Взаимосвязь потребления пищевых продуктов животного происхождения и микробиоты кишечника

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Обоснование. В современном мире питание играет ключевую роль в поддержании здоровья и благополучия человека. Однако неправильное питание и несбалансированный рацион могут привести к развитию различных алиментарно-зависимых заболеваний. В условиях организованного закрытого коллектива, где питание часто стандартизировано и ограничено, риск развития алиментарно-зависимых заболеваний возрастает. Недостаток разнообразия в рационе, низкое качество продуктов и отсутствие контроля над потреблением могут способствовать возникновению острых инфекционных и хронических заболеваний.

Цель. Оценить особенности микробиоты кишечника в зависимости от характеристики потребления пищевых продуктов животного происхождения.

Методы. В исследовании приняли участие 120 представителей мужского пола, которые были объединены в строго организованную группу с ограниченным доступом (коллектив закрытого типа). Была проведена оценка фактического питания участников на основе метода 24-часового воспроизведения суточного рациона. Микробиоту кишечника исследовали культуральным методом с применением расширенного набора питательных сред и идентификацией всех выделенных микроорганизмов с помощью MALDI-ToF масс-спектрометрии. Статистический анализ проводили с использованием специального программного обеспечения стандартного пакета StatTech v.4.2.6.

Результаты. При употреблении молока и молочных продуктов достоверно чаще были выделены Salmonella spp., яичных продуктов — Agromyces spp., Geobacillus spp., Roseomonas spp., мясных продуктов — Lactococcus spp., рыбных продуктов — Limosilactobacillus spp., Salmonella spp., Micrococcus spp., масел животного происхождения — Klebsiella spp., Lactococcus spp.

Заключение. Результаты проведённого исследования выявили ряд особенностей состава микробиоты при употреблении отдельных пищевых продуктов животного происхождения. Установлены статистически значимые корреляционные связи между употреблением готовых мясных и рыбных блюд и выделением Lactococcus spp., Limosilactobacillus spp., Salmonella spp., Micrococcus spp. Обозначена взаимосвязь между потреблением молочных и яичных продуктов питания и выделением Salmonella spp., Agromyces spp., Geobacillus spp., Roseomonas spp.

Об авторах

Александр Вадимович Ермолаев

Самарский государственный медицинский университет; 1026 центр государственного санитарно-эпидемиологического надзора военного округа

Автор, ответственный за переписку.
Email: a.v.ermolaev@samsmu.ru
ORCID iD: 0000-0003-4044-9139
SPIN-код: 1541-8495
Россия, Самара; Самара

