Функциональная активность системы крови двух мигрирующих видов рукокрылых Урала

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Представлены данные по исследованию функциональной активности системы крови мигрирующих видов фауны Урала: двухцветного кожана и лесного нетопыря. Многомерный непараметрический дисперсионный анализ параметров красной крови мигрирующих видов летучих мышей и оседлого вида прудовой ночницы показал статистически значимые видовые различия (р < 0.05). У рукокрылых отмечена определенная генетически детерминированная разнонаправленность в мобилизации механизмов аварийного регулирования лимфоидной системы крови.

Полный текст

Введение

На Урале обитает 13 видов летучих мышей, из которых девять видов зимуют в районах летних местообитаний, а четыре вида мигрируют на дальние расстояния [1–2]. Из перелетных видов наиболее исследованы два – двухцветный кожан (Vespertilio murinus [Linnaeus, 1758]) и лесной нетопырь (Pipistrellus nathusii [Keyserling et Blasius, 1839]) [3]. Направления перелетов рукокрылых, их дальность и места зимовок в настоящее время точно не установлены, однако они могут быть весьма значительны [4–5]. Исследователи отмечают, что мигрирующие виды летучих мышей сталкиваются с многочисленными природными факторами, включая изменения климата [6, 7], потерю и фрагментацию среды обитания под усиливающимся техногенным прессом [8, 9], что существенным образом влияет на их эврибионтность и выживание [10–12]. Учитывая, что устойчивая адаптация обеспечивается оптимально отрегулированными эколого-физиологическими процессами, значительный интерес приобретает изучение в сравнительном варианте системы крови мигрирующих и оседлых видов рукокрылых. Ранее авторами дана оценка гематологических параметров крови оседлого вида фауны Урала Myotis dasycneme [Boie, 1825] [13]. Представленные в настоящей статье материалы являются результатом исследований функциональной активности системы крови мигрирующих видов рукокрылых Урала.

Материалы и методы

Исследуемая группа представлена сеголетками двух видов мигрирующих летучих мышей: лесного нетопыря (P. nathusii) и двухцветного кожана (V. murinus). Лесной нетопырь широко распространен в зонах широколиственных и смешанных лесов с наличием водоемов, а двухцветный кожан тяготеет к открытым пространствам лесостепной зоны Урала и к селитебным территориям [1]. В летний период года рукокрылые приурочены к интразональным (пойменным, околоводным) биотопам, обеспечивающим основные кормовые стации и возможность размещения выводковых колоний. В дневное время, обычно располагаясь в естественных укрытиях, лесной нетопырь и двухцветный кожан зачастую предпочитают неглубокие убежища (дупла деревьев, пещеры и хозяйственные постройки человека). Исследователи отмечают способность этих животных к дальним миграциям и к возвращению в места своего прежнего обитания (homing) [14]. У перелетных видов рукокрылых Урала возвращение с зимовки происходит с первой декады мая [1, 2]. В начале июня в Челябинской области отмечено массовое появление лесных нетопырей и двухцветных кожанов в местах их размножения. Рождение детенышей происходит с начала и до конца второй декады июня, вылет молодняка из убежищ наблюдается с конца второй и до середины третьей декады июля; миграция обоих видов к местам зимовок – с конца августа до первых чисел сентября [2].

Отлов и содержание рукокрылых, доставленных в лабораторию, осуществляли согласно международным принципам Хельсинкской декларации о гуманном отношении к животным, используемых для экспериментальных и научных целей [15]. Животных для исследования (n = 34) отлавливали паутинными сетями на побережье оз. Большой Кисегач и в окрестностях оз. Малое Миассово (Челябинская область) во второй декаде июля (в период выведения потомства) в 2013–2015 гг. Численность двухцветного кожана в Ильменском заповеднике достаточно высока, и его относительное обилие составляет 21.1%, а лесного нетопыря – 7.4% [2]. Для сравнения использовали зимующий на Урале вид – прудовую ночницу, с относительным обилием в Ильменском заповеднике – 45.3%.

