Разработка живой гриппозной вакцины на основе химерной молекулы гемагглютинина для защиты против обеих линий вируса гриппа B
- Авторы: Вон П.1, Степанова Е.А.1, Баженова Е.А.1, Донина С.А.1, Руденко Л.Г.1, Исакова-Сивак И.Н.1
-
Учреждения:
- Институт экспериментальной медицины
- Выпуск: Том 25, № 2 (2025)
- Страницы: 33-46
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://journal-vniispk.ru/MAJ/article/view/319491
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ636873
- EDN: https://elibrary.ru/MPDUWD
- ID: 319491
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Разработка универсальной гриппозной вакцины остается важнейшей задачей для расширения спектра защиты от различных штаммов вируса гриппа. В настоящее время стратегии создания вакцин против вируса гриппа типа B развиты недостаточно по сравнению с вакцинами против вируса гриппа типа A.
Цель — оценка эффективности использования химерных штаммов живой гриппозной вакцины для индукции гуморального иммунного ответа, направленного на консервативные антигенные участки вируса гриппа типа B.
Методы. Был сконструирован химерный белок гемагглютинин, включающий в себя глобулярный домен от вируса B/Brisbane/60/2008 (линия B/Виктория) и стеблевой домен от вируса B/Phuket/3073/2013 (линия B/Ямагата). Химерный ген гемагглютинина был встроен в штамм живой гриппозной вакцины на основе донора аттенуации B/СССР/60/69. Мышей иммунизировали последовательно классической живой гриппозной вакциной и рекомбинантным штаммом с химерной молекулой гемагглютинина. Оценивали гуморальный иммунный ответ и перекрестную защиту от гомологичных и гетерологичных штаммов вируса гриппа типа B.
Результаты. Химерный гемагглютинин не препятствовал репликации и сборке вакцинного вируса. Последовательная вакцинация индуцировала выраженный гуморальный иммунный ответ и обеспечивала защиту от гомологичных и гетерологичных штаммов вируса гриппа типа B у мышей.
Заключение. Живая гриппозная вакцина типа B, экспрессирующая химерный гемагглютинин, — перспективный кандидат для расширения спектра защиты от вирусов гриппа типа B и может способствовать разработке более эффективной гриппозной вакцины.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Пэй Фон Вон
Институт экспериментальной медицины
Автор, ответственный за переписку.
Email: po333222@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-7939-6313
SPIN-код: 7151-7480
Россия, Санкт-Петербург
Екатерина Алексеевна Степанова
Институт экспериментальной медицины
Email: fedorova.iem@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8670-8645
SPIN-код: 8010-3047
канд. биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургЕкатерина Андреевна Баженова
Институт экспериментальной медицины
Email: sonya.01.08@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3280-556X
SPIN-код: 5169-1426
канд. биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургСветлана Александровна Донина
Институт экспериментальной медицины
Email: sveta.donina@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-6502-8341
SPIN-код: 6961-3849
канд. биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургЛариса Георгиевна Руденко
Институт экспериментальной медицины
Email: vaccine@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0107-9959
SPIN-код: 4181-1372
д-р мед. наук
Россия, Санкт-ПетербургИрина Николаевна Исакова-Сивак
Институт экспериментальной медицины
Email: isakova.sivak@iemspb.ru
ORCID iD: 0000-0002-2801-1508
SPIN-код: 3469-3600
д-р биол. наук, чл.-корр. РАН
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Caini S, Kusznierz G, Garate VV, et al. The epidemiological signature of influenza B virus and its B/Victoria and B/Yamagata lineages in the 21st century. PLoS One. 2019;14:e0222381. doi: 10.1371/journal.pone.0222381
- Hay AJ, Gregory V, Douglas AR, Lin YP. The evolution of human influenza viruses. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2001;356(1416):1861–1870. doi: 10.1098/rstb.2001.0999
- Kanegae Y, Sugita S, Endo A, et al. Evolutionary pattern of the hemagglutinin gene of influenza B viruses isolated in Japan: cocirculating lineages in the same epidemic season. J Virol. 1990;64(6):2860–2865. doi: 10.1128/jvi.64.6.2860-2865.1990
