Генетическое разнообразие микросимбионтов термопсиса ланцетного (Thermopsis lanceolata), произрастающего в Монголии

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Впервые были выделены и идентифицированы бактерии из клубеньков дикорастущего лекарственного бобового растения термопсиса ланцетного (Thermopsis lanceolata), произрастающего в Монголии. В результате секвенирования 16S рДНК (rrs) и гена «домашнего хозяйства» atpD определено таксономическое положение 14 изолятов. Показано значительное биоразнообразие микросимбионтов термопсиса, которые относились к трем родам порядка Rhizobiales: Phyllo bacterium (сем. Phyllobacteriaceae), Rhizobium(сем. Rhizobiaceae) и Bosea (сем. Bradyrhizobiaceae). Видовая принадлежность была определена для девяти изолятов: шесть изолятов были идентифицированы как Phyllobacterium zundukense и Phyllobacterium trifolii (100 и 99,9 % rrs гомологии с типовыми штаммами P. zundukense Tri-48T и P. trifolii PETP02T соответственно), три изолята — как Rhizobium anhuiense (99,8 % rrs гомологии с типовым штаммом R. anhuiense CCBAU 23252T). Два медленнорастущих изолята Tla-534 и Tla-545, отнесенных к роду Bosea, могут потенциально принадлежать к новым видам, поскольку их сходство по гену rrs с ближайшими типовыми штаммами B. massiliensis LMG 26221T, B. lathyri LMG 26379T и B. vaviloviae Vaf18T составляло 98,5–99,0 %. Неризобиальных штаммов из клубеньков выделено не было. Создание коллекции микросимбионтов термопсиса ланцетного и их изучение является одной из необходимых предпосылок для промышленного возделывания этой ценной лекарственной культуры.

Об авторах

Денис Сергеевич Карлов

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии»

Автор, ответственный за переписку.
Email: makondo07@gmail.com
SPIN-код: 8355-8091
ResearcherId: E-2552-2014

канд. биол. наук, младший научный сотрудник ведомственной коллекции полезных микроорганизмов сельскохозяйственного назначения

Россия, 196608, г. Санкт-Петербург, Пушкин 8, ш. Подбельского, д.3

Анна Львовна Сазанова

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии»

Email: anna_sazanova@mail.ru

канд. биол. наук, старший научный сотрудник ведомственной коллекции полезных микроорганизмов сельскохозяйственного назначения

Россия, 196608, г. Санкт-Петербург, Пушкин 8, ш. Подбельского, д.3

Ирина Геннадьевна Кузнецова

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии»

Email: kuznetsova_rina@mail.ru

инженер-исследователь ведомственной коллекции полезных микроорганизмов сельскохозяйственного назначения

Россия, 196608, г. Санкт-Петербург, Пушкин 8, ш. Подбельского, д.3

Вера Игоревна Сафронова

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии»

Email: v.safronova@rambler.ru

канд. биол. наук, заведующая ведомственной коллекцией полезных микроорганизмов сельскохозяйственного назначения

Россия, 196608, г. Санкт-Петербург, Пушкин 8, ш. Подбельского, д.3

Нина Юрьевна Тихомирова

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии»

Email: arriam2008@yandex.ru

научный сотрудник ведомственной коллекции полезных микроорганизмов сельскохозяйственного назначения

Россия, 196608, г. Санкт-Петербург, Пушкин 8, ш. Подбельского, д.3

Жанна Павловна Попова

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии»

Email: elestd@yandex.ru

канд. биол. наук, старший научный сотрудник ведомственной коллекции полезных микроорганизмов сельскохозяйственного назначения

Россия, 196608, г. Санкт-Петербург, Пушкин 8, ш. Подбельского, д.3

Юрий Сергеевич Оследкин

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии»

Email: arriam2008@yandex.ru

канд. биол. наук, ведущий научный сотрудник ведомственной коллекции полезных микроорганизмов сельскохозяйственного назначения

Россия, 196608, г. Санкт-Петербург, Пушкин 8, ш. Подбельского, д.3

Алла Васильевна Верхозина

ФГБУН «Сибирский институт физиологии и биохимии растений» СО РАН

Email: allaverh@list.ru

канд. биол. наук, руководитель группы «Гербарий» отдела устойчивости наземных экоситем