Забор крови проводили в стерильные вакуумные пробирки BD Vacutainer с ЭДТА (Великобритания). Параметры периферической крови (400–800 μl) животных определяли на гематологическом анализаторе BC–5800 (Mindray, Китай). Лейкоцитарную формулу рассчитывали (на 100 лейкоцитов) в мазках крови, окрашенных по Романовскому – Гимзе. На основании лейкоцитарной формулы рассчитывали интегральный лейкоцитарный индекс (ИСЛ – соотношение гранулоцитов и агранулоцитов в отн. ед.), позволяющий оценить физиологическое состояние исследуемых особей и их адаптивный потенциал. Полученные результаты обработаны с использованием пакета лицензионных прикладных программ Statistica for Windows V 10.0. Метод главных компонент (PCA) реализован посредством статистической среды R (R 3.1.2, пакет Ade4) [16].

Результаты и обсуждение

Исследование периферической крови летучих мышей показало, что межвидовые различия в гематограммах мигрирующих видов как по содержанию эритроцитов (p = 0.36) и гемоглобина (p = 0.12), так и по содержанию тромбоцитов (p = 0.60) и тромбокрита (p = 0.89) отсутствуют, что, несомненно, свидетельствует об идентичности адаптивных механизмов лесного нетопыря и двухцветного кожана. Животные характеризуются высоким уровнем содержания гемоглобина, гематокрита и эритроцитов, что свидетельствует и о высоком уровне дыхательной функции летающих животных [17]. Статистически значимые отличия у прудовой ночницы по параметрам красной крови отмечены относительно лесного нетопыря: для эритроцитов (RBC = 10.0 ± 0.03 Т/л, p = 0.03), гемоглобина (Hb: 148.9 ± 0.93 г/л, p = 0.03), гематокрита (HCT: 41.5 ± 0.05%, p = 0.03) при средней концентрации гемоглобина в эритроците (MCHC = 372.2 ± ± 1.8 г/л, p = 0.02) и при среднем объеме эритроцита (MCV = 41.4 ± 0.07 фл, p = 0.03); и двухцветного кожана: по содержанию эритроцитов (RBC = 9.2 ± ± 0.6 Т/л, p = 0.01), по среднему объему эритроцита (MCV = 36.8 ± 0.07 фл, p = 0.01), при средней концентрации гемоглобина в эритроците (MCHC = = 379.6 ± 7.3 г/л, p = 0.02) [18].

На рис. 1. представлены три самостоятельные группы рукокрылых: мигрирующие виды V. murinus, P. nathusii и оседлый вид M. dasycneme. Анализ главных компонент показал, что 73.75% общей дисперсии параметров красной крови приходится на первую главную компоненту и 15.83% – на вторую главную компоненту. Наибольший вклад в межвидовую изменчивость показателей красной крови по РС1 вносят эритроциты (13.66%), средний объем эритроцита (13.22%), тромбоциты (13.42%), тромбокрит (13.07%), среднее содержание гемоглобина (12.27%).

Определены и их значимые коэффициенты корреляции с РС1: –0.95, 0.94, –0.94, –0.93, 0.90 – соответственно (р = 0.001). Значения первой главной компоненты отчетливо отделяют прудовую ночницу от обоих перелетных видов. РС2 сильно коррелирует (–0.67) с гематокритным показателем (вклад 36.86%), и в меньшей степени – с гемоглобином (вклад 18.01%), что также по данным показателям подтверждает неоднородность особей исследованных экологически контрастных видов.

 

Рис. 1. Показатели красной крови летучих мышей в пространстве двух главных компонент. PC1, PC2 – оси главных компонент, % – процент дисперсии данных, объясненных главной компонентой; стрелки отражают корреляцию главных компонент с исходными показателями; эллипсы представляют собой 95% доверительные области.