- Rota PA, Wallis TR, Harmon MW, et al. Cocirculation of two distinct evolutionary lineages of influenza type B virus since 1983. Virology. 1990;175(1):59–68. doi: 10.1016/0042-6822(90)90186-u
- Isakova-Sivak I, Grigorieva E, Rudenko L. Insights into current clinical research on the immunogenicity of live attenuated influenza vaccines. Expert Rev Vaccines. 2020;19(1):43–55. doi: 10.1080/14760584.2020.1711056
- Dhanasekaran V, Sullivan S, Edwards KM, et al. Human seasonal influenza under COVID-19 and the potential consequences of influenza lineage elimination. Nat Commun. 2022;13(1):1721. doi: 10.1038/s41467-022-29402-5
- Osterhaus AD, Rimmelzwaan GF, Martina BE, et al. Influenza B virus in seals. Science. 2000;288(5468):1051–1053. doi: 10.1126/science.288.5468.1051
- Ryder AB, Nachbagauer R, Buonocore L, et al. Vaccination with vesicular stomatitis virus-vectored chimeric hemagglutinins protects mice against divergent influenza virus challenge strains. J Virol. 2015;90(5):2544–2550. doi: 10.1128/JVI.02598-15
- Krammer F, Margine I, Hai R, et al. H3 stalk-based chimeric hemagglutinin influenza virus constructs protect mice from H7N9 challenge. J Virol. 2014;88(4):2340–2343. doi: 10.1128/JVI.03183-13
- Krammer F, Pica N, Hai R, et al. Chimeric hemagglutinin influenza virus vaccine constructs elicit broadly protective stalk-specific antibodies. J Virol. 2013;87(12):6542–6550. doi: 10.1128/JVI.00641-13
- Isakova-Sivak I, Korenkov D, Smolonogina T, et al. Broadly protective anti-hemagglutinin stalk antibodies induced by live attenuated influenza vaccine expressing chimeric hemagglutinin. Virology. 2018;518:313–323. doi: 10.1016/j.virol.2018.03.013
- Bliss CM, Nachbagauer R, Mariottini C, et al. A chimeric haemagglutinin-based universal influenza virus vaccine boosts human cellular immune responses directed towards the conserved haemagglutinin stalk domain and the viral nucleoprotein. EBioMedicine. 2024;104:105153. doi: 10.1016/j.ebiom.2024.105153
- Nachbagauer R, Feser J, Naficy A, et al. A chimeric hemagglutinin-based universal influenza virus vaccine approach induces broad and long-lasting immunity in a randomized, placebo-controlled phase I trial. Nat Med. 2021;27(1):106–114. doi: 10.1038/s41591-020-1118-7
- Bernstein DI, Guptill J, Naficy A, et al. Immunogenicity of chimeric haemagglutinin-based, universal influenza virus vaccine candidates: interim results of a randomised, placebo-controlled, phase 1 clinical trial. Lancet Infect Dis. 2020;20(1):80–91. doi: 10.1016/S1473-3099(19)30393-7
- Puente-Massaguer E, Vasilev K, Beyer A, et al. Chimeric hemagglutinin split vaccines elicit broadly cross-reactive antibodies and protection against group 2 influenza viruses in mice. Sci Adv. 2023;9:eadi4753. doi: 10.1126/sciadv.adi4753
- Ermler ME, Kirkpatrick E, Sun W, et al. Chimeric hemagglutinin constructs induce broad protection against influenza B virus challenge in the mouse model. J Virol. 2017;91(12):e00286–17. doi: 10.1128/JVI.00286-17
- Song Y, Zhu, W, Wang Y, et al. Layered protein nanoparticles containing influenza B HA stalk induced sustained cross-protection against viruses spanning both viral lineages. Biomaterials. 2022;287:121664. doi: 10.1016/j.biomaterials.2022.121664
- Wong PF, Isakova-Sivak I, Stepanova E, et al. Development of cross-reactive live attenuated influenza vaccine candidates against both lineages of influenza B virus. Vaccines (Basel). 2024;12(1):95. doi: 10.3390/vaccines12010095
- Baranov KV, Wong P-F, Stepanova EA, et al. Construction of the vaccine strain of the influenza B virus with chimeric hemagglutinin to induce a cross-protective immune response. Medical Academic Journal. 2021;21(3):91–96. doi: 10.17816/MAJ77556
- Reed LJ, Muench H. A simple method of estimating fifty percent endpoints. Am J Epidemiol. 1938;27:493–497. doi: 10.1093/oxfordjournals.aje.a118408
- WHO manual on animal influenza diagnosis and surveillance. 2002 [Internet]. Available from: https://pdf4pro.com/view/who-manual-on-animal-influenza-diagnosis-and-surveillance-6d3a18.html. Accessed: 24 May 2025.
