Влияние эндотелиальной дисфункции и фиброза миокарда на прогноз у пациентов с хронической сердечной недостаточностью после инфаркта миокарда
- Авторы: Трусов Ю.А.1
-
Учреждения:
- ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России
- Выпуск: Том 25, № 3 (2025)
- Страницы: 22-27
- Раздел: КАРДИОЛОГИЯ
- URL: https://journal-vniispk.ru/2410-3764/article/view/315110
- DOI: https://doi.org/10.35693/AVP681776
- ID: 315110
Цитировать
Полный текст
Аннотация
На сегодняшний день перспективным направлением определения прогноза ХСН и ее дальнейшего клинического течения является изучение предикторов, отражающих патогенез сердечной недостаточности. Эндотелиальная дисфункция является независимым предиктором риска сердечно-сосудистых событий. На сегодняшний день становится более очевидным, что миокардиальный фиброз играет значительную роль в патогенезе ХСН у больных с инфарктом миокарда. Миокардиальный фиброз коррелирует с усилением аритмий, госпитализацией и смертностью при сердечной недостаточности.
Автор провел поиск публикаций в электронных базах данных PubMed, Web of Science, Google Scholar и ELibrary. В обзорной статье проведен анализ прогностического значения дисфункции эндотелия и миокардиального фиброза у пациентов с ХСН, перенесших инфаркт миокарда.
Существуют две основные гистологические формы реактивного фиброза – интерстициальный и периваскулярный, которые часто сосуществуют. Интерстициальный фиброз ассоциирован с хроническими стрессорами. Периваскулярная фиброзная ткань богата воспалительным клеточным инфильтратом и более выражена при состояниях с преобладанием эндотелиального повреждения. Дифференцировать эффекты интерстициального и периваскулярного фиброза сложно, поскольку данные процессы обычно сосуществуют.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Юрий Александрович Трусов
ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России
Автор, ответственный за переписку.
Email: yu.a.trusov@samsmu.ru
ORCID iD: 0000-0001-6407-3880
врач-кардиолог Клиник СамГМУ, ассистент кафедры пропедевтической терапии с курсом кардиологии
Россия, СамараСписок литературы
- Polyakov DS, Fomin IV, Belenkov YuN, et al. Chronic heart failure in the Russian Federation: what has changed over 20 years of follow-up? Results of the EPOCH-CHF study. Kardiologiia. 2021;61(4):4-14. [Поляков Д.С., Фомин И.В., Беленков Ю.Н., и др. Хроническая сердечная недостаточность в Российской Федерации: что изменилось за 20 лет наблюдения? Результаты исследования ЭПОХА-ХСН. Кардиология. 2021;61(4):4-14]. doi: 10.18087/cardio.2021.4.n1628
- Zile MR, Baicu CF, Ikonomidis JS, et al. Myocardial stiffness in patients with heart failure and a preserved ejection fraction: contributions of collagen and titin. Circulation. 2015;131(14):1247-59. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.114.013215
- Yuyun MF, Kinlay S, Singh JP, Joseph J. Are arrhythmias the drivers of sudden cardiac death in heart failure with preserved ejection fraction? A review. ESC Heart Fail. 2023;10(3):1555-1569. doi: 10.1002/ehf2.14248
- Kanagala P, Cheng ASH, Singh A, et al. Relationship Between Focal and Diffuse Fibrosis Assessed by CMR and Clinical Outcomes in Heart Failure With Preserved Ejection Fraction. JACC Cardiovasc Imaging. 2019;12(11 Pt 2):2291-2301. doi: 10.1016/j.jcmg.2018.11.031