 

У активно мигрирующих видов отмечено двукратное повышение количества тромбоцитов: у лесного нетопыря (PLT = 446.7 Г/л) и у двухцветного кожана (PLT = 476.3 Г/л) по сравнению с прудовыми ночницами (PLT = 213.1 Г/л), что указывает на возросшую долю объема цельной крови, занимаемой тромбоцитами, участвующими в качестве эффекторов иммунной системы. Тромбоциты, представляя ведущую роль в системе гомеостаза, участвуют в иммунных и аллергических реакциях организма наряду с макрофагами, нейтрофилам и эозинофилами [19]. При повреждении кровеносных сосудов тромбоциты первыми оказываются в зоне поражения, выступая как факторы врожденного иммунитета. Лейкоцитарный состав крови мигрирующих видов рукокрылых представлен двумя группами клеток: гранулоцитами (нейтрофилы: юные, палочкоядерные, сегментоядерные, эозинофилы), определяющими реакции врожденного иммунитета, и агранулоцитами (моноциты, лимфоциты), ответственными за реакции адаптивного иммунного ответа (табл. 1).

 

Таблица 1. Лейкоцитарный состав периферической крови летучих мышей

Показатели

I. M. dasycneme

II. V. murinus

III. P. nathusii

X¯boot ± SEboot [95% CIboot]

Нейтрофилы, %

39.78 ± 1.42

[37.00–42.50]

54.02 ± 3.30*

[47.20–60.20]

66.00 ± 0.47*

[65.00–67.00]

● юные, %

2.49 ± 1.14

[0.50–4.75]

8.01 ± 1.29*

[5.20–10.40]

7.52 ± 2.10

[3.00–12.00]

● палочкоядерные, %

25.99 ± 3.19

[18.75–30.00]

24.63 ± 3.02

[18.80–30.60]

38.00 ± 1.88*

[34.00–42.00]

● сегментоядерные, %

11.19 ± 2.89

[6.00–16.75]

21.37 ± 2.46*

[17.60–27.00]

20.50 ± 0.24*

[20.00–21.00]

Лимфоциты, %

56.02 ± 1.83

[6.00–16.75]

43.41 ± 3.05*

[37.60–49.20]

32.00 ± 0.01*

[31.05–32.08]

Моноциты, %

2.50 ± 0.76

[0.75–3.75]

1.59 ± 0.78

[0.40–3.40]

1.00 ± 0.00

[1.00–1.01]

Эозинофилы, %

1.25 ± 0.42

[0.50–2.00]

1.00 ± 0.28

[0.40–1.60]

1.00 ± 0.47

[0.10–2.00]

Гранулоциты, %

41.01 ± 1.80

[37.50–44.50]

54.90 ± 3.40*

[48.00–61.40]

67.01 ± 0.90*▲

[65.12–69.03]

Агранулоциты, %

58.50 ± 2.10

[54.50–62.50]

44.90 ± 3.50*

[38.60–52.01]

33.01 ± 0.01*▲

[32.09–33.01]

ИСЛ, отн. ед.

0.8

1.2

2.0

Примечание: * – статистически значимые различия: I и II, I и III (p < 0.05); – статистически значимые различия: II и III (p < 0.05); Xboot ± SEboot – среднее арифметическое и ошибка среднего бутстреп-распределения; [95% CIboot] – доверительный интервал бутстреп-распределения.

 

Показателен повышенный уровень нейтрофилов у перелетных рукокрылых (см. табл. 1), что может быть связано с неспецифической защитой их организма от токсических воздействий, вирусных и бактериальных инфекций. Лейкоцитарный состав крови характеризуется значимо повышенным содержанием гетерофилов за счет увеличения числа зрелых сегментоядерных форм у двухцветного кожана (p < 0.05) и лесного нетопыря (p < 0.05), что обеспечивает подавление воспалительных реакций и активную неспецифическую защиту организма от патогенов (см. табл. 1).

