Study of the association of ouib and nom with heterochromatin in Drosophila melanogaster
- Authors: Pekina Y.V.1, Babosha V.A.1, Georgiev P.G.1, Fedotova А.А.1
-
Affiliations:
- Institute of Gene Biology RAS
- Issue: Vol 515, No 1 (2024)
- Pages: 87-91
- Section: Articles
- URL: https://journal-vniispk.ru/2686-7389/article/view/262836
- DOI: https://doi.org/10.31857/S2686738924020161
- EDN: https://elibrary.ru/WEMDXK
- ID: 262836
Cite item
Full Text
Abstract
In Drosophila, a large group of actively transcribed genes is located in pericentromeric heterochromatin. It is assumed that heterochromatic proteins attract transcription factors to gene promoters. Two proteins, ouib and nom, were previously shown to bind to the promoters of the heterochromatic genes nvd and spok. Interestingly, ouib and nom are paralogs of the M1BP protein, which binds to the promoters of euchromatic genes. We have shown that, like M1BP, the quib and nom proteins bind to CP190, which is involved in the recruitment of transcription complexes to promoters. Unlike heterochromatic proteins, ouib and nom do not interact with the major heterochromatic protein HP1a and bind to euchromatic promoters on polytene chromosomes from the larval salivary glands. The results suggest a new mechanism for the recruitment of transcription factors into the heterochromatic compartment of the nucleus.
Full Text
У дрозофилы эухроматин и гетерохроматин представляют собой два независимых компартмента, отличающихся набором хроматиновых белков и нуклеосомных модификаций [1, 2]. В последних исследованиях было показано, что гетерохроматин активно транскрибируется, и в нем локализованы многие гены домашнего хозяйства, которые имеют высокий уровень экспрессии [2]. При этом промоторы генов, расположенных в эухроматине и гетерохроматине, могут эффективно инициировать транскрипцию только в своем компартменте [1, 2]. В отличие от прокариот бо´льшая часть промоторов высших эукариот, включая дрозофилу и человека, не имеет выраженных мотивов, с которыми могут связываться общие факторы транскрипции [3]. Согласно одной из моделей ключевую роль в организации промоторов играют белки, содержащие кластеры цинковых пальцев С2Н2-типа (С2Н2-белки), которые связываются со специфичными относительно длинными (12–15 п.н.) мотивами в промоторах генов, что приводит к формированию открытого хроматина и рекрутированию TFIID-комплекса [3, 4]. У дрозофилы существует обширный класс белков, которые содержат на С-конце кластер, состоящий из 5 С2Н2-доменов, а на N-конце находится ZAD (Zinc-finger Associated Domain) домен, который обеспечивает гомодимеризацию белка [5, 6]. ZAD-домен и C2H2-кластеры соединены неструктурированным линкером. Наиболее хорошо описанным у дрозофилы является белок М1BP, который связывается с мотивом, расположенным в примерно в 2000 промоторах, определяющих активность эухроматиновых генов [7, 8]. С неструктурированным линкером белка M1BP связывается белок СР190, который участвует в рекрутировании комплексов стимулирующих транскрипцию [9, 10].
Ген m1bp находится в кластере (85A9 на хромосомном плече 3R), который включает еще четыре гена, кодирующих ZAD-C2H2-белки – CG8159, ranshi, ouib и nom (рис. 1б). Все эти гены паралогичны и, предположительно, являются результатом тандемной дупликации в процессе эволюции. Неожиданно оказалось, что гены ouib и nom кодируют белки, которые связываются с промоторами генов, расположенными в гетерохроматине [11–13]. Ранее были найдены два других ZAD-C2H2-белка, odj и nnk, которые эффективно связываются с регуляторными последовательностями в гетерохроматине [14]. Было показано, что эти белки взаимодействуют с основным белком гетерохроматина НР1a, что, как предполагается, определяет преимущественную локализацию этих белков в гетерохроматиновом компартменте.
