Анализ структуры фосфолипидной транспортной наносистемы методом малоуглового рассеяния рентгеновских лучей
- Авторы: Маслова В.А.1, Киселев М.А.1, Жучков П.В.1, Терешкина Ю.А.2, Тихонова Е.Г.2
-
Учреждения:
- Объединенный институт ядерных исследований
- Научно-исследовательский институт биомедицинской химии им. В.Н. Ореховича
- Выпуск: № 8 (2024)
- Страницы: 61-68
- Раздел: Статьи
- URL: https://journal-vniispk.ru/1028-0960/article/view/274326
- DOI: https://doi.org/10.31857/S1028096024080089
- EDN: https://elibrary.ru/ELJYQY
- ID: 274326
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Методом малоуглового рассеяния рентгеновских лучей изучена структура водных дисперсий фосфолипидной транспортной наносистемы (ФТНС) на основе соевых фосфолипидов, разработанной в Институте биомедицинской химии (Москва, Россия). Концентрация ФТНС в воде составляла 20, 25, 31.25 и 37.5%. Определены структурные параметры везикул (внутренний радиус, толщины областей гидрофобных хвостов и полярных голов) в приближении модели “вложенных сфер” с вариацией плотности длины рассеяния в разных частях везикулы, а также раствора, который находится внутри и вне везикулы. Между объемом раствора и внутренней областью везикул обнаружена разница плотностей длин рассеяния фотонов, обусловленная неравномерным процессом растворения мальтозы, которая входит в состав ФТНС. При практически неизменной толщине липидного бислоя наблюдалось уменьшение радиуса везикул от ~150 до ~130 Å с увеличением концентрации системы вследствие возрастающего осмотического давления. Определен гидрофобный объем везикул: 7.45 × 106 Å3 при наименьшей концентрации 20% и 5.85 × 106 Å3 при наибольшей концентрации 37.5%.
Полный текст
ВВЕДЕНИЕ
К настоящему времени известен ряд способов доставки лекарственных соединений в организм человека, в частности в органы и определенные клетки-мишени [1, 2]. Исследуют различные транспортные системы на основе разнообразных природных и синтетических полимеров — носителей, имеющих как преимущества, так и недостатки. Наиболее перспективными представляются системы транспорта на основе растительных липидов [3–6]. В Институте биомедицинской химии (ИМБХ, Москва, Россия) разработана и получена фосфолипидная транспортная наносистема (ФТНС) [7, 8]. На основе фосфолипидов сои методом микрофлюидизации получают гомогенную ультрадисперсную эмульсию с ее последующей лиофилизацией. Сухой лиофилизированный порошок при растворении образует тонкодисперсный раствор наночастиц (везикул) [9]. Преимуществами такой системы являются биодеградируемость, комплементарность по отношению к мембранам клеток, сверхмалый размер частиц в эмульсии ФТНС. Поверхность этих наночастиц легко модифицировать для придания тех или иных свойств, в том числе для повышения биодоступности лекарств. В ряде работ было продемонстрировано, что встраивание лекарственных соединений в ФТНС увеличивает терапевтическую эффективность препаратов [10–13]. Поэтому для понимания закономерностей действия ФТНС необходимо выяснить механизмы ее формирования и особенности строения.
Методы малоуглового рассеяния нейтронов и рентгеновских лучей эффективны для исследования структуры ФТНС, что подтверждает ряд экспериментов [14–18], фокус внимания в которых был направлен на определение основных структурных характеристик и диверсификацию способов анализа данных. Ранее были изучены структурные параметры ФТНС при разных концентрациях [17]. Для анализа использовали модель разделенных формфакторов, которая позволила сделать вывод о гидратации липидного бислоя. Был рассчитан гидрофобный объем везикулярного переносчика лекарства, который может служить для размещения водонерастворимых лекарств. Максимальный гидрофобный объем одной везикулы составлял 14.55 × 106 Å3 при концентрации ФТНС в воде 25% и уменьшался до 6.16 × 106 Å3 при увеличении концентрации до 37.5%.
