Effectiveness of Farnesol for treatment of dog otitis complicated by Malassezia pachydermatis


Cite item

Full Text

Abstract

The study involved 30 dogs with otitis complicated by Malassezia pachydermatis . The animals were divided into 2 groups: experimental (n = 15) and control (n = 15). The experimental group was prescribed veterinary ear drops Surolan + a solution of the drug Farnesol; the control group - Surolan. The study showed that when Farnesol is added to the treatment regimen for fungal otitis etiology in dogs, small changes in the clinical composition of the blood are recorded, characterized by an increase in the number of erythrocytes and hemoglobin, a decrease in the number of leukocytes, with a decrease in the indicators of eosinophils and rod-shaped neutrophils in the experiment compared with the control. In addition, the complete absence of Malassezia pachydermatis in the smears of the ear contents after two weeks of therapy with a combined drug was proved. That is, in the experimental group, there were no cases of the presence of yeast-like fungi (YLF) in the smear after combined therapy with Surolan + Farnesol. And in the control group of 15 animals, YLF were observed in two with microscopy of ear exudate smears, but not in high concentration. The use of a combination of Surolan and Farnesol in dogs of the experimental group led to a decrease in hyperemia, itching, edema, ear fetid fluid on the 5th…7th days of treatment, and complete clinical recovery of the animals occurred by the 10th…14th day of therapy. In the control group, only Surolan was used, and improvement of clinical condition occurred on days 12…14, and recovery only after completion of the full course. As a result, both treatment regimens were successful, but the scheme with Farnesol gave faster results due to the wide spectrum of action of this drug: both antimicrobial and anti-inflammatory.

About the authors

Ifarajimi R. Olabode

RUDN University

Author for correspondence.
Email: 1042205126@rudn.ru
ORCID iD: 0000-0003-2395-7350

postgraduate student, Department of Veterinary Medicine, Agrarian and Technological Institute

6 Miklukho-Maklaya st., Moscow, 117198, Russian Federation

Nadezhda P. Sachivkina

RUDN University

Email: sachivkina@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-1100-929X
SPIN-code: 1172-3163

Candidate of Biological Sciences, Associate Professor, Department of Microbiology, Medical Institute

6 Miklukho-Maklaya st., Moscow, 117198, Russian Federation

Ekaterina V. Kiseleva

Pskov State University; Nikulin Circus on Tsvetnoy Boulevard

Email: kirsanovakaterina@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4907-9384

veterinarian, Nikulin Circus on Tsvetnoy Boulevard ; postgraduate student, Department of Zoology and Animal Ecology, Pskov State University

13 Tsvetnoy Boulevard, Moscow, 127051, Russian Federation; 21 Sovetskaya st., Pskov, 180000, Russian Federation

Aleksey I. Shurov

RUDN University

Email: shurov_ai@rudn.university
ORCID iD: 0000-0003-2289-9814
SPIN-code: 9286-9577

postgraduate student, Department of Veterinary Medicine, veterinarian, Center for Veterinary Innovative Medicine, Agrarian and Technological Institute