Целью настоящей работы стало исследование, каким образом белки ouib и nom приобретают способность связываться с промоторами генами, находящимися в областях гетерохроматина. Ранее было показано, что ZAD-домены даже близких С2Н2 паралогов преимущественно формируют только гомодимеры [5, 6]. Так как ZAD-домены белков M1BP, ouib и nom имеют высокую степень сходства последовательностей, то была протестирована способность ZAD-доменов к формированию гетеродимеров. Для этого мы использовали метод дрожжевой двугибридной системы (ДДС). Были созданы конструкции, в которых последовательности ZAD-доменов белков ouib, nom и M1BP были клонировали в одну рамку считывания с активационным доменом (АД) или ДНК-связывающим доменом (ДСД) белка GAL4. Поиск ортологов у видов Drosophila показал, что ортолог ouib присутствует у всех видов, тогда как его дупликация – ген nom произошла позже. Так, ортологи nom отсутствуют у D.virilis (рис. 1б). Мы протестировали в ДДС взаимодействие ZAD-доменов белков ouib и nom c ортологом ouib D.virilis (GJ22678). Анализ взаимодействия показал, что ZAD-домены M1BP, ouib и nom гомодимеризуются, но не образуют гетеродимеров. При этом оба белка паралога ouib и nom взаимодействуют с ортологом GJ22678 D. virilis (см. рис. 1в), что является дополнительным доказательством того, что они произошли от одного гена.
Рис. 1. Доменная структура белков ouib и nom. Указаны порядковые номера аминокислотных остатков, соответствующих границам доменов (а); геномное расположение генов m1bp, ouib и nom в кластере у D. melanogaster и D. virilis. Для обозначения ортологов использованы одинаковые цвета (б); исследование взаимодействия между ZAD-доменами в ДДС. Фрагменты ZAD были слиты с ДНК-связывающим доменом GAL4 (ДСД), и исследовано их взаимодействие с фрагментами, слитым с активационным доменом GAL4 (АД). Результаты представлены в колонках, где + и – означают наличие или отсутствие взаимодействия соответственно. В качестве положительного контроля проверялась способность ZAD-доменов к димеризации, а в качестве отрицательного контроля выполнялось тестирование на наличие взаимодействия только с активационным (АД) или ДНК-связывающим (ДСД) доменом белка GAL4 (в); исследование взаимодействия полноразмерных белков Ouib и Nom, слитых с АД GAL4, с полноразмерными белками СР190 и HP1a, слитыми с ДСД GAL4 (г). Остальные обозначения – такие же, как в (в).
Известно, что многие белки, ассоциированные с гетерохроматином, взаимодействуют с белком Hp1a через аминокислотный мотив PxVxL (где х – любая аминокислота). Однако, анализ последовательностей ouib и nom не выявил данного мотива. Для проверки прямого взаимодействия белков с HP1a в ДДС были получены конструкции, в которых последовательности кДНК белков ouib и nom были клонированы в одну рамку считывания с АД GAL4 и конструкция, в которой кДНК белка HP1a находилась в одной рамке считывания с ДСД GAL4. В результате, в ДДС прямое взаимодействие ouib и nom с HP1a не обнаружено (см. рис. 1г).
Многие ZAD-C2H2-белки, имеющие сайты связывания в промоторах генов, взаимодействуют с белком CP190, в том числе рекрутирование СР190 является важным для функциональной активности M1BP [9]. Мы проверили прямое взаимодействие паралогов ouib и nom с CP190 в ДДС (рис. 1в). Оказалось, что ouib и nom тоже взаимодействуют с CP190, который связывается исключительно с эухроматиновыми промоторами. Это предполагает роль ouib и nom в организации эухроматиновых промоторов.
Для исследования полногеномного распределения сайтов связывания белков ouib и nom была использована модель политенных хромосом из ядер слюнных желез личинок третьего возраста. Политенные хромосомы состоят из междисков, которые представляют собой промоторы, контролирующие экспрессию генов домашнего хозяйства, и дисков, которые соответствуют преимущественно неактивным генам [15]. Области конститутивного гетерохроматина хорошо визуализируются в области прицентромерного гетерохроматина и в теломерах на концах хромосом. Так как ouib и nom не экспрессируются в слюнных железах, мы использовали индуцируемую систему UAS/GAL4 для экспрессии этих белков. С этой целью были созданы генетические конструкции, в которых кДНК белков nom и ouib в одной рамке считывания с эпитопом HA были клонированы в вектор pUAS, который содержит последовательность UAS (Upstream activating sequence) и attB-сайт для интеграции в геном дрозофилы (рис. 2а). Полученные конструкции были встроены в одно и тоже место генома в сайт attP 38D с использованием системы интеграции phiC31. Для эктопической экспрессии генов мы скрещивали мух линии, содержащей конструкт pUAS-OuibxHA или pUAS-NomxHA, с мухами линии, экспрессирующей GAL4 под контролем сильного тубулинового промотора (tub:GAL4), который обеспечивает высокий уровень транскрипции во всех тканях. Экспрессию белка подтверждали анализом белкового лизата из взрослых мух методом вестерн-блот с использованием антител к HA (см. рис. 2б).