Россия, 664033, г. Иркутск, ул. Лермонтова, 132

Андрей Алексеевич Белимов

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии»

Email: belimov@rambler.ru

д-р биол. наук, заведующий лабораторией ризосферной микрофлоры

Россия, 196608, г. Санкт-Петербург, Пушкин 8, ш. Подбельского, д.3

Список литературы

  1. Проворов Н.А., Воробьев Н.И. Генетические основы эволюции растительно-микробного симбиоза. – СПб.: Информ-Навигатор, 2012. [Provorov NA, Vorob’ev NI. Geneticheskie osnovy evolyutsii rastitel’no-mikrobnogo simbioza. Saint Petersburg: Inform-Navigator; 2012. (In Russ.)]
  2. Мальцев А.И. Атлас важнейших видов сорных растений СССР. – М.; Ленинград: ОГИЗ Сельхозгиз, 1939. [Mal’tsev AI. Atlas vazhneyshikh vidov sornykh rasteniy SSSR. Moscow, Leningrad: OGIZ Sel’khozgiz; 1939. (In Russ.)]
  3. Shakirov TT, Sabirov KA. The production of cyisine from the seeds of Thermopsis lanceolata. Chem Nat Compd. 1970;6(6):733-734. https://doi.org/10.1007/BF00565346.
  4. Tutka P, Zatonski W. Cytisine for the treatment of nicotine addiction: from a molecule to therapeutic efficacy. Pharmacol Rep. 2006;58(6):777-798.
  5. Рабинович М.И. Лекарственные растения в ветеринарной практике. – М.: Агропромиздат, 1987. [Rabinovich MI. Lekarstvennye rasteniya v veterinarnoy praktike. Moscow: Agropromizdat; 1987. (In Russ.)]
  6. Novikova N, Safronova V. Transconjugants of Agrobacterium radiobacter harbouring sym genes of Rhizobium galegae can form an effective symbiosis with Medicago sativa. FEMS Microbiol Lett. 1992;72(3):261-268. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.1992.tb05107.x.
  7. Safronova VI, Kuznetsova IG, Sazanova AL, et al. Bosea vaviloviae sp. nov., a new species of slow-growing rhizobia isolated from nodules of the relict species Vavilovia formosa (Stev.) Fed. Antonie Van Leeuwenhoek. 2015;107(4):911-920. https://doi.org/10.1007/s10482-015-0383-9.
  8. Gaunt MW, Turner SL, Rigottier-Gois L, et al. Phylogenies of atpD and recA support the small subunit rRNA-based classification of rhizobia. Int J Syst Evol Microbiol. 2001;51(Pt 6):2037-2048. https://doi.org/10.1099/00207713-51-6-2037.
  9. Martens M, Dawyndt P, Coopman R, et al. Advantages of multilocus sequence analysis for taxonomic studies: a case study using 10 housekeeping genes in the genus Ensifer (including former Sinorhizobium). Int J Syst Evol Microbiol. 2008;58(Pt 1):200-214. https://doi.org/10.1099/ijs.0.65392-0.
  10. Stepkowski T, Zak M, Moulin L, et al. Bradyrhizobium canariense and Bradyrhizobium japonicum are the two dominant rhizobium species in root nodules of lupin and serradella plants growing in Europe. Syst Appl Microbiol. 2011;34(5):368-375. https://doi.org/10.1016/j.syapm.2011.03.002.
  11. Tamura K, Peterson D, Peterson N, et al. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol Biol Evol. 2011;28(10):2731-9. https://doi.org/10.1093/molbev/msr121.
  12. Safronova V, Tikhonovich I. Automated cryobank of microorganisms: Unique possibilities for long-term authorized depositing of commercial microbial strains. In: Microbes in applied research: current advances and challenges. Ed. by A. Mendez-Vilas. Hackensack: World Scientific Publishing Co; 2012. P. 331-334. https://doi.org/10.1142/9789814405041_0066.
  13. Убугунова В.И. Экологические условия формирования почв речных пойм Монголии и их свойства: Автореф. дис. … д-ра биол. наук. – Иркутск, 1999. [Ubugunova VI. Ekologicheskie usloviya formirovaniya pochv rechnykh poym Mongolii i ikh svoystva. [dissertation] Irkutsk; 1999. (In Russ.)]
  14. Белозерцева И.А., Сороковой А.А., Доржготов Д., и др. Почвы бассейна озера Байкал и их картографирование на территории России и Монголии // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. – 2014. – № 5–2. – С. 114–120. [Belozertseva IA, Sorokovoy AA, Dorzhgotov D, et al. Ground of pool of lake baikal and their mapping in territory of Russia and Mongolia. Mezhdunarodnyy zhurnal prikladnykh i fundamental’nykh issledovaniy. 2014;(5-2):114-120. (In Russ.)]
  15. Шишов Л.Л., Тонконогов В.Д., Лебедева И.И., Герасимова М.И. Классификация и диагностика почв России. – Смоленск: Ойкумена, 2004. [Shishov LL, Tonkonogov VD, Lebedeva II, Gerasimova MI. Klassifikatsiya i diagnostika pochv Rossii. Smolensk: Oykumena; 2004. (In Russ.)]
  16. V alverde A, Velazquez E, Fernandez-Santos F, et al. Phyllobacterium trifolii sp. nov., nodulating Trifolium and Lupinus in Spanish soils. Int J Syst Evol Microbiol. 2005;55(Pt 5):1985-1989. https://doi.org/10.1099/ijs.0.63551-0.