Также была замечена корреляция между концентрацией раствора и неравномерным растворением добавляемой мальтозы при гидратации липидов, поэтому необходимы дополнительные исследования с расширением экспериментальных возможностей в опытах на одном и том же образце на разных установках.
В моделях, которые используют для анализа ФТНС, обычно подразумевают одинаковые плотности длин рассеяния внутри везикулы и в окружающем растворе, что не очевидно. В экспериментах с ФТНС возможно неравномерное растворение мальтозы, и концентрация мальтозы снаружи и внутри везикулы может быть разной, что приведет к различию плотностей длин рассеяния в этих областях. Чтобы разрешить эти вопросы, в настоящей работе проведены серии экспериментов с подробным анализом кривых малоуглового рассеяния на везикулах ФТНС и представлены структурные параметры, полученные в ходе обработки.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОД
Водные дисперсии ФТНС получали в ИМБХ согласно методике [9]. Липоид S100 (5.0 г) суспендировали в водном растворе мальтозы (20 г/100 мл) с получением первичной (грубой) эмульсии в соотношении фосфолипид: сахар 1:4. Грубую эмульсию заливали в приемную емкость микрофлюидизатора M110EH30K (Microfluidics, Westwood, MA, USA) и гомогенизировали в циклическом режиме (семь циклов, 1000 атм., температура эмульсии 45°C). Полученную ультратонкую эмульсию фильтровали с использованием фильтрующей установки YY30 090 00 (Millipore Corporation, Burlington, MA, USA), пропуская через предварительный фильтр из стекловолокна с размером пор 1 мкм и мембранный фильтр с размером пор 0.22 нм.
Концентрации исследуемых растворов ФТНС составляли 20 и 25% (P12, PETRA III, DESY, Гамбург, Германия), а также 25, 31.25 и 37.5% (ДИКСИ, КИСИ, Москва, Россия). Буферный раствор — H2O. Образцы растворов исследуемых концентраций заливали в разные капилляры (толщиной 2 мм), после чего помещали в специальные держатели. Температура образцов составляла 20°C.
Эксперименты проводили на двух установках. Первая — P12, немецкий электронный синхротрон PETRA III, DESY, Научный центр Гельмгольца, Гамбург, Германия (эксперимент № 1). Расстояние образец–детектор Lsd = 300 см, данные были получены c помощью пиксельного детектора смешанного типа Pilatus, длина волны фотона λ = 0.124405 нм, время экспозиции составляло 0.045 с. Калибровку проводили на воде автоматически. Вторая — экспериментальная станция ДИКСИ Курчатовского источника синхротронного излучения (КИСИ) в Национальном исследовательском центре “Курчатовский институт”, г. Москва (эксперимент № 2). Измерения были выполнены при расстояниях образец–детектор Lsd = 30, 56 и 241.5 см, данные были получены с использованием двумерного детектора MarCCD, длина волны λ = 0.1625 нм, время экспозиции — 300 с. Данные были откалиброваны путем измерений капилляров с водой.
Экспериментальные данные обрабатывали с помощью программы SasView [19]. Расчеты проводили по модели вложенных сфер (core multi shell model), схематично изображенной на рис. 1, где R0 — внутренний радиус, (R2 — R1) — область гидрофобных хвостов DCH, а (R1 — R0) и (R3 — R2) — размеры области полярных голов DPH1 и DPH2 соответственно, R0 — внутренний радиус, R1 — радиус первого слоя, R2 — радиус второго слоя, R3 — радиус третьего слоя. Макроскопическое сечение рассеяния в этой модели описывается выражением:
(1)
здесь Scale = nV, n — количество везикул в 1 см3, V — объем, приходящийся на одну везикулу, Bg — уровень некогерентного фона, q — модуль вектора рассеяния:
, (2)
где θ — угол рассеяния падающего пучка,
, (3)
здесь q — вектор рассеяния, k и k0 — волновые векторы рассеянной и падающей волн соответственно:
, (4)
где λ — длина волны фотона.