Рис. 2. Схема генетической конструкции, используемой для создания трансгенных мух, экспрессирующих белок, слитый с HA-эпитопом (а); вестерн-блот анализ белковых экстрактов из 2–3-дневных самцов, экспрессирующих OuibxHA и NomxHA, окрашенные антителами к HA-эпитопу (б); политенные хромосомы слюнных желез личинок мух, экспрессирующих OuibxHA и NomxHA. Политенные хромосомы были окрашены антителами к эпитопу HA, ДНК окрашена DAPI. Для сравнения приведено иммуноокрашивание политенных хромосом из лиинии Oregon-R кроличьими антителами к гетерохроматиновому белку odj (в). Стрелками показано положение хромоцентра на разных препаратах политенных хромосом. Масштаб – 10 мкм.
Иммуноокрашивание политенных хромосом показало неожиданные результаты. Оказалось, что белки ouib и nom имеют множество сайтов связывания в междисках политенных хромосом, но при этом не наблюдается связывания в прицентромерных гетерохроматиновых районах. Таким образом, эктопически экспрессируемые белки не рекрутируются сами по себе в гетерохроматиновый компартмент (см. рис. 2в). Это отличает белки nom и ouib от белка odj, который активно связывается с гетерохроматином политенных хромосом (см. рис. 2в).
Наиболее вероятно, что ген, кодирующий M1BP, является основателем кластера генов (85A9), так как его экспрессия намного выше и белок имеет консервативные среди дрозофил мотивы связывания в промоторах большой группы генов. Остальные гены кластера, за исключением ranshi, имеют слабый уровень экспрессии и, вероятно, связываются с промоторами небольшого количества генов. Так, было показано, что белки nom и ouib определяют активность промоторов генов nvd и spok, расположенных в гетерохроматине [11,.12]. При этом активация этих промоторов является основной функцией белков nom и ouib. Как и M1BP, белки nom и ouib связываются с СР190, рекрутирование которого на промоторы определяет формирование зоны открытого хроматина и активацию транскрипции. Таким образом, белки nom и ouib по строению и функциям похожи на M1BP. Более того, при избыточной экспрессии белки nom и ouib связываются с промоторами (междисками) генов домашнего хозяйства, которые находятся в эухроматине и не наблюдается их ассоциации с прицентромерным гетерохроматином. ZAD-домены трех близких паралогов M1BP, nom и ouib формируют только гомодимеры. Таким образом, ZAD-домены определяют функциональную независимость недавно возникших С2Н2-белков и блокируют их взаимодействие с M1BP. Полученные результаты свидетельствуют о том, что механизм рекрутирования nom и ouib в гетерохроматиновые районы принципиально отличается от описанного ранее для odj и nnk, для которых показано взаимодействие через консенсусный мотив с HP1a. Белки nom и ouib не взаимодействуют напрямую с основным гетерохроматиновым белком HP1a.
Наиболее вероятно, что nom и ouib рекрутируются в гетерохроматиновый компартмент с помощью белка-партнера, который также участвует в формирование активных промоторов nvd и spok генов. Одним из потенциальных белков-партеров может быть большой (около 2000 а.о.) ZAD-C2H2 белок Molting Defective (Mld), который также связывается с промоторами nvd и spok [12]. Белок Mld эффективно экспрессируется на всех стадиях развития и, вероятно, имеет много различных функций в регуляции экспрессии генов. Необходимы дальнейшие исследования для ответа на вопрос, могут ли белки ouib и nom рекрутироваться в гетерохроматиновый компартмент в результате взаимодействия с другими ZAD-C2H2-белками, которые ассоциированы с основными гетерохроматиновыми белками.
Источник финансирования
Исследование выполнено за счет Российского научного фонда, грант № 22-24-00894.
Соблюдение этических норм и стандартов
В соответствии с пунктом 3 главы 1 Директивы 2010/63/ЕС от 22.09.2010 г. о защите животных, используемых в научных целях, требования биоэтики не распространяются на объект данного исследования.
Конфликт интересов
Авторы статьи подтверждают отсутствие конфликта интересов, о котором необходимо сообщить.