- Ni F, Kondrashkina E, Wang Q. Structural basis for the divergent evolution of influenza B virus hemagglutinin. Virology. 2013;446(1–2):112–122. doi: 10.1016/j.virol.2013.07.035
- McCullers JA, Saito T, Iverson AR. Multiple genotypes of influenza B virus circulated between 1979 and 2003. J Virol. 2004;78:12817–12828. doi: 10.1128/jvi.78.23.12817-12828.2004
- Tisa V, Barberis I, Faccio V, et al. Quadrivalent influenza vaccine: a new opportunity to reduce the influenza burden. J Prev Med Hyg. 2016;57(1):E28–33.
- Belshe RB, Coelingh K, Ambrose CS, et al. Efficacy of live attenuated influenza vaccine in children against influenza B viruses by lineage and antigenic similarity. Vaccine. 2010;28(9):2149–2156. doi: 10.1016/j.vaccine.2009.11.068
- Tan HX, Jegaskanda S, Juno JA, et al. Subdominance and poor intrinsic immunogenicity limit humoral immunity targeting influenza HA stem. J Clin Invest. 2019;129:850–862. doi: 10.1172/jci123366
- Andrews SF, Huang Y, Kaur K, et al. Immune history profoundly affects broadly protective B cell responses to influenza. Sci Transl Med. 2015;7(316):316ra192. doi: 10.1126/scitranslmed.aad0522
- Impagliazzo A, Milder F, Kuipers H, et al. A stable trimeric influenza hemagglutinin stem as a broadly protective immunogen. Science. 2015;349(6254):1301–1306. doi: 10.1126/science.aac7263
- Boyoglu-Barnum S, Hutchinson GB, Boyington JC, et al. Glycan repositioning of influenza hemagglutinin stem facilitates the elicitation of protective cross-group antibody responses. Nat Commun. 2020;11(1):791. doi: 10.1038/s41467-020-14579-4
- de Vries RD, Nieuwkoop NJ, van der Klis FRM, et al. Primary human influenza B virus infection induces cross-lineage hemagglutinin stalk–specific antibodies mediating antibody-dependent cellular cytoxicity. J Infect Dis. 2018;217(1):3–11. doi: 10.1093/infdis/jix546
- Lee J, Boutz DR, Chromikova V, et al. Molecular-level analysis of the serum antibody repertoire in young adults before and after seasonal influenza vaccination. Nat Med. 2016;22(12):1456–1464. doi: 10.1038/nm.4224
- Ambrose CS, Wu X, Jones T, Mallory RM. The role of nasal IgA in children vaccinated with live attenuated influenza vaccine. Vaccine. 2012;30:6794–6801. doi: 10.1016/j.vaccine.2012.09.018
- Belshe RB, Gruber WC, Mendelman PM, et al. Correlates of immune protection induced by live, attenuated, cold-adapted, trivalent, intranasal influenza virus vaccine. J Infect Dis. 2000;181(3):1133–1137. doi: 10.1086/315323
- Mohn KG, Bredholt G, Brokstad KA, et al. Longevity of B-cell and T-cell responses after live attenuated influenza vaccination in children. J Infect Dis. 2015;211(10):1541–1549. doi: 10.1093/infdis/jiu654
- Korenkov D, Isakova-Sivak I, Rudenko L. Basics of CD8 T-cell immune responses after influenza infection and vaccination with inactivated or live attenuated influenza vaccine. Expert Rev Vaccines. 2018;17(11):977–987. doi: 10.1080/14760584.2018.1541407
- Terajima M, Babon JA, Co MD, Ennis FA. Cross-reactive human B cell and T cell epitopes between influenza A and B viruses. Virol J. 2013;10:244. doi: 10.1186/1743-422x-10-244
- Robbins PA, Rota PA, Shapiro SZ. A broad cytotoxic T lymphocyte response to influenza type B virus presented by multiple HLA molecules. Int Immunol. 1997;9(6):815–823. doi: 10.1093/intimm/9.6.815
- van de Sandt CE, Dou Y, Vogelzang-van Trierum SE, et al. Influenza B virus-specific CD8+ T-lymphocytes strongly cross-react with viruses of the opposing influenza B lineage. J Gen Virol. 2015;96(8):2061–2073. doi: 10.1099/vir.0.000156
- Caini S, Meijer A, Nunes MC, et al. Probable extinction of influenza B/Yamagata and its public health implications: a systematic literature review and assessment of global surveillance databases. Lancet Microbe. 2024;5(8):100851. doi: 10.1016/S2666-5247(24)00066-1
- Pekarek MJ, Weaver EA. Influenza B virus vaccine innovation through computational design. Pathogens. 2024;13(9):755. doi: 10.3390/pathogens13090755
Дополнительные файлы