  17. Zamlynska K, Komaniecka I, Zebracki K, et al. Stu dies on lipid A isolated from Phyllobacterium trifolii PETP02(T) lipopolysaccharide. Antonie Van Leeuwenhoek. 2017;110(11):1413-1433. https://doi.org/10.1007/s10482-017-0872-0.
  18. Baimiev AK, Baimiev AK, Gubaidullin II, et al. Bacteria closely related to Phyllobacterium trifolii according to their 16S rRNA gene are discovered in the nodules of Hungarian sainfoin. Russ J Genet. 2007;43(5):587-90. https://doi.org/10.1134/S1022795407050146.
  19. Safronova VI, Sazanova AL, Kuznetsova IG, et al. Phyllobacterium zundukense sp. nov., a novel species of rhizobia isolated from root nodules of the legume species Oxytropis triphylla (Pall.) Pers. Int J Syst Evol Microbiol. 2018;68(5):1644-1651. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.002722.
  20. Mantelin S, Saux MF, Zakhia F, et al. Emended description of the genus Phyllobacterium and description of four novel species associated with plant roots: Phyllobacterium bourgognense sp. nov., Phyllobacterium ifriqiyense sp. nov., Phyllobacterium leguminum sp. nov. and Phyllobacterium brassicacearum sp. nov. Int J Syst Evol Microbiol. 2006;56(Pt 4):827-839. https://doi.org/10.1099/ijs.0.63911-0.
  21. Flores-Felix JD, Carro L, Velazquez E, et al. Phyllobacterium endophyticum sp. nov., isolated from nodules of Phaseolus vulgaris. Int J Syst Evol Microbiol. 2013;63(Pt 3): 821-6. https://doi.org/10.1099/ijs.0.038497-0.
  22. Sanchez M, Ramirez-Bahena MH, Peix A, et al. Phyllobacterium loti sp. nov. isolated from nodules of Lotus corniculatus. Int J Syst Evol Microbiol. 2014;64(Pt 3): 781-6. https://doi.org/10.1099/ijs.0.052993-0.
  23. Jiao YS, Yan H, Ji ZJ, et al. Phyllobacterium sophorae sp. nov., a symbiotic bacterium isolated from root nodules of Sophora flavescens. Int J Syst Evol Microbiol. 2015;65(Pt 2):399-406. https://doi.org/10.1099/ijs.0.067017-0.
  24. Zhao L, Deng Z, Yang W, et al. Diverse rhizobia associated with Sophora alopecuroides grown in different regions of Loess Plateau in China. Syst Appl Microbiol. 2010;33(8):468-477. https://doi.org/10.1016/j.syapm.2010.08.004.
  25. Zhang YJ, Zheng WT, Everall I, et al. Rhizobium anhuiense sp. nov., isolated from effective nodules of Vicia faba and Pisum sativum. Int J Syst Evol Microbiol. 2015;65(9):2960-7. https://doi.org/10.1099/ijs.0.000365.
  26. Li Y, Wang ET, Liu Y, et al. Rhizobium anhuiense as the predominant microsymbionts of Lathyrus maritimus along the Shandong Peninsula seashore line. Syst Appl Microbiol. 2016;39(6):384-390. https://doi.org/10.1016/j.syapm.2016.07.001.
  27. Gurusamy C, Bal A, McKenzie D. Nodulation of beach pea (Lathyrus maritimus [L.] Bigel.) induced by different strains of rhizobia. Can J Plant Sci. 1999;79(2):239-42. https://doi.org/10.4141/P98-039.
  28. Alves LM, de Souza JAM, Varani AM, Lemos EGM. The family Rhizobiaceae. In: The Prokaryotes. Ed. by E. Rosenberg, E.F. DeLong, S. Lory, et al. Berlin, Heidelberg: Springer; 2014.P. 419-437. https://doi.org/10.1007/978-3-642-30197-1_297.
  29. De Meyer SE, Willems A. Multilocus sequence analysis of Bosea species and description of Bosea lupini sp. nov., Bosea lathyri sp. nov. and Bosea robiniae sp. nov., isolated from legumes. Int J Syst Evol Microbiol. 2012;62(Pt 10):2505-10. https://doi.org/10.1099/ijs.0.035477-0.
  30. Сазанова А.Л., Кузнецова И.Г., Сафронова В.И., и др. Изучение генетического разнообразия микросимбионтов копеечника щетинистого Hedysarum gmelinii subsp. setigerum, произрастающего в Прибайкалье // Сельскохозяйственная биология. – 2017. – Т. 52. – № 5. – C. 1004–1011. [Sazanova AL, Kuznetsova IG, Safronova VI, et al. Study of the genetic diversity of microsymbionts isolated from Hedysarum gmelinii subsp. setigerum, growing in the Baikal lake region. Selskokhoziaistvennaia Biol. 2017;52(5):1004-1011. (In Russ.)]. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.5.1004rus.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Филогенетическое дерево, построенное на основании сравнительного анализа нуклеотидных последовательностей генов 16S рРНК изолятов, выделенных из клубеньков термопсиса ланцетного (Thermopsis lanceolata), а также представителей родственных видов Phyllobacterium и Rhizobium. Полученные изоляты обозначены жирным шрифтом. Типовые штаммы отмечены литерой Т. Кластеры I–III сформированы с участием изолятов Phyllobacterium, полученных в работе. Указаны уровни поддержки более 50 %

