Изменение спектра внеклеточных везикул, продуцируемых клетками линии ТНР-1 при поляризации в направлении M1- или M2-макрофагов
- Авторы: Самбур Д.Б.1, Калинина О.В.1, Акино А.Д.1, Тирикова П.В.1, Зубкова К.Д.1, Дрейзис И.И.1, Рубинштейн А.А.1,2, Трулев А.С.1,2, Кудрявцев И.В.1,2, Головкин А.С.1
-
Учреждения:
- Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова
- Институт экспериментальной медицины
- Выпуск: Том 25, № 2 (2025)
- Страницы: 98-111
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://journal-vniispk.ru/MAJ/article/view/319501
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ639999
- EDN: https://elibrary.ru/BSIPWO
- ID: 319501
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Макрофаги способны секретировать внеклеточные везикулы, обладающие широким спектром биологических эффектов, включая модуляцию иммунного ответа при патологических состояниях.
Цель — сравнить качественный и количественный состав внеклеточных везикул, продуцируемых клетками линии ТНР-1, в зависимости от концентрации и длительности активации форбол-12-миристат-13-ацетатом и направления поляризации в М1- или М2- макрофаги.
Методы. Клетки линии THP-1 активировали разными концентрациями форбол-12-миристат-13-ацетата (100 и 10 нг/мл). Поляризацию клеток в М1-макрофаги осуществляли обработкой IFN-γ и LPS, в М2 — IL-4 и IL-13. Клетки и их внеклеточные везикулы иммунофенотипировали по CD80, CD64, HLA-DR, CD206, CD209 и CD163. В клетках оценивали относительную экспрессию генов IL-1β, IL-6, IL-8, IL-12p40, TNFα, CXCL10, CD163, CD206, CCL22, IL-10, FN и GAPDH. Размер и концентрацию внеклеточных везикул оценивали методом анализа траектории наночастиц. Дополнительно белковый состав внеклеточных везикул оценивали по наличию тетраспаниновых рецепторов (CD9, CD63, CD82 и CD81) и белка флотиллина-1.
Результаты. Активация клеток высокими дозами форбол-12-миристат-13-ацетата с последующей поляризацией в направлении М1 по сравнению с М2 приводила к увеличению экспрессии CD80, CD209 и CD163. Вне зависимости от примененного протокола активации поляризации клетки ТНР-1 распределялись по результатам дискриминантного анализа уровня экспрессии генов на обособленные компактные кластеры. Активация клеток сопровождалась увеличением продукции внеклеточных везикул более чем в 10 раз. После активации высокими дозами форбол-12-миристат-13-ацетата последующая поляризация в направлении М1 приводила к секреции наибольшего количества внеклеточных везикул (188×108 [185×108; 202,5×108] частиц/мл) более крупного размера (134±6,1 нм) и экспрессирующих CD63 и CD82. Однако содержание в них флотиллина-1 было пониженным.
Заключение. Таким образом, активация клеток ТНР-1 высокими дозами форбол-12-миристат-13-ацетата более эффективна для дальнейшей поляризации. В зависимости от примененного протокола поляризации клетки продуцируют внеклеточные везикулы, различающиеся по количественному и качественному составу.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Дарина Борисовна Самбур
Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова
Email: sambour-darina@mail.ru
ORCID iD: 0009-0009-6352-813X
SPIN-код: 8885-9190
Россия, Санкт-Петербург
Ольга Викторовна Калинина
Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова
Email: olgakalinina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1916-5705
SPIN-код: 7752-7929
д-р биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургАртур Даниилович Акино
Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова
Email: akino97@bk.ru
ORCID iD: 0000-0001-6516-7184
SPIN-код: 3395-5556
д-р биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургПолина Валерьевна Тирикова
Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова
Email: tipo.paulina2002@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4433-1640
Россия, Санкт-Петербург
Ксения Дмитриевна Зубкова
Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова
Email: zubkowa.ksenija@gmail.com
ORCID iD: 0009-0007-8108-0311
Россия, Санкт-Петербург
Ирина Ильинична Дрейзис
Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова
Email: ira.dreyzis@gmail.com
ORCID iD: 0009-0004-3673-015X
Россия, Санкт-Петербург
Артем Аркадьевич Рубинштейн
Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова; Институт экспериментальной медицины
Email: arrubin6@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-8493-5211
SPIN-код: 6025-1790
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург
Андрей Сергеевич Трулев
Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова; Институт экспериментальной медицины
Email: trulioff@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-7495-446X
SPIN-код: 8688-7506
канд. биол. наук
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургИгорь Владимирович Кудрявцев
Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова; Институт экспериментальной медицины
Email: igorek1981@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-7204-7850
SPIN-код: 4903-7636
канд. биол. наук
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургАлексей Сергеевич Головкин
Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова
Автор, ответственный за переписку.
