Характеристики функционального состояния нейтрофилов периферической крови у пациентов с люминальным раком молочной железы
- Авторы: Коробкина Ю.Д.1, Адаманская Е.А.1,2, Польшина Н.И.3, Галкина С.В.1,2, Кадыров Т.И.1, Горбунов Н.П.4, Соколов А.В.4, Жукова Л.Г.3, Свешникова А.Н.1,2
-
Учреждения:
- Центр теоретических проблем физико-химической фармакологии РАН
- Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева
- Московский клинический научный центр им. А.С. Логинова
- Институт экспериментальной медицины
- Выпуск: Том 25, № 2 (2025)
- Страницы: 76-84
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://journal-vniispk.ru/MAJ/article/view/319497
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ641688
- EDN: https://elibrary.ru/CFVRKH
- ID: 319497
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Нейтрофилы играют критически важную роль в развитии опухоли, а их функциональное состояние может служить прогностическим маркером. Однако функциональные характеристики нейтрофилов периферической крови, такие как хемотаксис и склонность к нетозу, у пациенток с люминальным раком молочной железы изучены недостаточно. Исследование этих параметров может дать новые сведения о механизмах прогрессии заболевания и реакции на терапию.
Цель — проведение анализа хемотаксической активности нейтрофилов и склонность к нетозу в образцах крови пациенток с местно-распространенным люминальным раком молочной железы, проходящих лечение (неоадъювантную химиотерапию) в Московском клиническом научном центре им. А.С. Логинова.
Методы. Исследование проводили на образцах крови шести пациенток с III стадией люминального B, HER2-негативного рака молочной железы до начала и через два месяца противоопухолевой терапии. В качестве контроля использовали образцы крови здоровых взрослых добровольцев. Работа выполнена с использованием методов флуоресцентной микроскопии для хемотаксиса нейтрофилов при росте тромбов и количества внеклеточных ДНК-ловушек нейтрофилов по реакции с Hoechst 33342 и антителами против миелопероксидазы и нейтрофильной эластазы в мазках богатой лейкоцитами плазмы крови.
Результаты. До начала неоадъювантной терапии уровень нетоза значимо повышен (30±14% против 4,6±3,4% у здоровых доноров), при этом у большинства пациенток на терапии происходит снижение его уровня (17±17%). Скорость движения нейтрофилов повышена у некоторых пациенток (0,17±0,06 против 0,113±0,009 мкм/с у здоровых доноров) и снижаются на терапии (0,10±0,03 мкм/с). При этом количество ассоциированных с тромбами нейтрофилов снижается на терапии (25±18 против 61±23) даже у пациентов с нейтроцитозом.
Заключение. Впервые показано, что у пациенток с люминальным В, HER2-негативным раком молочной железы скорость хемотаксиса нейтрофилов отклоняется от нормы; при этом их адгезия понижена, а нейтрофилы периферической крови значимо более склонны к нетозу, чем у здоровых доноров.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Юлия Джессика Дмитриевна Коробкина
Центр теоретических проблем физико-химической фармакологии РАН
Email: juliajessika@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-2762-5460
SPIN-код: 6630-3657
Россия, Москва
Екатерина-Ива Александровна Адаманская
Центр теоретических проблем физико-химической фармакологии РАН; Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева
Email: ka.09@mail.ru
ORCID iD: 0009-0000-4828-4063
SPIN-код: 9633-1147
Россия, Москва; Москва
Наталья Ивановна Польшина
Московский клинический научный центр им. А.С. Логинова
Email: npolshina@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-5417-0425
MD
Россия, МоскваСофия Владимировна Галкина
Центр теоретических проблем физико-химической фармакологии РАН; Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева
Email: s_v_galkina@rambler.ru
ORCID iD: 0009-0006-6321-4489
Россия, Москва; Москва
Тимур Ильдарович Кадыров
Центр теоретических проблем физико-химической фармакологии РАН
Email: kadyrov.ti17@physics.msu.ru
ORCID iD: 0009-0005-0130-1758
Россия, Москва
Николай Петрович Горбунов
Институт экспериментальной медицины
Email: niko_laygo@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4636-0565
SPIN-код: 6289-7281
Россия, Санкт-Петербург
Алексей Викторович Соколов
Институт экспериментальной медицины
Email: biochemsokolov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-9033-0537
SPIN-код: 7427-7395
д-р биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургЛюдмила Григорьевна Жукова
Московский клинический научный центр им. А.С. Логинова
Email: zhukova.lyudmila008@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4848-6938
SPIN-код: 2177-6476
д-р мед. наук
Россия, МоскваАнастасия Никитична Свешникова
Центр теоретических проблем физико-химической фармакологии РАН; Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева
Автор, ответственный за переписку.
