Особенности микробиоты околоплодных вод при доношенной беременности
- Авторы: Каганова М.А.1, Спиридонова Н.В.1, Медведчикова-Ардия Л.К.2
-
Учреждения:
- Самарский государственный медицинский университет
- Самарская областная клиническая больница имени В.Д. Середавина
- Выпуск: Том 37, № 6 (2020)
- Страницы: 13-24
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://journal-vniispk.ru/PMJ/article/view/59580
- DOI: https://doi.org/10.17816/pmj37613-24
- ID: 59580
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Цель. Изучить микробный пейзаж околоплодных вод при физиологическом течении доношенной беременности. В последние несколько лет после публикации ряда исследований, связанных с изучением микробиома человека (The Human Microbiome Project – HMP), произошла смена парадигмы о безусловной стерильности плодных оболочек, плаценты и околоплодных вод при физиологически протекающей беременности.
Материалы и методы. У 19 беременных в сроке 37–41 неделя с интактными плодными оболочками во время элективного кесарева сечения проводился забор амниотической жидкости на ПЦР-РВ следующих микроорганизмов: Lactobacillus spp., Enterobacteriaceae, Streptococcus spp., Staphylococcus spp., Gardnerella vaginalis / Prevotella bivia / Porphyromonas spp., Eubacterium spp., Sneathia spp. / Leptotrihia spp. / Fusobacterium spp., Megasphaera spp. / Veillonella spp. / Dialister spp., Lachnobacterium spp. / Clostridium spp., Mobiluncus spp. / Corynebacterium spp., Peptostreptococcus spp., Atopobium vaginae, Mycoplasma hominis, Ureaplasma (urealyticum + parvum), Candida spp., Mycoplasma henitalium.
Результаты. При интактных плодных оболочках общая бактериальная масса (ОБМ) околоплодных вод составляет 103,02 Гэ/копий, в 47,4 % случаев околоплодные воды стерильны. Микробиота наиболее часто представлена семейством Enterobacteriaceae spp. – 37 %, на долю остальных идентифицированнных бактерий – приходится 28 %, на долю «неизвестных» – 35 %.
Выводы. При физиологически протекающей беременности и интактных плодных оболочках общая бактериальная масса околоплодных вод низкая (ОБМ = 103,02 ± 345 Гэ/мл). При целом плодном пузыре наиболее характерными видами микроорганизмов, обитающими в амниотической жидкости, является Enterobacteriaceae spp. (37 %), остальные представлены в единичных случаях. Наличие представителей анаэробного дисбиоза влагалища, а также лактобацилл нехарактерно при целых плодных оболочках.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
М. А. Каганова
Самарский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: mkaganova@yandex.ru
кандидат медицинских наук, доцент кафедры акушерства и гинекологии
РоссияН. В. Спиридонова
Самарский государственный медицинский университет
Email: mkaganova@yandex.ru
доктор медицинских наук, профессор, заведующая кафедрой акушерства и гинекологии
РоссияЛ. К. Медведчикова-Ардия
Самарская областная клиническая больница имени В.Д. Середавина
Email: mkaganova@yandex.ru
акушер-гинеколог
РоссияСписок литературы
- Biasucci G., Rubini M., Riboni S. et al. Mode of delivery affects the bacterial community in the newborn gut. Early Hum Dev 2010; 86 1): 13–5.
- Dominguez-Bello M.G., Costello E.K., Contreras M. et al. Delivery mode shapes the acquisition and structure of the initial microbiota across multiple body habitats in newborns. Proc Natl Acad Sci USA 2010; 10726): 11971–11975.
- Zhu L., Luo F., Hu W. et al. Bacterial communities in the womb during healthy pregnancy. Front Microbiol 2018; 9: 2163.
- Doyle R.M., Harris K., Kamiza S. et al. Bacterial communities found in placental tissues are associated with severe chorioamnionitis and adverse birth outcomes. PLoS One 2017; 127): e0180167.
- Parnell L.A., Briggs C.M., Cao B. et al. Microbial communities in placentas from term normal pregnancy exhibit spatially variable profiles. Sci Rep 2017; 71): 11200.
- Gomez-Arango L.F., Barrett H.L., McIntyre H.D. et al. Contributions of the maternal oral and gut microbiome to placental microbial colonization in overweight and obese pregnant women. Sci Rep 2017; 71): 2860.
- Leon L.J., Doyle R., Diez-Benavente E. et al. Enrichment of clinically relevant organisms in spontaneous preterm delivered placenta and reagent contamination across all clinical groups in a large UK pregnancy cohort. Appl Environ Microbiol 2018; 84 14).
- Prince A.L., Chu D.M., Seferovic M.D. et al. The perinatal microbiome and pregnancy: moving beyond the vaginal microbiome. Cold Spring Harb Perspect Med 2015; 5 6).
- Каганова М.А., Спиридонова Н.В., Нестеренко С.А. и др. Анализ особенностей течения родов и перинатальных исходов при изолированном маловодии. Аспирантский вестник Поволжья. 2019: 5–6; 39–43.
- Aagaard K., Ma .J, Antony K.M., Ganu R., Petrosino J., Versalovic J. The placenta harbors a unique microbiome. Sci Transl Med 2014; 6: 237–265.
- Rehbinder E.M., Lødrup K.C., Cath rine A.S., Angell I.L., Landrø L., Hilde K., Gaustad P., Rudi K. Is amniotic fluid of women with uncomplicated term pregnancies free of bacteria? Am J Obstet Gynecol 2018; 219 3): 289.e1–289.e12.