- Asgari M, Latifi N, Heris HK, et al. In vitro fibrillogenesis of tropocollagen type III in collagen type I affects its relative fibrillar topology and mechanics. Scientific reports. 2017;7(1):1-10. doi: 10.1038/s41598-017-01476-y
- Echegaray K, Andreu I, Lazkano A, et al. Role of Myocardial Collagen in Severe Aortic Stenosis With Preserved Ejection Fraction and Symptoms of Heart Failure. Rev Esp Cardiol (Engl Ed). 2017;70(10):832-840. doi: 10.1016/j.rec.2016.12.038
- Kasner M, Westermann D, Lopez B, et al. Diastolic tissue Doppler indexes correlate with the degree of collagen expression and cross-linking in heart failure and normal ejection fraction. J Am Coll Cardiol. 2011;57(8):977-85. doi: 10.1016/j.jacc.2010.10.024
- Okayama K, Azuma J, Dosaka N, et al. Hepatocyte growth factor reduces cardiac fibrosis by inhibiting endothelial-mesenchymal transition. Hypertension. 2012;59(5):958-65. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.111.183905
- Kramann R, Schneider RK, DiRocco DP, et al. Perivascular Gli1+ progenitors are key contributors to injury-induced organ fibrosis. Cell stem cell. 2015;16(1):51-66. doi: 10.1016/j.stem.2014.11.004
- Nevers T, Salvador AM, Velazquez F, et al. Th1 effector T cells selectively orchestrate cardiac fibrosis in nonischemic heart failure. J Exp Med. 2017;214(11):3311-3329. doi: 10.1084/jem.20161791
- Szardien S, Nef HM, Voss S, et al. Regression of cardiac hypertrophy by granulocyte colony-stimulating factor-stimulated interleukin-1β synthesis. Eur Heart J. 2012;33(5):595-605. doi: 10.1093/eurheartj/ehr434
- Treibel TA, Kozor R, Schofield R, et al. Reverse myocardial remodeling following valve replacement in patients with aortic stenosis. J Am Coll Cardiol. 2018;71(8):860-871. doi: 10.1016/j.jacc.2017.12.035
- López B, González A, Querejeta R, et al. Galectin-3 and histological, molecular and biochemical aspects of myocardial fibrosis in heart failure of hypertensive origin. Eur J Heart Fail. 2015;17(4):385-92. doi: 10.1002/ejhf.246
- López B, González A, Ravassa S, et al. Circulating biomarkers of myocardial fibrosis: the need for a reappraisal. J Am Coll Cardiol. 2015;65(22):2449-2456. doi: 10.1016/j.jacc.2015.04.026
- Martos R, Baugh J, Ledwidge M, et al. Diagnosis of heart failure with preserved ejection fraction: improved accuracy with the use of markers of collagen turnover. Eur J Heart Fail. 2009;11(2):191-7. doi: 10.1093/eurjhf/hfn036
- Ontario Health (Quality). Use of B-type natriuretic peptide (BNP) and N-terminal proBNP (NT-proBNP) as diagnostic tests in adults with suspected heart failure: a health technology assessment. Ont Health Technol Assess Ser. 2021;21(2):1-125. PMCID: PMC8129637
- Hendricks S, Dykun I, Balcer B, et al. Higher BNP/NT-pro BNP levels stratify prognosis equally well in patients with and without heart failure: a meta-analysis. ESC Heart Fail. 2022;9(5):3198-3209. doi: 10.1002/ehf2.14019
- Chaikijurajai T, Tang WH. Reappraisal of inflammatory biomarkers in heart failure. Curr Heart Fail Rep. 2020;17(1):9-19. doi: 10.1007/s11897-019-00450-1
- Diao K. Histologic validation of myocardial fibrosis measured by T1 mapping: a systematic review and meta-analysis. J Cardiovasc Magn Reson. 2017;18(1):1-11. doi: 10.1186/s12968-016-0313-7
- Rommel KP, Von Roeder M, Latuscynski K, et al. Extracellular volume fraction for characterization of patients with heart failure and preserved ejection fraction. J Am Coll Cardiol. 2016;67(15):1815-1825. doi: 10.1016/j.jacc.2016.02.018