Скачать (83KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Филогенетическое дерево, построенное на основании сравнительного анализа нуклеотидных последовательностей генов atpD изолятов, выделенных из клубеньков термопсиса ланцетного (Thermopsis lanceolata), а также представителей родственных видов Phyllobacterium и Rhizobium. Полученные изоляты обозначены жирным шрифтом. Типовые штаммы отмечены литерой Т. Кластеры Iа, Ib, II и III сформированы с участием изолятов, полученных в работе. Указаны уровни поддержки более 50 %

Скачать (87KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Филогенетическое дерево, построенное на основании сравнительного анализа нуклеотидных последовательностей генов 16S рРНК изолятов, выделенных из клубеньков термопсиса ланцетного (Thermopsis lanceolata), а также представителей родственных видов Bosea. Полученные изоляты обозначены жирным шрифтом. Типовые штаммы отмечены литерой Т. Указаны уровни поддержки более 50 %

Скачать (82KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Филогенетическое дерево, построенное на основании сравнительного анализа нуклеотидных последовательностей генов atpD изолятов, выделенных из клубеньков термопсиса ланцетного (Thermopsis lanceolata), а также представителей родственных видов Bosea. Полученные изоляты обозначены жирным шрифтом. Типовые штаммы отмечены литерой Т. Указаны уровни поддержки более 30 %

Скачать (74KB)
Метаданные

© Карлов Д.С., Сазанова А.Л., Кузнецова И.Г., Сафронова В.И., Тихомирова Н.Ю., Попова Ж.П., Оследкин Ю.С., Верхозина А.В., Белимов А.А., 2019

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 


Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».