- Lim E.S., Rodriguez C., Holtz L.R. Amniotic fluid from healthy term pregnancies does not harbor a detectable microbial community. Microbiome 2018; 6: 87.
- Fernandez H., Montuclard B., Guibert M. Does intraamniotic infection in the early phase of the second trimester really exist? Am J Obstet Gynecol 1996; 175: 1077–1078.
- Gervasi M.T., Romero R., Bracalente G., Erez O., Dong Z., Hassan S.S., Yeo L., Yoon B.H., Chaiworapongsa T. Midtrimester amniotic fluid concentrations of interleukin-6 and interferon-gamma-inducible protein-10: evidence for heterogeneity of intra-amniotic inflammation and associations with spontaneous early 32 weeks) preterm delivery. J Perinat Med 2012; 40: 329–343.
- Cherouny P.H., Pankuch G.A., Botti J.J. Occult intraamniotic infection at the time of midtrimester genetic amniocentesis: a reassessment. Infect Dis Obstet Gynecol 1994; 2: 136–139.
- Han Y.W., Shen T., Chung P., Buhimschi I.A., Buhimschi C.C. Uncultivated bacteria as etiologic agents of intra-amniotic inflammation leading to preterm birth. J Clin Microbiol 2009; 47: 38–47.
- Tita A.T., Andrews W.W. Diagnosis and management of clinical chorioamnionitis. Clin Perinatol 2010; 37: 339–354.
- Romero R., Chaemsaithong P., Korze niewski S.J., Kusanovic J.P., Docheva N., Martinez-Varea A. et al. Clinical chorioamnionitis at term III: how well do clinical criteria perform in the identification of proven intra-amniotic infection? J Perinat Med 2016; 44: 23–32.
- Collado M.C., Rautava S., Aakko J., Isolauri E., Salminen S. Human gut colonisation may be initiated in utero by distinct microbial communities in the placenta and amniotic fluid. Sci Rep 2016; 6: 23129
- Дадаева Д.Г. Микробиота плаценты и ее роль в развитии амниотической инфекции. Журнал акушерства и женских болезней 2020: 69 1): 81–86.
- Каганова М.А., Спиридонова Н.В. Устройство для сбора околоплодных вод. Патент РФ 198 317 U1; 30.06.2020.
- Болдырева М.Н., Липова Е.В., Алексеев Л.П., Витвицкая Ю.Г., Гуськова И.А. Характеристика биоты урогенитального тракта у женщин репродуктивного возраста методом ПЦР в реальном времени. Журнал акушерства и женских болезней. 2009; LVIII 6): 36–42.
- Сухих Г.Т., Прилепская В.Н., Трофимов Д.Ю., Донников А.Е., Айламазян Э.К. и др. Применение метода полимеразной цепной реакции в реальном времени для оценки микробиоценоза урогенитального тракта у женщин тест «Фемофлор»): медицинская технология. М. 2011; 36.
- Ворошилина Е.С., Тумбинская Л.В., Донников А.Е., Плотко Е.Э., Хаютин Л.В. Биоценоз влагалища с точки зрения количественной полимеразной цепной реакции: что есть норма? Акушерство и гинекология. 2011; 1: 57–65.
- Ansbacher R., Boyson W.A., Morris J.A. Sterility of the uterine cavity. Am J Obstet Gynecol 1967; 99: 394–396.
- Urushiyama D., Suda W., Ohnishi E., Araki R., Kiyoshima Ch., Kurakazu M., Sanui A., Murata M., Nabeshima K., Yasunaga Sh., Saito Sh., Nomiyama M., Hattori M., Miyamoto Sh., Hata K. Microbiome profle of the amniotic fuid as a predictive biomarker of perinatal outcome SCIENTIFIC Reports 2017; 7: 12171.
- Solt I. The human microbiome and the great obstetrical syndromes: a new frontier in maternal-fetal medicine. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol 2015; 29: 165–175.
- Parnell L.A., Briggs C.M., Cao B., Dela nnoy-Bruno O., Schrieffer A.E., Mysorekar I.U. Microbial communities in placentas from term normal pregnancy exhibit spatially variable profiles. Sci Rep 2017; 7: 11200.
- Steel J.H., Malatos S., Kennea N., Edwards A.D., Miles L., Duggan P. et al. Bacteria and inflammatory cells in fetal membranes do not always cause preterm labor. Pediatr Res. 2005. 57: 404–411.
- Combs C.A., Gravett M., Garite T.J. et al. Amniotic fluid infection, inflammation, and colonization in preterm labor with intact membranes. Am J Obstet Gynecol 2014; 210 2): 125.e1–125.e15.
- Combs C.A., Garite T.J., Lapidus J.A. et al. Detection of microbial invasion of the amniotic cavity by analysis of cervicovaginal proteins in women with preterm labor and intact membranes. Am J Obstet Gynecol 2015; 212 4): 482.e1–482.e12.
- Collado M.C., Ceranda M., Baüerl Ch., Vento M., Pérez-Martínez G. Microbial ecology and host-microbiota interactions during early life stages. Gut Microbes 2012; 3 4): 352–365.
- Krieg N.R., Ludwig W., Whitman W., Hedlund B.P., Paster B.J., Staley J.T., Ward N., Brown D., Parte A. Eds.) Bergey's Manual of Systematic Bacteriology 2010; 925.
- Younes J.A., Lievens E., Hummelen R., van der Westen R., Reid G., Petrova M.I. Women and their microbes: the unexpected friendship. Trends Microbiol 2017; 26: 16–32.
- Bagga R., Arora P. Genital Micro-Organisms in Pregnancy. Front. Public Health 2020; 8: 225.
Дополнительные файлы