6 Miklukho-Maklaya st., Moscow, 117198, Russian Federation

References

  1. Dutova OG, Kraskova EV, Radyuk I.E. The comparison of otitis etiology and treatment in small nonproducing animals. Bulletin of Altai State Agricultural University. 2016;(9):125–128. (In Russ.).
  2. White SD, Bourdeau P, Blumstein P, Ibish K, Scott KV, Salman ND, et al. Comparison via cytology and culture of carriage of Malassezia pachydermatis in atopic and healthy dogs. In: Advances in Veterinary Dermatology: volume 3. Proceedings of the Third World Congress of Veterinary Dermatology, Edinburgh, Scotland, 11–14 September, 1996. Oxford: Butterworth-Heinemann Ltd; 1998.
  3. Kiss G, Radvanyi S, Szigeti G. Characteristics of Malassezia pachydermatis strains isolated from canine otitis externa. Mycoses. 1996;39(7–8):313–321. doi: 10.1111/j.1439–0507.1996.tb00146.x
  4. Hobi S, Cafarchia C, Romano V, Barrs, VR. Malassezia: Zoonotic Implications, Parallels and Differences in Colonization and Disease in Humans and Animals. Journal of Fungi. 2022;8(7):708. doi: 10.3390/jof8070708
  5. Puigdemont A, D’Andreano S, Ramió-Lluch L, Cuscó A, Francino O, Brazis P. Effect of an anti inflammatory pomegranate otic treatment on the clinical evolution and microbiota profile of dogs with otitis externa. Veterinary Dermatology. 2021;32(2):158-e37. doi: 10.1111/vde.12930
  6. Guillot J, Bond R. Malassezia yeasts in veterinary dermatology: an updated overview. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2020;10:79. doi: 10.3389/fcimb.2020.00079
  7. Korbelik J, Singh A, Rousseau J, Weese JS. Analysis of the otic mycobiota in dogs with otitis externa compared to healthy individuals. Vet. Dermatol. 2018;29(5):417-e138. doi: 10.1111/vde.12665
  8. Bond R, Ferguson EA, Curtis CF, Craig JM, Lloyd DH. Factors associated with elevated cutaneous Malassezia pachydermatis populations in dogs with pruritic skin disease. J. Small Anim. Pract. 1996;37(3):103–107. doi: 10.1111/j.1748–5827.1996.tb02353.x
  9. Cafarchia C, Gallo S, Romito D, Capelli G, Chermette R, Guillot J, Otranto D. Frequency, body distribution, and population size of Malassezia species in healthy dogs and in dogs with localized cutaneous lesions. J Vet Diagn Invest. 2005;17(4):316–322.
  10. Rudenko P, Vatnikov Y, Sachivkina N, Rudenko A, Kulikov E, Lutsay V, Notina E, Bykova I, Petrov A, Drukovskiy S, Olabode IR. Search for promising strains of probiotic microbiota isolated from different biotopes of healthy cats for use in the control of surgical infections. Pathogens. 2021;10(6):667. doi: 10.3390/ pathogens10060667
  11. Park M, Park S, Jung WH. Skin Commensal Fungus Malassezia and Its Lipases. J Microbiol Biotechnol. 2021;31(5):637–644. doi: 10.4014/jmb.2012.12048
  12. Gómez-García M, Madrigal I, Puente H, Mencía-Ares Ó, Argüello H, Carvajal A, Fregeneda-Grandes J.M. In vitro activity of essential oils against microbial isolates from otitis externa cases in dogs. Nat Prod Res. 2022;36(17):4552–4556. doi: 10.1080/14786419.2021.1993217
  13. Sim JXF, Khazandi M, Chan WY, Trott DJ, Deo P. Antimicrobial activity of thyme oil, oregano oil, thymol and carvacrol against sensitive and resistant microbial isolates from dogs with otitis externa. Vet Dermatol. 2019;30(6):524-e159. doi: 10.1111/vde.12794
  14. Sachivkina NP, Senyagin AN, Podoprigora IV, Brown DG, Vissarionova VV. Modulating the antifungal activity of antimycotic drugs with farnesol. Drug development & registration. 2021;10(4):162–168. (In Russ.). doi: 10.33380/2305–2066–2021–10–4–162–168