Формфактор F задается следующим уравнением:
Vв
(5)
где Vв — объем везикулы, V0, V1, V2 и V3 — объемы ядра, первого, второго и третьего слоев соответственно, P — формфактор для сферы:
. (6)
Среднеквадратичное отклонение σ от среднего радиуса <R> везикул рассчитывали при помощи распределения Шульца:
(7)
Norm — нормировочный коэффициент, который находят при численном расчете, а z — мера ширины распределения:
, (8)
где p — полидисперсность в программе SasView, заданная выражением:
σ/. (9)
Рис. 1. Профиль плотности длины рассеяния липидного бислоя в модели “вложенных сфер”: ρcore и ρsolv — плотности длин рассеяния растворов внутри везикулы и снаружи; ρPH1, ρPH2 и ρCH — плотности длин рассеяния областей полярных голов и углеводородных хвостов соответственно; DPH1 и DPH2 — толщины областей полярных голов; DCH и d — толщины области углеводородных цепей и бислоя соответственно.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
Выбранные для изучения везикулярных частиц наиболее подходящие методы малоуглового рассеяния нейтронов (МУРН) и рентгеновских лучей (МУРР) [20–22] позволяют получить точные данные о структуре, прежде всего благодаря изотопному замещению с целью вариации контраста между элементами структуры, когда используют рассеяние нейтронов. Также при частичном дейтерировании есть возможность “подсветить” определенные части образцов. Однако в случае изучения ФТНС у этого метода есть ограничения. Так как в образцах присутствует мальтоза в большом количестве, рассеяние на ней значительно повышает некогерентный фон, следовательно, при использовании МУРН есть ограничения по концентрациям (до 25%).
Рассеяние рентгеновских лучей, в свою очередь, также имеет ряд преимуществ и недостатков. Эксперимент дает возможность более детально определить структуру липидного бислоя, таким образом, можно различить области полярных голов и углеводородных хвостов. К недостаткам же можно отнести те же ограничения по концентрациям, но в данном случае ситуация прямо противоположная. При низких концентрациях образца плотности длин рассеяния ФТНС и воды практически совпадают. Повышение концентрации образца приводит, соответственно, к повышению концентрации мальтозы, которая в свою очередь начинает играть роль “контраста” в данной системе. Концентрации ФТНС, подходящие для изучения этим методом, начинаются с 25% и выше. Таким образом, используя оба этих метода, можно получить структурные параметры транспортных наночастиц при всех концентрациях. Но чаще всего рассматривают фармацевтические концентрации (20–25%), так что остановимся именно на них.
Спектры малоуглового рассеяния рентгеновских лучей были описаны моделью “вложенных сфер”. В табл. 1 представлено содержание мальтозы в ФТНС при различных концентрациях. Учет полидисперсности везикулярной системы с помощью распределения Гаусса показал, что полидисперсность толщины бислоя пренебрежимо мала (сходится к нулю), поэтому в дальнейшем полидисперсность задавали только для внутреннего радиуса везикулы с помощью распределения Шульца.
Таблица 1. Содержание мальтозы в ФТНС
Концентрация ФТНС, % | Концентрация мальтозы, % |
20 | 16 |
25 | 20 |
31.25 | 25 |
37.5 | 30 |
Эксперимент на установке P12, DESY
На рис. 2 представлены экспериментальные спектры (точки) и расчетные кривые (линия), полученные в эксперименте № 1. Показано, что выбранная модель может описать экспериментальный спектр, но не идеально: пик в конце кривой плохо поддается обработке (q > 0.3 Å–1). В табл. 2 и 3 представлены структурные характеристики ФТНС. Радиус везикул ФТНС уменьшается с увеличением концентрации, в то время как толщина липидного бислоя и его составляющих практически не изменяется. Полидисперсность системы также не увеличивается с изменением концентрации (табл. 2).
Рис. 2. Экспериментальные кривые малоуглового рассеяния (установка P12, PETRA III) везикул ФТНС при концентрации 20 (а) и 25% (б). Точки — эксперимент, сплошная линия — расчетная кривая.
