Первичные рубцовые алопеции: обзор литературы

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Термин «рубцовая алопеция» используется для определения процесса необратимой утраты волос, обусловленной повреждением эпителиальных стволовых клеток области bulge и гибелью волосяных фолликулов с последующим рубцеванием. В зависимости от механизма деструкции волосяного фолликула рубцовые алопеции подразделяют на первичные и вторичные. Первичные рубцовые алопеции с учётом характера воспалительного инфильтрата подразделяют на четыре группы — лимфоцитарные, нейтрофильные, смешанные и группу с неспецифическим инфильтратом.

В обзоре литературы представлены основные клинические, гистологические и дерматоскопические признаки различных видов первичных рубцовых алопеций.

Об авторах

Ирина Владимировна Звездина

Московский государственный медико-стоматологический университет имени А.И. Евдокимова

Автор, ответственный за переписку.
Email: zvezdinhome@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5532-0672
SPIN-код: 2883-2408

кандидат медицинских наук, ассистент 

Россия, 127473, Москва, ул. Делегатская, д. 20/1

Список литературы

  1. Гусаков Н.И. История отечественной дерматовенерологии. Москва : Авваллон, 2007. 461 с.
  2. Harries M.J., Paus R. The pathogenesis of primary cicatricial alopecias // Am J Pathol. 2010. Vol. 177, N 5. Р. 2152–2162. doi: 10.2353/ajpath.2010.100454
  3. Olsen E., Stenn K., Bergfeld W., et al. Update on cicatricial alopecia // J Investig Dermatol Symp Proc. 2003. Vol. 8, N 1. Р. 18–19. doi: 10.1046/j.1523-1747.2003.12166.x
  4. Bolduc C., Sperling L.C., Shapiro J. Primary cicatricial alopecia: Other lymphocytic primary cicatricial alopecias and neutrophilic and mixed primary cicatricial alopecias // J Am Acad Dermatol. 2016. Vol. 75, N 6. Р. 1101–1117. doi: 10.1016/j.jaad.2015.01.056
  5. Загртдинова Р.М., Ляшенко Н.В., Загртдинова Р.Н., Бычковa Н.Ю. Алопеции: патогенетические и клинические характеристики, методы лечения. Ижевск : ИГМА, 2016. 79 с.
  6. Михнёва Е.Н., Гаврилюк А.В. Диагностика псевдопелады Брока и дискоидной красной волчанки волосистой части головы при помощи дерматоскопии // Дерматовенерология. Косметология. Сексопатология. 2011. № 1-4. С. 212–214.
  7. Жулимова Н.Л., Зильберберг Н.Л., Римар О.Г. Псевдопелада Брока как самостоятельное заболевание, подтвержденное клиническими и гистологическими признаками // Лечащий врач. 2014. № 9. С. 81–83.
  8. Kretz C.C., Norpo M., Abeler-Dorner L., et al. Anti-annexin 1 antibodies: a new diagnostic marker in the serum of patients with discoid lupus erythematosus // Exp Dermatol. 2010. Vol. 19, N 10. Р. 919–921. doi: 10.1111/j.1600-0625.2010.01145.x
  9. Rakowska A., Slowinska M., Kowalska-Oledzka E., et al. Trichoscopy of cicatricial alopecia // J Drugs Dermatol. 2012. Vol. 11, N 6. Р. 753–758.
  10. Karadag Kose O., Guleç A.T. Evaluation of a handheld dermatoscope in clinical diagnosis of primary cicatricial alopecias // Dermatol Ther (Heidelb). 2019. Vol. 9, N 3. Р. 525–535. doi: 10.1007/s13555-019-0304-3