  15. Sachivkina N, Podoprigora I, Bokov D. Morphological characteristics of Candida albicans, Candida krusei, Candida guilliermondii, and Candida glabrata biofilms, and response to Farnesol. Vet. World. 2021;14(6):1608– 1614. doi: 10.14202/vetworld.2021.1608–1614
  16. Sachivkina N, Lenchenko E, Blumenkrants D, Ibragimova A, Bazarkina O. Effects of farnesol and lyticase on the formation of Candida albicans biofilm. Vet. World. 2020;13(6):1030–1036. doi: 10.14202/ vetworld.2020.1030–1036
  17. Vatnikov Y, Donnik I, Kulikov E, Karamyan A, Sachivkina N, Rudenko P, Tumanyan A, Khairova N, Romanova E, Gurina R, Sotnikova E, Bondareva I. Research on the antibacterial and antimycotic effect of the Phyto preparation Farnesol on biofilm-forming microorganisms in veterinary medicine. Int. J. Pharm. Res. 2020;12(Suppl.2):1481–1492. doi: 10.31838/ijpr/2020.SP2.164
  18. Sachivkina N, Senyagin A, Podoprigora I, Vasilieva E, Kuznetsova O, Karamyan A, Ibragimova A, Zhabo N, Molchanova M. Enhancement of the antifungal activity of some antimycotics by farnesol and reduction of Candida albicans pathogenicity in a quail model experiment. Veterinary World. 2022;15(4): 848–854. doi: 10.14202/vetworld.2022.848–854
  19. Sachivkina N, Podoprigora I, Senyagin A, Ibragimova A, Avdonina M, Shvedova I. The use of Farnesol to increase the antifungal activity of some antibiotics against Candida albicans. FEBS OPEN BIO. 2022;12(Suppl.1):169. P-02.2–007. doi: 10.1002/2211–5463.13440
  20. Sachivkina N, Karamyan A, Kuznetsova O, Ibragimova A, Ebzeeva A, Mussa R, Akimenkova A. The use of extracts Tilia cordata flowers and Tripleurospermum inodorum flowers against Candida albicans biofilms. FEBS OPEN BIO. 2021;11(Suppl.1):288. P-05.4–08. doi: 10.1002/2211–5463.13205
  21. Mbarga MJA, Podoprigora IV, Goriainov VS, Fadi H, Yashina NV, Zhigunova AV, Vasilyeva E.A., Senyagin A.N., Sachivkina N. Phytochemical Analysis, Antibacterial and Antibiofilm Activities of Aloe vera Aqueous Extract against Selected Resistant Gram-Negative Bacteria Involved in Urinary Tract Infections. Fermentation. 2022;8(11):626. doi: 10.3390/fermentation8110626
  22. Sachivkina N, Vasilieva E, Lenchenko E, Kuznetsova O, Karamyan A, Ibragimova A, Zhabo N, Molchanova M. Reduction in Pathogenicity in Yeast-like Fungi by Farnesol in Quail Model. Animals. 2022;12(4):489. doi: 10.3390/ani12040489
  23. Arfenia K, Sachivkina N, Liseitse A, Alabdallah Z, Byakhova V. Biochemical parameters of quail blood in experimental gastrointestinal tract candidiasis. FEBS OPEN BIO. 2022;12(Suppl.1):292. P-04.5–015. doi: 10.1002/2211–5463.13440
  24. Theelen B, Cafarchia C, Gaitanis G, Bassukas ID, Boekhout T, Dawson TL. Malassezia ecology, pathophysiology, and treatment. Med. Mycol. 2018;56(Suppl.1):10–25. doi: 10.1093/mmy/myx134
  25. Bond R, Lloyd DH, Plummer JM. Evaluation of a detergent scrub technique for the quantitative culture of Malassezia pachydermatis from canine skin. Research in Veterinary Science. 1995;58(2):1337. doi: 10.1016/0034– 5288(95)90066–7
  26. Bond R, Ferguson EA, Curtis CF, Craig JM, Lloyd DH. Factors associated with elevated cutaneous Malassezia pachydermatis populations in dogs with pruritic skin disease. Journal of Small Animal Practice. 1996;37(3):103–107. doi: 10.1111/j.1748–5827.1996.tb02353.x
  27. Sachivkina N, Lenchenko E, Strizakov A, Zimina V, Gnesdilova L, Gavrilov V, Byakhova V, Germanova S, Zharov A, Molchanova M. The Evaluation of formation of biomembrane by microscopic Fungi of the Candida Genus. Int. J. Pharm. Res. 2018;10(4):738–744.