Завышенное значение параметра χ2 можно объяснить тем, что используемая модель не учитывает межвезикулярные взаимодействия и поэтому не может хорошо описать начальную часть экспериментальных данных, однако это не влияет существенным образом на характер зависимостей структурных параметров везикул от концентрации ФТНС.
Эксперимент на установке ДИКСИ, КИСИ
Рис. 3 демонстрирует кривые малоуглового рассеяния, полученные в ходе эксперимента № 2. Параметры, полученные в результате анализа, указаны в табл. 4 и 5. На графиках видно, что выбранная модель хорошо описывает экспериментальные спектры. В случае концентраций 25 и 31.25% данные хорошо согласуются. Толщина липидного бислоя изменяется лишь незначительно. В случае концентрации 37.5% наблюдается увеличение толщины области полярных голов DPH2 на 1.4 Å. Можно предположить, что с ростом концентрации (37.5%) становится существенным взаимодействие везикул, при котором необходимо учитывать структурный фактор (рис. 3в). Также в случае самой высокой концентрации повышается полидисперсность до 0.27, а плотности длин рассеяния везикулы внутри ρcore и снаружи ρsolv одинаковые.
Рис. 3. Экспериментальные кривые малоуглового рассеяния (установка ДИКСИ) везикул ФТНС при концентрации 25% (а), 31.25% (б) и 37.5% (в). Точки — эксперимент, сплошная линия — расчетная кривая.
Из анализа расчета плотности длины рассеяния внутри везикулы можно сделать вывод, что при гидратации системы мальтоза растворяется неравномерно. Разница плотностей длин рассеяния снаружи и внутри везикулы Δρ сокращается при увеличении концентрации от 0.20 × 10–6 до 0.12 × 10–6 Å–2 (P12) и от 0.15 × 10–6 Å–2 до нуля (ДИКСИ). Грубый расчет показал, что в эксперименте № 1 внутреннее содержание мальтозы составляет 66 и 50% (при концентрациях ФТНС 20 и 25% соответственно), в эксперименте № 2–58, 43 и 30% (при концентрациях ФТНС 25, 31.25 и 37.5% соответственно). В обоих экспериментах наблюдалось стремление системы к равновесию при увеличении концентрации: разница Δρ = ρcore — ρsolv уменьшалась. Это скорее всего связано с возрастающим осмотическим давлением.
Получены большие размеры области полярных голов (DPH ≈ 13–14 Å), которые превосходят область полярной головы одного чистого фосфолипида (DPH ≈ 9 Å) примерно в 1.4–1.6 раза [23]. Для уточнения конфигураций и точного расположения молекул требуются дополнительные исследования.
Если сравнивать данные эксперимента № 2 с результатами [17], то можно отметить существенное различие полученных оценок средних размеров везикул (например, для ФТНС 25% в [17] R = 207 ± 2 Å, а для ФТНС 25% в настоящей работе R = 140.7 ± 1.3 Å). Это различие связано с тем, что при анализе данных МУРР были использованы разные модели и разные алгоритмы поиска (анализ проводили с использованием разных программ). Модель, представленная в настоящей работе, позволяет учитывать различие плотностей длин рассеяния раствора внутри и вне везикулы.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
В работе исследована структура везикул ФТНС в области фармацевтических концентраций методом малоуглового рассеяния рентгеновских лучей. Кривые рассеяния обрабатывали с использованием программы SasView в приближении модели “вложенных сфер”. Установлено, что оно достаточно хорошо описывает экспериментальный спектр. Радиус везикул R составил 151 ± 0.02 и 135.70 ± 0.02 Å в эксперименте № 1 (концентрация ФТНС 20 и 25% соответственно) и 140.7 ± 1.3, 134.9 ± 1.1 и 127.9 ± 1.1 Å в эксперименте № 2 (концентрация 25, 31.25 и 37.5% соответственно). При увеличении концентрации ФТНС радиус везикулы уменьшается: 151.01 ± 0.02 Å при концентрации 20% и 127.9 ± 1.1 Å при концентрации 37.5%. Увеличение концентрации ФТНС не сопровождается увеличением толщины липидного бислоя. Важным выводом является, то, что разница плотностей длин рассеяния снаружи и внутри везикулы Δρ (и в процентном содержании мальтозы) сокращается при увеличении концентрации ФТНС. Наблюдаемое уменьшение радиуса и разницы плотностей длин рассеяния можно объяснить возрастающим осмотическим давлением в системе.