About the authors
Y. V. Pekina
Institute of Gene Biology RAS
Email: v.babosha@gmail.com
Russian Federation, Moscow
V. A. Babosha
Institute of Gene Biology RAS
Author for correspondence.
Email: v.babosha@gmail.com
Russian Federation, Moscow
P. G. Georgiev
Institute of Gene Biology RAS
Email: v.babosha@gmail.com
academician
Russian Federation, MoscowА. А. Fedotova
Institute of Gene Biology RAS
Email: annafedotova@list.ru
Russian Federation, Moscow
References
- Marsano R.M., Giordano E., Messina G., et al. A New Portrait of Constitutive Heterochromatin: Lessons from Drosophila melanogaster // Trends in Genetics. 2019. Vol. 35. A New Portrait of Constitutive Heterochromatin. № 9. P. 615–631.
- Saha P., Sowpati D. T., Soujanya M., et al. Interplay of pericentromeric genome organization and chromatin landscape regulates the expression of Drosophila melanogaster heterochromatic genes // Epigenetics & Chromatin. 2020. Vol. 13. № 1. P. 41.
- Vo Ngoc L., Kassavetis G.A., Kadonaga J.T. The RNA Polymerase II Core Promoter in Drosophila // Genetics. – 2019. – Vol. 212. – № 1. – P. 13-24.
- Kyrchanova O. V., Bylino O. V., Georgiev P. G. Mechanisms of enhancer-promoter communication and chromosomal architecture in mammals and Drosophila / O. V. Kyrchanova, O. V. Bylino, P. G. Georgiev // Frontiers in Genetics. 2022. Vol. 13. P. 1081088.
- Bonchuk A.N., Boyko K., Nikilaeva A.Y., et al. Structural insights into highly similar spatial organization of zinc-finger associated domains with a very low sequence similarity // Structure (London, England: 1993). 2022. Vol. 30. № 7. P. 1004-1015.e4.
- Bonchuk A.N., Boyko K., Fedotova A. A., et al. Structural basis of diversity and homodimerization specificity of zinc-finger-associated domains in Drosophila // Nucleic Acids Research. 2021. Vol. 49. № 4. P. 2375-2389.
- Baumann D.G., Gilmor D.S. A sequence-specific core promoter-binding transcription factor recruits TRF2 to coordinately transcribe ribosomal protein genes // Nucleic Acids Research. 2017. Vol. 45. № 18. P. 10481–10491.
- Li J., Gilmour D.S. Distinct mechanisms of transcriptional pausing orchestrated by GAGA factor and M1BP, a novel transcription factor / J. Li, D.S. Gilmour // The EMBO Journal. 2013. Vol. 32. № 13. P. 1829–1841.
- Bag I., Shue C., Rosin L. M1BP cooperates with CP190 to activate transcription at TAD borders and promote chromatin insulator activity // Nature Communications. 2021. Vol. 12. № 1. P. 4170.
- Sabirov M., Popovich A., Boyko K., et al. Mechanisms of CP190 Interaction with Architectural Proteins in Drosophila Melanogaster // International Journal of Molecular Sciences. 2021. Vol. 22. № 22. P. 12400.
- Komura-Kawa T., Hirota K., Shimada-Niwa Y., et al. The Drosophila Zinc Finger Transcription Factor Ouija Board Controls Ecdysteroid Biosynthesis through Specific Regulation of spookier // PLoS genetics. 2015. Vol. 11. № 12. P. e1005712.
- Uryu O., Komura-Kawa T., Kamiyama T., et al. Cooperative Control of Ecdysone Biosynthesis in Drosophila by Transcription Factors Séance, Ouija Board, and Molting Defective // Genetics. 2018. Vol. 208. № 2. P. 605-622.
- Niwa Y.S., Niwa R. Ouija board: A transcription factor evolved for only one target in steroid hormone biosynthesis in the fruit fly Drosophila melanogaster // Transcription. 2016. Vol. 7. Ouija board. № 5. P. 196–202.
- Kasinathan B., Colmenares S. U., McConnell H., et al. Innovation of heterochromatin functions drives rapid evolution of essential ZAD-ZNF genes in Drosophila // eLife. 2020. Vol. 9. P.e63368.
- Demakova O.V., Demakov S.A., Boldyreva L.V., et al. Faint gray bands in Drosophila melanogaster polytene chromosomes are formed by coding sequences of housekeeping genes // Chromosoma. 2020. Vol. 129. № 1. P. 25–44.
Supplementary files