  11. Assouly P., Reygagne P. Lichen planopilaris: update on diagnosis and treatment // Semin Cutan Med Surg. 2009. Vol. 28, N 1. Р. 3–10. doi: 10.1016/j.sder.2008.12.006
  12. Федотова К.Ю., Жукова О.В, Круглова Л.С., Пташинский Р.И. Красный плоский лишай: этиология, патогенез, клинические формы, гистологическая картина и основные принципы лечения // Клиническая дерматология и венерология. 2014. Т. 12, № 6. С. 9–20.
  13. Piguet V., Breathnach S.M., Le Cleach L. Lichen planus and lichenoid disorders. In: Rook’s Textbook of Dermatology. Vol. 37. Oxford: Wiley-Blackwell; 2016. Р. 6–7. doi: 10.1002/9781118441213.rtd0038
  14. Kossard S. Postmenopausal frontal fibrosing alopecia. Scarring alopecia in a pattern distribution // Arch Dermatol. 1994. Vol. 130, N 6. Р. 770–774.
  15. Kanti V., Constantinou A., Reygagne P., et al. Frontal fibrosing alopecia: demographic and clinical characteristics of 490 cases // J Eur Acad Dermatol Venereol. 2019. Vol. 33, N 10. Р. 1976–1983. doi: 10.1111/jdv.15735
  16. Романова Ю.Ю., Гаджигороева А.Г., Львов А.Н. К вопросу систематики и дифференциальной диагностики фронтальной фиброзной алопеции // Клиническая дерматология и венерология. 2015. № 5. С. 130–134. doi: 10.17116/klinderma2015145130-134
  17. Tan K.T., Messenger A.G. Frontal fibrosing alopecia: clinical presentations and prognosis // Br J Dermatol. 2009. Vol. 160, N 1. Р. 75–79. doi: 10.1111/j.1365-2133.2008.08861.x
  18. Vano-Galvan S., Molina-Ruiz A.M., Serrano-Falcon C., et al.
  19. Frontal fibrosing alopecia: a multicenter review of 355 patients // J Am Acad Dermatol. 2014. Vol. 70, N 4. Р. 670–678. doi: 10.1016/j.jaad.2013.12.003
  20. Dlova N.C., Jordaan H.F., Skenjane A., et al. Frontal fibrosing alopecia: a clinical review of 20 black patients from South Africa // Br J Dermatol. 2013. Vol. 169, N 4. Р. 939–941. doi: 10.1111/bjd.12424
  21. Tolkachjov S.N., Chaudhry H.M., Camilleri M.J., Torgerson R.R. Frontal fibrosing alopecia among men: A clinicopathologic study of 7 cases // J Am Acad Dermatol. 2017. Vol. 77, N 4. Р. 683–690.e2. doi: 10.1016/j.jaad.2017.05.045
  22. Holmes S. Frontal fibrosing alopecia // Skin Therapy Lett. 2016. Vol. 21, N 4. Р. 5–7.
  23. Diwan N., Gohil S., Nair P.A. Primary idiopathic pseudopelade of brocq: five case reports // Int J Trichology. 2014. Vol. 6, N 1. Р. 27–30. doi: 10.4103/0974-7753.136759
  24. Корсунская И.М., Гусева С.Д., Невозинская З.А. К вопросу о псевдопеладе Брока // Клиническая дерматология и венерология. 2015. Т. 14, № 3. С. 17–21. doi: 10.17116/klinderma201514317-21
  25. Nair P.A., Singhal R., Pariath K. Primary idiopathic pseudopelade of Brocq in a young Child // Int J Trichol. 2017. Vol. 9, N 3. Р. 113–115. doi: 10.4103/ijt.ijt_24_17
  26. Amato L., Mei S., Massi D., et al. Cicatricial alopecia; a dermatopathologic and immunopathologic study of 33 patients (pseudopelade of Brocq is not a specific clinico-pathologic entity) // Int J Dermatol. 2002. Vol. 41, N 1. Р. 8–15. doi: 10.1046/j.1365-4362.2002.01331.x
  27. Elston D.M., McCollough M.L., Warschaw K.E., Bergfeld W.F. Elastic tissue in scars and alopecia // J Cutan Pathol. 2000. Vol. 27, N 3. Р. 147–152. doi: 10.1034/j.1600-0560.2000.027003147.x