Email: ASve6nikova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-4720-7319
SPIN-код: 7893-4627
д-р физ.-мат. наук
Россия, Москва; МоскваСписок литературы
- Singh N, Baby D, Rajguru J, et al. Inflammation and cancer. Ann Afr Med. 2019;18(3):121–126. doi: 10.4103/aam.aam_56_18
- Doshi AS, Asrani KH. Innate and adaptive immunity in cancer. In: Cancer Immunology and Immunotherapy. Elsevier, 2022. P. 19–61.
- Wu M, Ma M, Tan Z, et al. Neutrophil: a new player in metastatic cancers. Front Immunol. 2020;11:565165. doi: 10.3389/fimmu.2020.565165
- Arpinati L, Shaul ME, Kaisar-Iluz N, et al. NETosis in cancer: a critical analysis of the impact of cancer on neutrophil extracellular trap (NET) release in lung cancer patients vs. mice. Cancer Immunol Immunother. 2020;69(2):199–213. doi: 10.1007/s00262-019-02474-x
- Galdiero MR, Bianchi P, Grizzi F, et al. Occurrence and significance of tumor-associated neutrophils in patients with colorectal cancer. Intl J Cancer. 2016;139(2):446–456. doi: 10.1002/ijc.30076
- Fridlender ZG, Sun J, Kim S, et al. Polarization of tumor-associated neutrophil phenotype by TGF-β: “N1” versus “N2” TAN. Cancer Cell. 2009;16(3):183–194. doi: 10.1016/j.ccr.2009.06.017
- Schaider H, Oka M, Bogenrieder T, et al. Differential response of primary and metastatic melanomas to neutrophils attracted by IL-8. Int J Cancer. 2003;103(3):335–343. doi: 10.1002/ijc.10775
- Musiani P, Allione A, Modica A, et al. Role of neutrophils and lymphocytes in inhibition of a mouse mammary adenocarcinoma engineered to release IL-2, IL-4, IL-7, IL-10, IFN-alpha, IFN-gamma, and TNF-alpha. Lab Invest. 1996;74(1):146–157.
- Cupp MA, Cariolou M, Tzoulaki I, et al. Neutrophil to lymphocyte ratio and cancer prognosis: an umbrella review of systematic reviews and meta-analyses of observational studies. BMC Med. 2020;18(1):360. doi: 10.1186/s12916-020-01817-1
- Taucher E, Taucher V, Fink-Neuboeck N, et al. Role of tumor-associated neutrophils in the molecular carcinogenesis of the lung. Cancers. 2021;13:5972. doi: 10.3390/cancers13235972
- Jin L, Kim HS, Shi J. Neutrophil in the pancreatic tumor microenvironment. Biomolecules. 2021;11:1170. doi: 10.3390/biom11081170
- Margaroli C, Cardenas MA, Jansen CS, et al. The immunosuppressive phenotype of tumor-infiltrating neutrophils is associated with obesity in kidney cancer patients. OncoImmunology. 2020;9(1):1747731. doi: 10.1080/2162402X.2020.1747731
- Cerezo-Wallis D, Ballesteros I. Neutrophils in cancer, a love-hate affair. FEBS J. 2022;289(13):3692–3703. doi: 10.1111/febs.16022
- Shaul ME, Fridlender ZG. Cancer-related circulating and tumor-associated neutrophils – subtypes, sources and function. FEBS J. 2018;285(23):4316–4342. doi: 10.1111/febs.14524
- Gungabeesoon J, Gort-Freitas NA, Kiss M, et al. A neutrophil response linked to tumor control in immunotherapy. Cell. 2023;186(7):1448–1464.e20. doi: 10.1016/j.cell.2023.02.032
- Sveshnikova AN, Adamanskaya EA, Panteleev MA. Conditions for the implementation of the phenomenon of programmed death of neutrophils with the appearance of DNA extracellular traps during thrombus formation. Pediatric Hematology/Oncology and Immunopathology. 2024;23(1):211–218. EDN: UQHWLZ doi: 10.24287/1726-1708-2024-23-1-211-218
- Papayannopoulos V. Neutrophil extracellular traps in immunity and disease. Nat Rev Immunol. 2018;18(2):134–147. doi: 10.1038/nri.2017.105