Идентичность адаптивных механизмов исследуемых мигрирующих видов подтверждается отсутствием значимых различий в лейкограммах по содержанию факторов клеточных воспалительных реакций: эозинофильных лейкоцитов (р = 0.99) и моноцитов (р = 0.99), продуцирующих провоспалительные цитокины, – эндогенных регуляторов гемопоэза и клеточно-опосредованного иммунного ответа [20].

Цитокины имеют широкий спектр функций, включая регулирование врожденного и адаптивного иммунитета, активацию воспалительных реакций и стимуляцию кроветворения [20]. Лимфоцитарно-гранулоцитарный состав периферической крови характеризуется высокой долей гранулоцитов у мигрирующих двухцветного кожана (55%) и лесного нетопыря (67%), формирующих срочную защиту организма как от инфекций, так и от токсических воздействий и обеспечивающих их выживание за пределами нативного ареала (см. табл. 1). Высокие показатели интегрального лейкоцитарного индекса ИСЛ = 1.2 для двухцветного кожана и ИСЛ = 2.0 для лесного нетопыря по сравнению с ИСЛ = 0.8 прудовой ночницы подтверждают выраженную реактивность системы естественного врожденного иммунитета, способствующего формированию адаптивных реакций, обеспечивающих эврибионтность V. murinus и P. nathusii, мигрирующих на дальние расстояния.

Результаты исследований функциональной активности системы крови показывают, что V. murinus и P. nathusii могут быть использованы для оценки их адаптационных возможностей, способствующих длительным сезонным миграциям, а также служить основой для мониторинга численности видов и популяций рукокрылых с целях сохранения биоразнообразия и рационального использования ресурсов животного мира.

Источник финансирования

Данная работа финансировалась за счет средств бюджета Института экологии растений и животных УрО РАН в рамках государственного задания (№122021000091-2). Никаких дополнительных грантов на проведение или руководство данным конкретным исследованием получено не было.

Соблюдение этических стандартов

Отлов и содержание животных в лаборатории осуществляли с соблюдением международных принципов Хельсинкской декларации о гуманном отношении к животным, используемых для экспериментальных и научных целей [15]. Протокол с использованием экспериментальных животных был одобрен комиссией по биоэтике Института экологии растений и животных УрО РАН (протокол № 11 от 29.04.2022).

Конфликт интересов

Авторы данной работы заявляют, что у них нет конфликта интересов.

×

Об авторах

Л. А. Ковальчук

ФГБУН “Институт экологии растений и животных” Уральского отделения Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: kovalchuk@ipae.uran.ru
Россия, Екатеринбург

В. А. Мищенко

ФГБУН “Институт экологии растений и животных” Уральского отделения Российской академии наук; Федеральный научно-исследовательский институт вирусных инфекций “Виром” Роспотребнадзора

Email: kovalchuk@ipae.uran.ru
Россия, Екатеринбург; Екатеринбург

Л. В. Черная

ФГБУН “Институт экологии растений и животных” Уральского отделения Российской академии наук

Email: kovalchuk@ipae.uran.ru
Россия, Екатеринбург

В. П. Снитько

Южно-Уральский федеральный научный центр минералогии и геоэкологии Уральского отделения Российской академии наук

Email: kovalchuk@ipae.uran.ru
Россия, Ильменский государственный заповедник, Миасс

В. Н. Большаков

ФГБУН “Институт экологии растений и животных” Уральского отделения Российской академии наук