- Schelbert EB, Fridman Y, Wong TC, et al. Temporal Relation Between Myocardial Fibrosis and Heart Failure With Preserved Ejection Fraction: Association With Baseline Disease Severity and Subsequent Outcome. JAMA Cardiol. 2017;2(9):995-1006. doi: 10.1001/jamacardio.2017.2511
- Zhang X, Yang S, Hao S, et al. Myocardial fibrosis and prognosis in heart failure with preserved ejection fraction: a pooled analysis of 12 cohort studies. Eur Radiol. 2024;34(3):1854-1862. doi: 10.1007/s00330-023-10218-w
- Yang JH, Obokata M, Reddy YNV, et al. Endothelium-dependent and independent coronary microvascular dysfunction in patients with heart failure with preserved ejection fraction. Eur J Heart Fail. 2020;22(3):432-441. doi: 10.1002/ejhf.1671
- Lin X, Wu G, Wang S, Huang J. The prevalence of coronary microvascular dysfunction (CMD) in heart failure with preserved ejection fraction (HFpEF): a systematic review and meta-analysis. Heart Fail Rev. 2024;29(2):405-416. doi: 10.1007/s10741-023-10362-x
- Sweeney M, Corden B, Cook SA. Targeting cardiac fibrosis in heart failure with preserved ejection fraction: mirage or miracle? EMBO Mol Med. 2020;12(10):e10865. doi: 10.15252/emmm.201910865
- Paulus WJ, Tschöpe C. A novel paradigm for heart failure with preserved ejection fraction: comorbidities drive myocardial dysfunction and remodeling through coronary microvascular endothelial inflammation. J Am Coll Cardiol. 2013;62(4):263-71. doi: 10.1016/j.jacc.2013.02.092
- Westermann D, Lindner D, Kasner M, et al. Cardiac inflammation contributes to changes in the extracellular matrix in patients with heart failure and normal ejection fraction. Circ Heart Fail. 2011;4(1):44-52. doi: 10.1161/CIRCHEARTFAILURE.109.931451
- Waddingham MT, Sonobe T, Tsuchimochi H, et al. Diastolic dysfunction is initiated by cardiomyocyte impairment ahead of endothelial dysfunction due to increased oxidative stress and inflammation in an experimental prediabetes model. J Mol Cell Cardiol. 2019;137:119-131. doi: 10.1016/j.yjmcc.2019.10.005
- Peet C, Ivetic A, Bromage DI, Shah AM. Cardiac monocytes and macrophages after myocardial infarction. Cardiovasc Res. 2020;116(6):1101-1112. doi: 10.1093/cvr/cvz336
- Krüger M, Kötter S, Grützner A, et al. Protein kinase G modulates human myocardial passive stiffness by phosphorylation of the titin springs. Circ Res. 2009;104(1):87-94. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.108.184408
- Vitiello D, Harel F, Touyz RM, et al. Changes in cardiopulmonary reserve and peripheral arterial function concomitantly with subclinical inflammation and oxidative stress in patients with heart failure with preserved ejection fraction. Int J Vasc Med. 2014;2014:917271. doi: 10.1155/2014/917271
- Klimczak-Tomaniak D, Haponiuk-Skwarlińska J, Kuch M, Pączek L. Crosstalk between microRNA and Oxidative Stress in Heart Failure: A Systematic Review. Int J Mol Sci. 2022;23(23):15013. doi: 10.3390/ijms232315013
- Anusruti A, Xuan Y, Gào X, et al. Factors associated with high oxidative stress in patients with type 2 diabetes: a meta-analysis of two cohort studies. BMJ Open Diabetes Res Care. 2020;8(1):e000933. doi: 10.1136/bmjdrc-2019-000933
- Premer C, Kanelidis AJ, Hare JM, Schulman IH. Rethinking Endothelial Dysfunction as a Crucial Target in Fighting Heart Failure. Mayo Clinic Proceedings: Innovations, Quality & Outcomes. 2019;3(1):1-13. doi: 10.1016/j.mayocpiqo.2018.12.006
Дополнительные файлы