  28. Rudnicka L., Olszewska M., Rakowska A. Atlas of Trichoscopy. Dermoscopy in Hair and Scalp Disease. Springer; 2012. Р. 339–344.
  29. Khumalo N.P., Jessop S., Gumedze F., Ehrlich R. Hairdressing and the prevalence of scalp disease in African adults // Br J Dermatol. 2007. Vol. 157, N 5. Р. 981–988. doi: 10.1111/j.1365-2133.2007.08146.x
  30. Olsen E.A., Callender V., McMichael A., et al. Central hair loss in African American women: incidence and potential risk factors // J Am Acad Dermatol. 2011. Vol. 64, N 2. Р. 245–252. doi: 10.1016/j.jaad.2009.11.693
  31. LoPresti P., Papa C.M., Kligman A.M. Hot comb alopecia // Arch Dermatol. 1968. Vol. 98, N 3. Р. 234–238.
  32. Malki L., Sarig O., Romano M.T., et al. Variant PADI3 in central centrifugal cicatricial alopecia // N Engl J Med. 2019. Vol. 380, N 9. Р. 833–841. doi: 10.1056/NEJMoa1816614
  33. Herskovitz I., Miteva M. Central centrifugal cicatricial alopecia: challenges and solutions // Clin Cosmet Investig Dermatol. 2016. Vol. 9. Р. 175–181. doi: 10.2147/CCID.S100816
  34. Miteva M., Tosti A. Pathologic diagnosis of central centrifugal cicatricial alopecia on horizontal sections // Am J Dermatopathol. 2014. Vol. 36, N 11. Р. 859–864; quiz 865-7. doi: 10.1097/DAD.0000000000000174
  35. Miteva M., Tosti A. Dermatoscopic features of central centrifugal cicatricial alopecia // J Am Acad Dermatol. 2014. Vol. 71, N 3. Р. 443–449. doi: 10.1016/j.jaad.2014.04.069
  36. Porteous M.E., Strain L., Logie L.J., et al. Keratosis follicularis spinulosa decalvans: confirmation of linkage to Xp22.13-p22.2 // J Med Genet. 1998. Vol. 35, N 4. Р. 336–337. doi: 10.1136/jmg.35.4.336
  37. Sanke S., Mendiratta V., Singh A., Chander R. Keratosis follicularis spinulosa decalvans with associated mental retardation: response to isotretinoin // Int J Trichol. 2017. Vol. 9, N 3. Р. 138–139. doi: 10.4103/ijt.ijt_25_17
  38. Malvankar D.D., Sacchidanand S. Keratosis follicularis spinulosa decalvans: a report of three cases // Int J Trichol. 2015. Vol. 7, N 3. Р. 125–128. doi: 10.4103/0974-7753.167461
  39. Tosti A., Torres F. Dermoscopy in the diagnosis of hair and scalp disorders // Actas Dermosifiliogr. 2009. Vol. 100, Suppl 1. Р. 114–119. doi: 10.1016/s0001-7310(09)73176-x
  40. Охлопков В.А., Зубарева Е.Ю., Радул Е.В. Декальвирующий фолликулит Кэнко: клиническое наблюдение // Клиническая дерматология и венерология. 2018. Т. 17, № 1. С. 30–33. doi: 10.17116/klinderma201817130-33
  41. Bernardez C., Molina-Ruiz A.M., Requena L. Histologic features of alopecias: part II: scarring alopecias // Actas Dermosifiliogr. 2015. Vol. 106, N 4. Р. 260–270. doi: 10.1016/j.ad.2014.06.016
  42. Мильдзихова Д.Р., Сакания Л.Р., Корсунская И.М. Инверсные акне: абсцедирующий и подрывающий фолликулит и перифолликулит Гоффмана // Клиническая дерматология и венерология. 2018. Т. 17, № 4. С. 110–113.
  43. Юцковская Я.А., Юцковский А.Д., Таран М.Г., Малова Т.А. Клинический случай абсцедирующего подрывающего перифолликулита Гоффмана // Український журнал дерматології, венерології, косметології. 2012. № 2. С. 33–39.