Email: kovalchuk@ipae.uran.ru

академик

Россия, Екатеринбург

Список литературы

  1. Большаков В.Н., Орлов О.Л., Снитько В.П. Летучие мыши Урала. Екатеринбург: Академкнига, 2005.
  2. Снитько В.П., Снитько Л.В. Рукокрылые (Chiroptera, Vespertillionidae) Южного Урала (Челябинская область) // Зоологический журнал. 2017. Т. 96. № 3. С. 320–349.
  3. Снитько В.П. Рукокрылые (Chiroptera) Ильменского заповедника // Plecotus et al. 2001. № 4. C. 69–74.
  4. Alcalde J., Jiménez M., Brila I., et al. Transcontinental 2200 km migration of a Nathusius’ pipistrelle (Pipistrellus nathusii) across Europe // Mammalia. 2021. V. 85 (2). P. 161–163.
  5. Vasenkov D., Desmet J.F., Popov I., et al. Bats can migrate farther than it was previously known: a new longest migration record by Nathusius pipistrelle Pipistrellus nathusii (Chiroptera: Vespertilionidae) // Mammalia. 2022. V. 86 (5). P. 524–526.
  6. Rebelo H., Tarroso P., Jones G. Predicted impact of climate change on European bats in relation to their biogeographic patterns // Global Change Biology. 2010. V. 16 (2). P. 561–576.
  7. Frik W.F., Kingston T., Flanders J. A review of the major threats and challenges to global bat conservation // Annals of the New York Academy of Sciences. 2020. V. 1469 (1). P. 5–25.
  8. Rydell J., Bach L., Dubourg-Savage M.J., et al. Bat mortality at wind turbines in Northwestern Europe // Acta Chiropterologica. 2010. V. 12 (2). P. 261–274.
  9. Russo D., Ancillotto L. Sensitivity of bats to urbanization: a review // Mammalian Biology. 2015. V. 80 (3). P. 205–212.
  10. Frick W.F., Reynolds D.S., Kunz T.H. Influence of climate and reproductive timing on demography of little brown myotis Myotis lucifugus // Journal of Animal Ecology. 2010. V. 79 (1). P. 128–136.
  11. Amorim F., Mata V.A., Beja P., et al. Effects of a drought episode on the reproductive success of European free-tailed bats (Tadarida teniotis) // Mammalian Biology. 2015. V. 80. P. 228–236.
  12. Russo D., Salinas-Ramos V.B., Cistrone L., et al. Do we need to use bats as bioindicators? // Biology. 2021. V. 10 (8). P. 693–708.
  13. Ковальчук Л.А., Мищенко В.А., Черная Л.В. и др. Сезонная изменчивость иммуногематологических параметров периферической крови прудовой ночницы Myotis dasycneme (Boie, 1825), обитающей на Урале // Доклады РАН. Науки о жизни. 2023. Т. 510 (1). С. 278-282.
  14. Стрелков П.П. Оседлые и перелетные виды летучих мышей (Chiroptera) в Европейской части СССР. Сообщение 1 // Бюллетень МОИП. Отдел биологии. 1970. Т. 75 (2). С. 38–52.
  15. Yarri D. The Ethics of Animal Experimentation. Oxford: Oxford UniverPress, 2005.
  16. Chessel D., Dufour A.B., Thioulouse J. The ade 4 package-I: One-table methods // R News. 2004. V. 4. P. 5–10.
  17. Bandouchova H., Zukal J., Linhart P., et al. Low seasonal variation in greater mouse-eared bat (Myotis myotis) blood parameters // PLoS One. 2020. V. 15 (7): e0234784.
  18. Kovalchuk L., Mishenko V., Chernaya L., et al. Haematological parameters of pond bats (Myotis dasycneme Boie, 1825 Chiroptera: Vespertilionidae) in the Ural Mountains // Zoology and Ecology. 2017. V. 27 (2). P. 168–175.
  19. Jenne CN., Urrutia R., Kubes P. Platelets: bridging hemostasis, inflammation, and immunity // International Journal of Laboratory Hematology. 2013. V. 35 (3). P. 254–261.
  20. Scapigliati G., Buonocore F., Mazzini M. Biological activity of cytokines: an evolutionary perspective // Current Pharmaceutical Design. 2006. V. 12. P. 3071–3081.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Показатели красной крови летучих мышей в пространстве двух главных компонент. PC1, PC2 – оси главных компонент, % – процент дисперсии данных, объясненных главной компонентой; стрелки отражают корреляцию главных компонент с исходными показателями; эллипсы представляют собой 95% доверительные области.

Скачать (105KB)

© Российская академия наук, 2024

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).