Артем Викторович Лямин

Самарский государственный медицинский университет

Email: a.v.lyamin@samsmu.ru
ORCID iD: 0000-0002-5905-1895
SPIN-код: 6607-8990

д-р мед. наук, доцент

Россия, Самара

Дмитрий Олегович Горбачев

Самарский государственный медицинский университет

Email: d.o.gorbachev@samsmu.ru
ORCID iD: 0000-0002-8044-9806
SPIN-код: 1276-2740

д-р мед. наук, доцент

Россия, Самара

Список литературы

  1. Tutelyan VA, Vyalkov AI, Razumov AN. The science of healthy eating. Moscow: Panorama; 2010. 839 р. (In Russ.) EDN: TFKGHH
  2. Tutelyan VA, Nikityuk DB. Key challenges in the dietary intake structure and cutting edge technologies for optimizing nutrition to protect the health of the Russian рopulation. Problems of Nutrition. 2024;93(1):6–21. doi: 10.33029/0042-8833-2024-93-1-6-21 EDN: XCDQZJ
  3. Kiprushkina EI, Kolodyaznaya VS, Filippov VI, et al. The importance of nutrition in the forming of intestinal microbiome. Journal of International Academy of Refrigeration. 2020;(2):52–59. doi: 10.17586/1606-4313-2020-19-2-52-59 EDN: JFZYEJ
  4. Stoma IO. Microbiome in medicine: a guide for doctors. Moscow: GEOTAR-Media; 2020. 319 р. (In Russ.) ISBN: 978-5-9704-5844-0
  5. Nikonova EL, Popova EN, editors. Microbiota. Moscow: Media Sfera; 2019. 256 р. (In Russ.) ISBN: 978-5-89084-058-5
  6. Bragina TV, Sheveleva SA, Elizarova EV, et al. The structure of blood gut microbiota markers in athletes and their relationship with the diet. Problems of Nutrition. 2022;91(4):35–46. doi: 10.33029/0042-8833-2022-91-4-35-46 EDN: HXIFIJ
  7. Markova YuM, Sidorova YuS. Amaranth, quinoa and buckwheat grain products: role in human nutrition and maintenance of the intestinal microbiome. Problems of Nutrition. 2022;91(6):17–29. doi: 10.33029/0042-8833-2022-91-6-17-29 EDN: YQIQFY
  8. Kontareva VYu, Kryuchkova VV. Influence of the enriched kefir products on enterobakteria development. Food Processing: Techniques and Technology. 2017;(4):54–59. doi: 10.21603/2074-9414-2017-4-54-59 EDN: VZJRZB
  9. Hoffmann V, Simiyu S, Sewell DK, et al. Milk product safety and household food hygiene influence bacterial contamination of infant food in Peri-Urban Kenya. Front Public Health. 2022;9:772892. doi: 10.3389/fpubh.2021.772892
  10. Zhan Y, Yong-Jiang X, Yuanfa L. Influences of dietary oils and fats, and the accompanied minor content of components on the gut microbiota and gut inflammation: A review. Trends in Food Science & Technology. 2021;113:255–276. doi: 10.1016/j.tifs.2021.05.001
  11. Viteri-Echeverría J, Calvo-Lerma J, Ferriz-Jordán M, et al. Association between dietary intake and faecal microbiota in children with cystic fibrosis. Nutrients. 2023;15(24):5013. doi: 10.3390/nu15245013
  12. Syromyatnikov MY, Kokina AV, Solodskikh SA, et al. High-Throughput 16S rRNA gene sequencing of butter microbiota reveals a variety of opportunistic pathogens. Foods (Basel, Switzerland). 2020;9(5):608. doi: 10.3390/foods9050608
  13. Liu X, Shao Y, Sun J, et al. Egg consumption improves vascular and gut microbiota function without increasing inflammatory, metabolic, and oxidative stress markers. Food Sci Nutr. 2021;10 (1):295–304. doi: 10.1002/fsn3.2671
  14. Barakat RK, Griffiths MW, Harris LJ. Isolation and characterization of Carnobacterium, Lactococcus, and Enterococcus spp. from cooked, modified atmosphere packaged, refrigerated, poultry meat. Int J Food Microbiol. 2000;62(1-2):83–94. doi: 10.1016/S0168-1605(00)00381-0
  15. Settier-Ramírez L, López-Carballo G, Gavara R, et al. Evaluation of Lactococcus lactis subsp. lactis as protective culture for active packaging of non-fermented foods: creamy mushroom soup and sliced cooked ham. Food Control. 2021;122(3):107802. doi: 10.1016/j.foodcont.2020.107802
  16. Okyere A, Bishoff D, Oyaro MO, et al. Analysis of fish commonly sold in local supermarkets reveals the presence of pathogenic and multidrug-resistant bacterial communities. Microbiology Insights. 2018;11:1178636118786925. doi: 10.1177/1178636118786925
  17. Shang Q, Li Q, Zhang M, et al. Dietary Keratan Sulfate from shark cartilage modulates gut microbiota and increases the abundance of Lactobacillus spp. Mar Drugs. 2016;14(12):224. doi: 10.3390/md14120224
  18. Belleggia L, Osimani A. Fermented fish and fermented fish-based products, an ever-growing source of microbial diversity: a literature review. Food Res Int. 2023;172:113112. doi: 10.1016/j.foodres.2023.113112
  19. Tacconi E, Palma G, De Biase D, et al. Microbiota effect on trimethylamine n-oxide production: from cancer to fitness — a practical preventing recommendation and therapies. Nutrients. 2023;15(3):563. doi: 10.3390/nu15030563

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Сравнительная характеристика облигатной микробиоты кишечника лиц, сформированных в организованный коллектив закрытого типа.

Скачать (60KB)
Метаданные

© Эко-Вектор, 2025

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
 


Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).