- Sveshnikova AN, Adamanskaya EA, Korobkina Yu-DD, Panteleev MA. Intracellular signaling involved in the programmed neutrophil cell death leading to the release of extracellular DNA traps in thrombus formation. Pediatric Hematology/Oncology and Immunopathology. 2024;23(2):222–230. doi: 10.24287/1726-1708-2024-23-2-222-230
- Shahzad MH, Feng L, Su X, et al. Neutrophil extracellular traps in cancer therapy resistance. Cancers (Basel). 2022;14(5):1359. doi: 10.3390/cancers14051359
- Martins-Cardoso K, Almeida VH, Bagri KM, et al. Neutrophil extracellular traps (NETs) promote pro-metastatic phenotype in human breast cancer cells through epithelial-mesenchymal transition. Cancers (Basel). 2020;12(6):1542. doi: 10.3390/cancers12061542
- Poto R, Cristinziano L, Modestino L, et al. Neutrophil extracellular traps, angiogenesis and cancer. Biomedicines. 2022;10:431. doi: 10.3390/biomedicines10020431
- Gao F, Feng Y, Hu X, et al. Neutrophils regulate tumor angiogenesis in oral squamous cell carcinoma and the role of Chemerin. Int Immunopharmacol. 2023;121:110540. doi: 10.1016/j.intimp.2023.110540
- Kaltenmeier C, Yazdani HO, Morder K, et al. Neutrophil extracellular traps promote T cell exhaustion in the tumor microenvironment. Front Immunol. 2021;12:785222. doi: 10.3389/fimmu.2021.785222
- Cives M, Pelle’ E, Quaresmini D, et al. The tumor microenvironment in neuroendocrine tumors: biology and therapeutic implications. Neuroendocrinology. 2019;109(2):83–99. doi: 10.1159/000497355
- Kou M, Lu W, Zhu M, et al. Massively recruited sTLR9+ neutrophils in rapidly formed nodules at the site of tumor cell inoculation and their contribution to a pro-tumor microenvironment. Cancer Immunol Immunother. 2023;72(8):2671–2686. doi: 10.1007/s00262-023-03451-1
- Mizuno R, Kawada K, Itatani Y, et al. The role of tumor-associated neutrophils in colorectal cancer. IJMS. 2019;20(3):529. doi: 10.3390/ijms20030529
- Sung H, Ferlay J, Siegel RL, et al. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 2021;71(3):209–249. doi: 10.3322/caac.21660
- Howlader N, Altekruse SF, Li CI, et al. US incidence of breast cancer subtypes defined by joint hormone receptor and HER2 status. J Natl Cancer Inst. 2014;106(5):dju055. doi: 10.1093/jnci/dju055
- Soto-Perez-de-Celis E, Chavarri-Guerra Y, Leon-Rodriguez E, Gamboa-Dominguez A. Tumor-associated neutrophils in breast cancer subtypes. Asian Pac J Cancer Prev. 2017;18(10):2689–2694. doi: 10.22034/APJCP.2017.18.10.2689
- Sheng Y, Peng W, Huang Y, et al. Tumor-activated neutrophils promote metastasis in breast cancer via the G-CSF-RLN2-MMP-9 axis. J Leukoc Biol. 2023;113(4):383–399. doi: 10.1093/jleuko/qiad004
- Morozova DS, Martyanov AA, Obydennyi SI, et al. Ex vivo observation of granulocyte activity during thrombus formation. BMC Biol. 2022;20(1):32. doi: 10.1186/s12915-022-01238-x
- Korobkin JD, Deordieva EA, Tesakov IP, et al. Dissecting thrombus-directed chemotaxis and random movement in neutrophil near-thrombus motion in flow chambers. BMC Biol. 2024;22(1):115. doi: 10.1186/s12915-024-01912-2
- Adamanskaya EA, Yushkova EB, Fedorova DV, et al. Methodology for observing neutrophil DNA traps in blood samples of pediatric patients. In: Collection of abstracts of the XXIV congress of the I. P. Pavlov Physiological Society. Saint Petersburg; 2023. P. 127. EDN: WZIHSV (In Russ.)