Был оценен максимальный гидрофобный объем везикулы, в котором могут размещаться водонерастворимые лекарства. В первом эксперименте он уменьшился от 7.45 × 106 до 6.31 × 106 Å3 при увеличении концентрации. Максимальный гидрофобный объем одной везикулы в эксперименте № 2 составил 7.19 × 106 Å3 при концентрации ФТНС в воде 25% и уменьшился до 5.85 × 106 Å3 при увеличении концентрации до 37.5%.
Следующим шагом усложнения модели может быть учет гидратирования бислоя, т.е. молекулы воды проникают внутрь бислоя.
Таблица 2. Результаты расчетов малоугловых спектров везикул ФТНС, полученных на станции P12, PETRA III
ФТНС, % | R, Å | DPH1, Å | DPH2, Å | DCH, Å | d, Å | V, 106 Å3 | PD | χ2 |
20 | 151.01 ± 0.02 | 13.76 ± 0.01 | 13.34 ± 0.01 | 19.46 ± 0.01 | 46.56 ± 0.03 | 7.45 | 0.24 ± 0.01 | 7.63 |
25 | 135.70 ± 0.02 | 13.28 ± 0.01 | 13.00 ± 0.01 | 19.86 ± 0.01 | 46.14 ± 0.03 | 6.31 | 0.24 ± 0.01 | 112.92 |
Примечание. R — внутренний радиус, d — общая толщина липидного бислоя, V — гидрофобный объем везикулы, PD — полидисперсность радиуса.
Таблица 3. Плотности длин рассеяния, полученные при анализе данных на станции P12, PETRA III
ФТНС, % | ρsolv, 10–6 Å–2 | ρcore, 10–6 Å–2 | ρPH1, 10–6 Å–2 | ρPH2, 10–6 Å–2 |
20 | 9.96 ± 0.01 | 10.16 ± 0.01 | 10.95 ± 0.01 | 10.60 ± 0.01 |
25 | 10.08 ± 0.01 | 10.20 ± 0.01 | 11.2 ± 0.01 | 10.3 ± 0.01 |
Примечание. Плотность длины рассеяния углеводородных хвостов была фиксирована: ρCH = 7.8 × 10–6 Å–2.
Таблица 4. Результаты расчетов малоугловых спектров везикул ФТНС, полученных на станции ДИКСИ
ФТНС, % | R, Å | DPH1, Å | DPH2, Å | DCH, Å | d, Å | V, 106 Å3 | PD | χ2 |
25 | 140.7 ± 1.3 | 14.0 ± 0.4 | 14.0 ± 0.2 | 20.95 ± 0.07 | 48.95 ± 0.13 | 7.19 | 0.24 ± 0.01 | 0.27 |
31.25 | 134.9 ± 1.1 | 14.0 ± 0.9 | 14.0 ± 0.5 | 20.53 ± 0.06 | 48.53 ± 0.20 | 6.54 | 0.26 ± 0.01 | 0.41 |
37.5 | 127.9 ± 1.1 | 14.0 ± 1.1 | 15.4 ± 0.5 | 20.13 ± 0.06 | 49.53 ± 1.66 | 5.85 | 0.26 ± 0.01 | 1.36 |
Примечание. R — внутренний радиус, d — общая толщина липидного бислоя, V — гидрофобный объем везикулы, PD — полидисперсность радиуса.