Email: golovkin_a@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7577-628X
SPIN-код: 8803-2425
д-р мед. наук
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Buzas EI. The roles of extracellular vesicles in the immune system. Nat Rev Immunol. 2023;23(4):236–250. doi: 10.1038/s41577-022-00763-8
- Deville S, Garcia Romeu H, Oeyen E, et al. Macrophages release extracellular vesicles of different properties and composition following exposure to nanoparticles. Int J Mol Sci. 2023;24(1):1–18. doi: 10.3390/ijms24010260
- Sun L, Wang X, Saredy J, et al. Innate-adaptive immunity interplay and redox regulation in immune response. Redox Biol. 2020;37:101759. doi: 10.1016/j.redox.2020.101759
- Duan T, Du Y, Xing C, et al. Toll-like receptor signaling and its role in cell-mediated immunity. Front Immunol. 2022;13:812774. doi: 10.3389/fimmu.2022.812774
- Li D, Wu M. Pattern recognition receptors in health and diseases. Signal Transduct Target Ther. 2021;6(1):1–24. doi: 10.1038/s41392-021-00687-0
- Porcelli SA. Innate Immunity. In: Kelley and Firestein’s Textbook of Rheumatology. Philadelphia, PA: Elsevier; 2017. Vol. 1. P. 274–287.
- Zhou D, Huang C, Lin Z, et al. Macrophage polarization and function with emphasis on the evolving roles of coordinated regulation of cellular signaling pathways. Cell Signal. 2014;26(2):192–197. doi: 10.1016/j.cellsig.2013.11.004
- Rumpel N, Riechert G, Schumann J. miRNA-mediated fine regulation of TLR-induced M1 polarization. Cells. 2024;13(8):1–18. doi: 10.3390/cells13080701
- Zhao W, Ma L, Deng D, et al. M2 macrophage polarization: a potential target in pain relief. Front Immunol. 2023;14:1243149. doi: 10.3389/fimmu.2023.1243149
- Shapouri-Moghaddam A, Mohammadian S, Vazini H, et al. Macrophage plasticity, polarization, and function in health and disease. J Cell Physiol. 2018;233:6425–6440. doi: 10.1002/jcp.26429
- Funes SC, Rios M, Escobar-Vera J, Kalergis AM. Implications of macrophage polarization in autoimmunity. Immunology. 2018;154(2):186–195. doi: 10.1111/imm.12910
- Yunna C, Mengru H, Lei W, Weidong C. Macrophage M1/M2 polarization. Eur J Pharmacol. 2020;877:173090. doi: 10.1016/j.ejphar.2020.173090
- Strizova Z, Benesova I, Bartolini R, et al. M1/M2 macrophages and their overlaps – myth or reality? Clin Sci. 2023;137(15):1067–1093. doi: 10.1042/CS20220531
- Luo M, Zhao F, Cheng H, et al. Macrophage polarization: an important role in inflammatory diseases. Front Immunol. 2024;15:1352946. doi: 10.3389/fimmu.2024.1352946
- Zhang Q, Sioud M. Tumor-associated macrophage subsets: shaping polarization and targeting. Int J Mol Sci. 2023;24(8):7493. doi: 10.3390/ijms24087493
- Arora S, Dev K, Agarwal B, et al. Macrophages: Their role, activation and polarization in pulmonary diseases. Immunobiology. 2018;223(4–5):383–396. doi: 10.1016/j.imbio.2017.11.001
- Kiseleva V, Vishnyakova P, Elchaninov A, et al. Biochemical and molecular inducers and modulators of M2 macrophage polarization in clinical perspective. Int Immunopharmacol. 2023;122:110583. doi: 10.1016/j.intimp.2023.110583
- Wang LX, Zhang SX, Wu HJ, et al. M2b macrophage polarization and its roles in diseases. J Leukoc Biol. 2019;106(2):345–358. doi: 10.1002/JLB.3RU1018-378RR
- Noh JY, Han HW, Kim DM, et al. Innate immunity in peripheral tissues is differentially impaired under normal and endotoxic conditions in aging. Front Immunol. 2024;15:1357444. doi: 10.3389/fimmu.2024.1357444
- Deng L, Jian Z, Xu T, et al. Macrophage polarization: an important candidate regulator for lung diseases. Molecules. 2023;28(5):2379. doi: 10.3390/molecules28052379