  28. Sachivkina NP, Lenchenko EM, Mannapova RT Strizhakov AA, Romanova EV, Lukina DM. Candida Biofi Modeling: Past and Present. Farmatsiya. 2019;68(3):18–22. (In Russ.). doi: 10.29296/25419218–2019–03–03
  29. Cannizzo FT, Eraso E, Ezkurra PA, Villar-Vidal M, Bollo E, Castellá G, Cabañes FJ, Vidotto V, Quindós G. Biofilm development by clinical isolates of Malassezia pachydermatis. Med Mycol. 2007;45(4):357– 361. doi: 10.1080/13693780701225767
  30. Yang HO, Cho YJ, Lee JM, Kim KD. Transcriptional interplay between Malassezia restricta and Staphylococcus species co-existing in the skin environment. J Microbiol Biotechnol. 2023;33(3):319. doi: 10.4014/jmb.2212.12026
  31. Lee K, Zhang I, Kyman S, Kask O, Cope EK. Co-infection of Malassezia sympodialis With Bacterial Pathobionts Pseudomonas aeruginosa or Staphylococcus aureus Leads to Distinct Sinonasal Inflammatory Responses in a Murine Acute Sinusitis Model. Front Cell Infect Microbiol. 2020;10:472. doi: 10.3389/ fcimb.2020.00472
  32. Forster SL, Real T, Doucette KP, King SB. A randomized placebo-controlled trial of the efficacy and safety of a terbinafine, florfenicol and betamethasone topical ear formulation in dogs for the treatment of bacterial and/ or fungal otitis externa. BMC Vet. Res. 2018;14:262. doi: 10.1186/s12917–018–1589–7
  33. Yılmaz Öztürk B, Yenice Gürsu B, Dağ İ. In vitro effect of farnesol on planktonic cells and dual biofilm formed by Candida albicans and Escherichia coli. Biofouling. 2022;38(4):355–366. doi: 10.1080/08927014.2022.2066530
  34. Namba AM, Santos ELS, Garcia MT, Ribeiro FC, Figueiredo-Godoi LMA, Rossoni RD, Junqueira JC. Farnesol as a potentiator of antimicrobial photodynamic inactivation on Enterococcus faecalis. Photodiagnosis Photodyn Ther. 2022;39:102928. doi: 10.1016/j.pdpdt.2022.102928
  35. Anyutoulou KLD, Mbagra MJA, Podoprigora IV, Yashina NV, Zhigunova AV, Vasilyeva EA, Senyagin AN, Sachivkina N, Gizinger OA, Sharova IN, Das MS. Quorum-Sensing Inhibitors from Probiotics as a Strategy to Combat Bacterial Cell-to-Cell Communication Involved in Food Spoilage and Food Safety. Fermentation. 2022;8(12):711. doi: 10.3390/fermentation8120711
  36. Ivanova A, Ivanova K, Fiandra L, Mantecca P, Catelani T, Natan M, Banin E, Jacobi G, Tzanov T. Antibacterial, Antibiofilm, and Antiviral Farnesol-Containing Nanoparticles Prevent Staphylococcus aureus from Drug Resistance Development. Int J Mol Sci. 2022;23(14):7527. doi: 10.3390/ijms23147527
  37. Mahendrarajan V, Bari VK. A critical role of farnesol in the modulation of Amphotericin B and Aureobasidin A antifungal drug susceptibility. Mycology. 2022;13(4):305–317. doi: 10.1080/21501203.2022.2138599
  38. Bond R, Anthony RM. Characterization of markedly lipid-dependent Malassezia pachydermatis isolates from healthy dogs. Journal of Applied Bacteriology. 1995;78(5): 537–542. doi: 10.1111/j.1365–2672.1995.tb03096.x
  39. Bond R, Lloyd D. Comparison of media and conditions of incubation for the quantitative culture of Malassezia pachydermatis from canine skin. Research in Veterinary Science. 1996;61(3):273–274. doi: 10.1016/ S0034–5288(96)90078–8
  40. Chiavassa E, Tizzani P, Peano A. In vitro antifungal susceptibility of Malassezia pachydermatis strains isolated from dogs with chronic and acute otitis externa. Mycopathologia. 2014;178:315–319. doi: 10.1007/ s11046–014–9782–0
  41. Angileri M, Pasquetti M, De Lucia M, Peano A. Azole resistance of Malassezia pachydermatis causing treatment failure in a dog. Med. Mycol. Case Rep. 2019;23:58–61. doi: 10.1016/j.mmcr.2018.12.004

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download


Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».