Таблица 5. Плотности длин рассеяния, полученные при анализе данных на станции ДИКСИ
ФТНС, % | ρsolv, 10–6 Å–2 | ρcore, 10–6 Å–2 | ρPH1, 10–6 Å–2 | ρPH2, 10–6 Å–2 |
25 | 10.08 | 10.23 ± 0.05 | 10.80 ± 0.10 | 10.70 ± 0.10 |
31.25 | 10.27 | 10.34 ± 0.05 | 10.84 ± 0.01 | 10.82 ± 0.01 |
37.5 | 10.46 | 10.46 ± 0.01 | 10.85 ± 0.16 | 15.40 ± 0.50 |
Примечание. Плотности длин рассеяния для раствора и области углеводородных хвостов рассчитаны вручную и были зафиксированы: ρCH = 7.8 × 10–6 Å–2.
ФИНАНСИРОВАНИЕ РАБОТЫ
Авторский коллектив выражает благодарность А.Ю. Грузинову за большой вклад в проведение экспериментов. Наработка образцов для анализа выполнена в ИБМХ в рамках Программы фундаментальных научных исследований в Российской Федерации на долгосрочный период (2021–2030 гг.) (№ 122030100170-5).
КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ
Авторы заявляют, что у них нет конфликта интересов.
Об авторах
В. А. Маслова
Объединенный институт ядерных исследований
Автор, ответственный за переписку.
Email: varvara@jinr.ru
Россия, Дубна, 141980
М. А. Киселев
Объединенный институт ядерных исследований
Email: kiselev@jinr.ru
Россия, Дубна, 141980
П. В. Жучков
Объединенный институт ядерных исследований
Email: varvara@jinr.ru
Россия, Дубна, 141980
Ю. А. Терешкина
Научно-исследовательский институт биомедицинской химии им. В.Н. Ореховича
Email: varvara@jinr.ru
Россия, Москва, 119121
Е. Г. Тихонова
Научно-исследовательский институт биомедицинской химии им. В.Н. Ореховича
Email: varvara@jinr.ru
Россия, Москва, 119121
Список литературы
- Mainardes R., Silva L. // Curr. Drug Targets. 2004. V. 5. № 5. P. 449. http://doi.org./10.2174/1389450043345407
- Crintea A., Dutu A.G., Sovrea A., Constantin A.-M., Samasca G., Masalar A.L., Ifju B., Linga E., Neamti L., Tranca R.A., Fekete Z., Silaghi C.N., Craciun A.M. // Nanomaterials. 2022. V. 12. № 8. P. 1376. http://doi.org./10.3390/nano12081376
- Барышников А.Ю. // Вестн. РАМН. 2012. Т. 67. № 3. C. 23. http://doi.org./10.15690/vramn.v67i3.181
- Joshi S.A., Ramteke K.H. // IOSR J. Pharm. 2012. V. 2. № 6. P. 34. http://doi.org./10.9790/3013-26103444
- Mehnert W., Mäder K. // Adv. Drug Deliv. Rev. 2012. V. 64. P. 83. http://doi.org./10.1016/j.addr.2012.09.021
- Cevc G. // Adv. Drug Deliv. Rev. 2004. V. 56. № 5. P. 675. http://doi.org./ 10.1016/j.addr.2003.10.028
- Патент 2406537 (РФ). Способ получения эмульсии на основе растительных фосфолипидов / ИБМХ. Арчаков А.И., Ипатова О.М., Лисица А.В., Медведева Н.В., Тихонова Е.Г., Стрекалова О.С., Широнин А.В. // опубл. 20.12.2011. Бюл. № 35. 7 с.
- Патент 2391966 (РФ). Наносистема на основе растительных фосфолипидов для включения биологически активных соединений и способ ее получения (варианты) / ООО “ЭкоБиоФарм”. Арчаков А.И., Гусева М.К., Учайкин В.Ф., Ипатова О.М., Тихонова, Е.Г. Медведева Н.В., Лисица А.В., Прозоровский В.Н., Стрекалова О.С., Широнин А.В. // опубл. 20.06.2010. Бюл. № 17. 14 с.
