при изучении раневого процесса позволяет уточнить гистотопографию и морфологию сосудов микроциркуляторного русла, участвующих в заживлении кожных ран.

Цель исследования — с помощью иммуногистохимической реакции с антителами к vWF выявить динамику количества и размеров сосудов кожи на разных этапах регенерационного гистогенеза после механической травмы.

Методы. Проведено экспериментальное одноцентровое сплошное контролируемое рандомизированное неослеплённое исследование. Объекты исследования — фрагменты кожи средней трети бедра крыс линии Wistar на разных сроках заживления после нанесения глубокой резаной раны. Животных разделили на 9 групп: контрольная группа (n = 3) — интактные особи; остальные группы соответствуют срокам выведения из эксперимента (по 3 особи в каждой группе) — спустя 12 ч, 24 ч, 2, 3, 6, 10, 15 и 25 суток после нанесения механической травмы. На каждом этапе из биоптатов кожи готовили гистологические препараты для иммуногистохимического исследования с применением антител к vWF и последующего морфометрического анализа полученных цифровых изображений.

Результаты. В дерме и гиподермисе кожи крыс были визуализированы кровеносные сосуды, которые разделили на 4 группы в зависимости от калибра (видимой площади сечения). Наиболее существенную динамику продемонстрировали сосуды малого калибра (площадь сечения ≤ 100 мкм2). На препаратах интактной кожи таких сосудов не обнаружено, а в экспериментальных группах со 2 по 10 сутки после травмы их количество увеличивается. На препаратах кожи спустя 15 и 25 суток после травмы наблюдается постепенное уменьшение количества сосудов с площадью сечения ≤ 100 мкм2. Схожая динамика выявлена и для сосудов среднего (площадь сечения 100–500 мкм2) и большого (500–1000 мкм2) калибра. Сосуды с площадью сечения ≥ 1000 мкм2 единичны и говорить о корреляции количества таких сосудов с фазой раневого процесса не представляется возможным.

Заключение. Иммуногистохимическая реакция с применением антител к vWF на срезах кожи крыс имеет хорошую воспроизводимость и позволяет получать препараты высокого качества. В экспериментальном раневом процессе метод показал высокую селективность выявления кровеносных сосудов. При проведении морфометрического анализа гистологических препаратов получены данные, подтверждающие взаимосвязь между количеством сосудов и последовательными фазами раневого процесса.

Морфология. 2025;163(1):39-48
pages 39-48 views

Оптимизированный метод применения полиэтиленгликоля в качестве заливочной среды для гистологических исследований

Антонов С.А., Курбатова Т.А., Макарова И.В., Сухоруков В.Н.

Аннотация

Обоснование. Полиэтиленгликоль (ПЭГ) — это водорастворимый полимер, который может использоваться для пропитки тканей и получения гистологических срезов. Ранее сообщалось, что ПЭГ обеспечивает хорошую сохранность морфологических характеристик тканей, сопоставимую с результатом использования эпоксидных смол, а получаемые срезы могут применяться для иммуногистохимических исследований. В современной литературе описано несколько методов применения ПЭГ для гистологических задач, однако они несистематизированы и, как правило, трудновоспроизводимы.

Цель исследования — оценить морфологические характеристики и иммунореактивность тканей на гистологических срезах после проводки в ПЭГ.

Материалы и методы. Исследована возможность и результаты проводки коллекционных (архивных) образцов плодов мыши (Mus musculus) и вьюна (Misgurnus Fossilis) в ПЭГ 1000 и ПЭГ 1500, а также особенности получения срезов, их расправления, монтирования на предметные стёкла и окрашивания.

Результаты. Сопоставлены морфологические характеристики гистологических срезов, проведённых и залитых в ПЭГ и парафин. Охарактеризованы преимущества и недостатки использования ПЭГ для гистологической проводки. Выполнено иммуногистохимическое окрашивание срезов с использованием специфических антител в сочетании с хромогенной и флуоресцентной системами детекции.

Заключение. Продемонстрировано, что ПЭГ обеспечивает сохранность структурных особенностей клеток и межклеточного вещества, а также оказывает щадящее воздействие на белковые эпитопы в тканях.

Морфология. 2025;163(1):59-70
pages 59-70 views

Исторические статьи

120 лет член-корреспонденту Академии медицинских наук СССР Гавриилу Сергеевичу Стрелину

Павлова Т.В., Леонтьева И.В., Загарская Ю.С., Леонтьева О.А.

Аннотация

8 апреля 2025 года исполняется 120 лет со дня рождения крупного учёного и педагога — Гавриила Сергеевича Стрелина. Авторы обобщили факты биографии учёного и основные этапы его научной и педагогической деятельности. Основная научная деятельность Г.С. Стрелина была связана с вопросами радиобиологии и изучением регуляции клеточного деления. Г.С. Стрелин в течение многих лет работал в Центральном научно-исследовательском рентгенорадиологическом институте в Ленинграде. Гавриил Сергеевич был почётным членом Всесоюзного научного общества рентгенологов и радиологов и заместителем председателя проблемной комиссии по радиобиологии Академии медицинских наук СССР. Под его руководством защищено 15 диссертаций и опубликовано около 200 научных работ. В период с 1952 по 1960 год Г.С. Стрелин заведовал кафедрой гистологии и эмбриологии Первого Ленинградского медицинского института, принимал активное участие в разработке новых методик преподавания гистологии как учебной дисциплины, привлёк к работе на кафедре ряд новых сотрудников. Жизненный и творческий путь Гавриила Сергеевича Стрелина уже многие годы служит примером для подрастающих поколений врачей, учёных и педагогов.

Морфология. 2025;163(1):71-77
pages 71-77 views

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».