- Sokolov AV, Ageeva KV, Kostevich VA, et al. Study of interaction of ceruloplasmin with serprocidins. Biochemistry (Moscow). 2010;75(11):1361–1367. EDN: OACVTD doi: 10.1134/S0006297910110076
- Sokolov AV, Acquasaliente L, Kostevich VA, et al. Thrombin inhibits the anti-myeloperoxidase and ferroxidase functions of ceruloplasmin: relevance in rheumatoid arthritis. Free Radic Biol Med. 2015;86:279–294. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2015.05.016
- Groblewska M, Mroczko B, Wereszczyńska-Siemiątkowska U, et al. Serum levels of granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF) and macrophage colony-stimulating factor (M-CSF) in pancreatic cancer patients. Clin Chem Lab Med. 2007;45(1):30–34. doi: 10.1515/CCLM.2007.025
- Schoergenhofer C, Schwameis M, Wohlfarth P, et al. Granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF) increases histone-complexed DNA plasma levels in healthy volunteers. Clin Exp Med. 2017;17(2):243–249. doi: 10.1007/s10238-016-0413-6
- Xu Q, Zhao W, Yan M, Mei H. Neutrophil reverse migration. J Inflamm (Lond). 2022;19(1):22. doi: 10.1186/s12950-022-00320-z
- Patel S, Fu S, Mastio J, et al. Unique pattern of neutrophil migration and function during tumor progression. Nat Immunol. 2018;19:1236–1247. doi: 10.1038/s41590-018-0229-5
- Thiam HR, Wong SL, Qiu R, et al. NETosis proceeds by cytoskeleton and endomembrane disassembly and PAD4-mediated chromatin decondensation and nuclear envelope rupture. Proc Natl Acad Sci. 2018;117(13):7326–7337. doi: 10.1073/pnas.1909546117
- Thålin C, Lundström S, Seignez C, et al. Citrullinated histone H3 as a novel prognostic blood marker in patients with advanced cancer. PLoS One. 2018;13:e0191231. doi: 10.1371/journal.pone.0191231
- Krishnan J, Hennen EM, Ao M, et al. NETosis drives blood pressure elevation and vascular dysfunction in hypertension. Circ Res. 2024;134(11):1483–1494. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.123.323897
- Li J-H, Tong D-X, Wang Y, et al. Neutrophil extracellular traps exacerbate coagulation and endothelial damage in patients with essential hypertension and hyperhomocysteinemia. Thromb Res. 2021;197:36–43. doi: 10.1016/j.thromres.2020.10.028
- Liu S, Wu W, Du Y, et al. The evolution and heterogeneity of neutrophils in cancers: origins, subsets, functions, orchestrations and clinical applications. Mol Cancer. 2023;22:148. doi: 10.1186/s12943-023-01843-6
- Tamura M, Hattori K, Nomura H, et al. Induction of neutrophilic granulocytosis in mice by administration of purified human native granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF). Biochem Biophys Res Commun. 1987;142(2):454–460. doi: 10.1016/0006-291X(87)90296-8
- Jun HS, Lee YM, Song KD, et al. G-CSF improves murine G6PC3-deficient neutrophil function by modulating apoptosis and energy homeostasis. Blood. 2011;117(14):3881–3892. doi: 10.1182/blood-2010-08-302059
- Yang Y, Yang J, Li L, et al. Neutrophil chemotaxis score and chemotaxis-related genes have the potential for clinical application to prognosticate the survival of patients with tumours. BMC Cancer. 2024;24:1244. doi: 10.1186/s12885-024-12993-1
- Sagiv JY, Michaeli J, Assi S, et al. Phenotypic diversity and plasticity in circulating neutrophil subpopulations in cancer. Cell Rep. 2015;10(4):562–573. doi: 10.1016/j.celrep.2014.12.039
- Koyama S, Takamizawa A, Sato E, et al. Cyclophosphamide stimulates lung fibroblasts to release neutrophil and monocyte chemoattractants. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2001;280(6):L1203–L1211. doi: 10.1152/ajplung.2001.280.6.L1203
- Palukuri NR, Yedla RP, Bala SC, et al. Incidence of febrile neutropenia with commonly used chemotherapy regimen in localized breast cancer. South Asian J Cancer. 2020;9(1):4–6. doi: 10.4103/sajc.sajc_439_18
- Katsifis GE, Tzioufas AG, Vlachoyiannopoulos PG, et al. Risk of myelotoxicity with intravenous cyclophosphamide in patients with systemic lupus erythematosus. Rheumatology (Oxford). 2002;41(7):780–786. doi: 10.1093/rheumatology/41.7.780
Дополнительные файлы