  44. Lee C.N., Chen W., Hsu C.K., et al. Dissecting folliculitis (dissecting cellulitis) of the scalp: a 66-patient case series and proposal of classification // J Dtsch Dermatol Ges. 2018. Vol. 16, N 10. Р. 1219–1226. doi: 10.1111/ddg.13649
  45. Melo D.F., Lemes L.R., Pirmez R., Duque-Estrada B. Trichoscopic stages of dissecting cellulitis: a potential complementary tool to clinical assessment // An Bras Dermatol. 2020. Vol. 95, N 4. Р. 514–517. doi: 10.1016/j.abd.2019.10.008
  46. Salami T., Omeife H., Samuel S. Prevalence of acne keloidalis nuchae in Nigerians // Int J Dermatol. 2007. Vol. 46, N 5. Р. 482–484. doi: 10.1111/j.1365-4632.2007.03069.x
  47. Ogunbiyi A. Acne keloidalis nuchae: prevalence, impact, and management challenges // Clin Cosmet Investig Dermatol. 2016. N 9. Р. 483–489. doi: 10.2147/CCID.S99225
  48. Lozano Pena А.К., Flores M.G., Candiani J.O. Primary cicatricial alopecia, diagnosis and treatment updates // Dermatologia CMQ. 2017. Vol. 15, N 4. Р. 255–264. [In Spain]
  49. Sperling L.C., Homoky C., Pratt L., Sau P. Acne keloidalis is a form of primary scarring alopecia // Arch Dermatol. 2000. Vol. 136, N 4. Р. 479–484. doi: 10.1001/archderm.136.4.479
  50. Kossard S., Collins A., McCrossin I. Necrotizing lymphocytic folliculitis: the early lesion of acne necrotica (varioliformis) // J Am Acad Dermatol. 1987. Vol. 16, N 5, Pt 1. Р. 1007–1014. doi: 10.1016/s0190-9622(87)80408-5
  51. Nikolic M., Peric J., Skiljevic D. Acne necrotica (varioliformis) — case report // Serbian J Dermatol Venereol. 2019. Vol. 11, N 3. Р. 94–97. doi: 10.2478/sjdv-2019-0014
  52. Pitney L.K., O’Brien B., Pitney M.J. Acne necrotica (necrotizing lymphocytic folliculitis): An enigmatic and under-recognised dermatosis // Australas J Dermatol. 2018. Vol. 59, N 1. Р. e53–58. doi: 10.1111/ajd.12592
  53. Vaccaro M., Guarneri C., Barbuzza O., Guarneri B. Erosive pustular dermatosis of the scalp: an uncommon condition typical of elderly patients // J Am Geriatr Soc. 2008. Vol. 56, N 4. Р. 761–762. doi: 10.1111/j.1532-5415.2008.01615.x
  54. Vaccaro M., Barbuzza O., Guarneri B. Erosive pustular dermatosis of the scalp following treatment with topical imiquimod for actinic keratosis // Arch Dermatol. 2009. Vol. 145, N 11. Р. 1340–1341. doi: 10.1001/archdermatol.2009.278
  55. Thuraisingam T., Mirmirani P. Erosive pustular dermatosis: a manifestation of immunosenescence a report of 8 cases // Skin Appendage Disord. 2018. Vol. 4, N 3. Р. 180–186. doi: 10.1159/000484488
  56. Starace M., Loi C., Bruni F., et al. Erosive pustular dermatosis of the scalp: Clinical, trichoscopic, and histopathologic features of 20 cases // J Am Acad Dermatol. 2017. Vol. 76, N 6. Р. 1109–1114.e2. doi: 10.1016/j.jaad.2016.12.016
  57. Starace M., Patrizi A., Piraccini B.M. Visualization of hair bulbs through the scalp: a trichoscopic feature of erosive pustular dermatitis of the scalp // Int J Trichol. 2016. Vol. 8, N 2. Р. 91–93. doi: 10.4103/0974-7753.188038

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО "Эко-Вектор", 2021


 


Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».