- Tikhonova E.G., Sanzhakov M.A., Tereshkina Y.A., Kostryukova L.V., Khudoklinova Y.Y., Orlova N.A., Bobrova D.V., Ipatova O.M. // Pharmaceutics. 2022. V. 14. № 11. P. 2522. http://doi.org./10.3390/pharmaceutics14112522
- Медведева Н.В., Прозоровский В.Н., Игнатов Д.В., Дружиловская О.С., Кудинов В.А., Касаткина Е.О., Тихонова Е.Г., Ипатова О.М. // Биомедицинская химия. 2015. Т. 61. № 2. C. 219. http://doi.org./10.18097/PBMC20156102219
- Широнин А.В., Фосфолипидные наночастицы в качестве транспортной сисетемы для индометацина: дис. … канд. биол. наук: 03.01.04. М.: ИБМХ РАМН, 2010. 118 с.
- Медведева Н.В., Торховская Т.И., Кострюкова Л.В., Захарова Т.С., Кудинов В.А., Касаткина Е.О., Прозоровский В.Н., Ипатова О.М. // Биомедицинская химия. 2017. Т. 63. № 1. C. 56. http://doi.org./10.18097/PBMC20176301056
- Санжаков М.А., Прозоровский В.Н., Ипатова О.М., Тихонова Е.Г., Медведева Н.В., Торховская Т.И. // Биомедицинская химия. 2013. Т. 59. № 5. C. 585. http://doi.org./10.18097/pbmc20135905585
- Kiselev M.A., Zemlyanaya E.V., Ipatova O.M., Gruzinov A.Y., Ermakova E.V., Zabelin A.V., Zhabitskaya E.I., Druzhilovskaya O.S., Aksenov V.L. // J. Pharm. Biomed. Anal. 2015. V. 114. P. 288. http://doi.org./10.1016/j.jpba.2015.05.034
- Zemlyanaya E.V., Kiselev M.A., Zhabitskaya E.I., Gruzinov A.Y., Aksenov V.L., Ipatova O.M., Druzhilovskaya O.S. // J. Phys.: Conf. Ser. 2016. V. 724. № 1. P. 012056. http://doi.org./10.1088/1742-6596/724/1/012056
- Zemlyanaya E.V., Kiselev M.A., Zhabitskaya E.I., Aksenov V.L., Ipatova O.M., Ivankov O.I. // J. Phys.: Conf. Ser. 2018. V. 1023. № 1. P. 012017. http://doi.org./10.1088/1742-6596/1023/1/012017
- Киселев М.А., Земляная Е.В., Грузинов А.Ю., Жабицкая Е.И., Ипатова О.М., Аксенов В.Л. // Поверхность. Рентген., синхротр. и нейтрон. исслед. 2019. № 2. С. 49. http://doi.org./10.1134/S0207352819020057
- Киселев М.А., Селяков Д.Н., Гапон И.В., Иваньков А.И., Ипатова О.М., Аксенов В.Л., Авдеев М.В. // Кристаллография. 2019. Т. 64. № 4. С. 632. http://doi.org./10.1134/S002347611904012X https://www.sasview.org/
- Свергун Д.И., Фейгин Л.А. Рентгеновское и нейтронное малоугловое рассеяние. М.: Наука, 1986. 280 с.
- Kiselev M.A., Zemlyanaya E.V., Aswal V.K., Neubert R.H.H. // Eur. Biophys. J. 2006. V. 35. № 6. P. 477. http://doi.org./10.1007/s00249-006-0055-9
- Kučerka N., Nieh M.-P., Katsaras J. // Advances in Planar Lipid Bilayers and Liposomes. Elsevier, 2010. V. 12. P. 201. http://doi.org./10.1016/B978-0-12-381266-7.00008-0
- Nagle J.F., Tristram-Nagle S. // Biochim. Biophys. Acta — Rev. Biomembr. 2000. V. 1469. № 3. P. 159. http://doi.org./10.1016/S0304-4157(00)00016-2
Дополнительные файлы