- Gao J, Liang Y, Wang L. Shaping polarization of tumor-associated macrophages in cancer immunotherapy. Front Immunol. 2022;13:888713. doi: 10.3389/fimmu.2022.888713
- Zhou X, Xie F, Wang L, et al. The function and clinical application of extracellular vesicles in innate immune regulation. Cell Mol Immunol. 2020;17(4):323–334. doi: 10.1038/s41423-020-0391-1
- Hoppenbrouwers T, Bastiaan-Net S, Garssen J, et al. Functional differences between primary monocyte-derived and THP-1 macrophages and their response to LCPUFAs. PharmaNutrition. 2022;22(12):100322. doi: 10.1016/j.phanu.2022.100322
- Mohd Yasin ZN, Mohd Idrus FN, Hoe CH, Yvonne-Tee GB. Macrophage polarization in THP-1 cell line and primary monocytes: A systematic review. Differentiation. 2022;128:67–82. doi: 10.1016/j.diff.2022.10.001
- Chanput W, Mes JJ, Wichers HJ. THP-1 cell line: An in vitro cell model for immune modulation approach. Int Immunopharmacol. 2014;23:37–45. doi: 10.1016/j.intimp.2014.08.002
- Scobie MR, Abood A, Rice CD. Differential transcriptome responses in human THP-1 macrophages following exposure to T98G and LN-18 human glioblastoma secretions: a simplified bioinformatics approach to understanding patient-glioma-specific effects on tumor-associated macrophages. Int J Mol Sci. 2023;24(6):5115. doi: 10.3390/ijms24065115
- Tang D, Cao F, Yan C, et al. Extracellular vesicle/macrophage axis: potential targets for inflammatory disease intervention. Front Immunol. 2022;13. doi: 10.3389/fimmu.2022.705472
- Akino AD, Rubinshtein AA, Golovkin IA, et al. Features of extracellular vesicle production by THP-1 cells during in vitro stimulation. Complex Issues Cardiovasc Dis. 2024;13(3):154–66. doi: 10.17802/2306-1278-2024-13-3-154-166
- Sambur DB, Kalinina O V., Aquino AD, et al. Extracellular vesicles secreted by the activated THP-1 cells influence the inflammation gene expression in zebrafish. Neurochem J. 2024;18(1):92–107. doi: 10.31857/S1027813324010096
- Petrova T, Kalinina O, Aquino A, et al. Topographic distribution of miRNAs (miR-30a, miR-223, miR-let-7a, miR-let-7f, miR-451, and miR-486) in the plasma extracellular vesicles. Noncoding RNA. 2024;10(1):15. doi: 10.3390/ncrna10010015
- Wang Y, Zhao M, Liu S, et al. Macrophage-derived extracellular vesicles: diverse mediators of pathology and therapeutics in multiple diseases. Cell Death Dis. 2020;11(10):924. doi: 10.1038/s41419-020-03127-z
- Nielsen MC, Hvidbjerg Gantzel R, et al. Macrophage activation markers, CD163 and CD206, in acute-on-chronic liver failure. Cells. 2020;9(5):1175. doi: 10.3390/cells9051175
- Nielsen MC, Andersen MN, Rittig N, et al. The macrophage-related biomarkers sCD163 and sCD206 are released by different shedding mechanisms. J Leukoc Biol. 2019;106(5):1129–1138. doi: 10.1002/JLB.3A1218-500R
- Heideveld E, Horcas-Lopez M, Lopez-Yrigoyen M, et al. Methods for macrophage differentiation and in vitro generation of human tumor associated-like macrophages. Methods Enzymol. 2020;632:113–131. doi: 10.1016/bs.mie.2019.10.005
- Rynikova M, Adamkova P, Hradicka P, et al. Transcriptomic analysis of macrophage polarization protocols: vitamin D3 or IL-4 and IL-13 do not polarize THP-1 monocytes into reliable M2 macrophages. Biomedicines. 2023;11(2):608. doi: 10.3390/biomedicines11020608
- Zhao F, Zhang J, Liu YS, et al. Research advances on flotillins. Virol J. 2011;8(1):479. doi: 10.1186/1743-422X-8-479
- Skytthe MK, Graversen JH, Moestrup SK. Targeting of CD163+ macrophages in inflammatory and malignant diseases. Int J Mol Sci. 2020;21(15):5497. doi: 10.3390/ijms21155497
Дополнительные файлы
