Наследование признаков резистентности к акарицидам в инбредных линиях обыкновенного паутинного клеща

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Дизруптивным отбором при инбредном разведении проведена селекция обыкновенного паутинного клеща на устойчивость к четырем инсектоакарицидам - диметоату, бифентрину, абамектину и бромпропилату. Показатели резистентности (ПР) клещей в семьях полученных линий определены, соответственно, 1000, 2600, 2000 и 2000-кратными. Распределение по уровню смертности семей потомства (F1) при скрещивании клещей резистентной и чувствительной линий и при возвратном анализирующем скрещивании (Fа) показало, что наследование признака резистентности к диметоату является моногенным и доминантным, к абамектину - дигенным и доминантным, а к бифентрину и бромпропилату - дигенным и не полностью рецессивным. Полученные показатели перекрестной резистентности к акарицидам различных химических классов свидетельствовали о наличии в геноме отселектированных линий клещей мутаций, обусловливающих их устойчивость к этим токсикантам.

Об авторах

Олег Вениаминович Сундуков

Всероссийский НИИ защиты растений

Email: Sunduckov.oleg@yandex.ru
к. б. н., старший научный сотрудник. Лаборатория экотоксикологии

Ирина Анатольевна Тулаева

Всероссийский НИИ защиты растений

Email: zubanov63@yandex.ru
к. б. н., научный сотрудник. Лаборатория экотоксикологии

Евгений Александрович Зубанов

Всероссийский НИИ защиты растений

Email: zubanov63@yandex.ru
научный сотрудник. Лаборатория экотоксикологии

Список литературы

  1. Беленький М. Л. (1959) Элементы количественной оценки фармакологического эффекта. Рига: АН ЛССР.
  2. Сундуков О. В. (2012) Этиология острой токсичности инсектоакарицидов и физиологические факторы, определяющие избирательность их действия на членистоногих. СПб.: Наука.
  3. Урбах В. Ю. (1964) Биометрические методы. М.: Наука.
  4. Bass Ch., Field L. M. (2011) Gene amplification and insecticide resistance. Pest Manag. Sci. V. 67(8): P. 886-890.
  5. Bloomquist J. R. (2003) Chloride channels as tools for developing selective insecticides. Arch. Insect Biochem. Physiol. V.54(4): P. 145-156.
  6. Burton M. J., Mellor I. R., Duce I. R. et al. (2011) Differential resistance of insect sodium channels with kdr mutations to deltamethrin and DDT. Insect Biochem. Mol. Biol. V. 41: P. 723-732.
  7. Clark J. M., Scott J. G., Campos F., Bloomquist J. R. (1995) Resistance to avermectins - extent, mechanisms and management implications. Annu. Rev. Entomol. V. 40: P. 1-30.
  8. Cui F., Lin Z., Wang H. et al. (2011) Two single mutations commonly cause qualitative change of nonspecific carboxylesterases in insects. Insect Biochem. Mol. Biol. V. 41: P. 1-8.
  9. Dermauw W., Ilias A., Riga M. et al. (2012) The cys-loop ligand-gated ion channel gene family of Tetranychus urticae: Implications for acaricide toxicology and novel mutation associaned with abamectin resistance. Insect Biochem. Mol. Biol. V. 42: P. 455-465.
  10. Devonshire A. L., Field L. M. (1991) Gene amplification and insecticide resistance. Annu. Rev. Entomol. V. 36: P. 1-23.
  11. Devorshak C., Roe R. M. (1998) The role of esterases in insecticide resistance. Rev. Toxicol. V. 2: P. 501-537.
  12. Feyereisen R. (2005) Insect cytochrome P450. Compreh. Molec. Insect Sci. V. 5: P. 1-77.
  13. Field L. M., Foster S. P. I. (2002) Amplified esterase genes and their relationship with insecticide resistance mechanisms in English field populations of the aphid, Myzus persicae (Sulzer). Pest Manag. Sci. V. 58(9): P. 889-894.
  14. Goh D. K. S., Anspaugh D. D., Motoyama N. et al. (1995) Isolation and characterization of an insecticide resistant associated esterase in the tobacco budworm Heliothios virescens (F.). Pest. Biochem. Physiol. V. 5: P. 192-204.
  15. Gunning R. V., Moores G. D., Jtwess Ph. et al. (2007) Use of pyrethroid analogues to identity key structural features for enhanced esterase resistance in Helicoverpa armigera (Hubner) (Lepidoptera: Noctuidae). Pest Manag. Sci. V. 63 (6): P. 569-575.
  16. Kwon D. H., Yoon K. S., Clark J. M., Lee S. H. (2010) A point mutation in a glutamate-gated chloride channel confers abamectin resistance in the two-spotted spider mite, Tetranychus urticae Koch. Insect Mol. Biol. V. 19: P. 583-591.
  17. Leeuwen T. van, Pottelberge S. van, Tirri L. (2005) Comparative acaricide susceptibility and detoxifying enzyme activities in field-collected resistant and susceptible strains of Tetranychus urticae. Pest Manag. Sci. V. 61(5): P. 499-507.
  18. Leeuwen T. van, Tirry L. (2007) Esterase-mediated bifenthrin resistance in a multiresistant strain of the two-spotted spider mite, Tetranychus urticae. Pest Manag. Sci. V. 63(2): P. 150-156.
  19. Leeuwen T. van, Vontas J., Tsagkarakou A. et al. (2010) Acaricide resistance mechanisms in the two-spotted spider mite Tetranychus urticae and other important Acari: A review. Insect Biochem. Mol. Biol. V. 40: P. 563-572.
  20. Li X. C., Schuler M. A., Berenbaum M. R. (2007) Molecular mechanisms of metabolic resistance to synthetic and natural xenobiotics. Annu. Rev. Entomol. V. 52: P. 231-253.
  21. Oakeshott J. G., Claudianos C., Campbell P. M. et al. (2005) Biochemical genetics and genomics of insect esterases. Compreh. Molec. Insect Sci. V. 5: P. 309-382.
  22. Park Y., Lee D., Taylor M. F.J. et al. (2000) A mutation Leu1029 to his in Heliothis virescens F. hscp sodium channel gene associated with a nerve-insensitivity mechanism of resistance to pyrethroid insecticides. Pest. Biochem. Physiol. V. 66: P. 1-8.
  23. Pottelberge S. van., Leeuwen T. van., Nauen R., Tirri L. (2009) Resistance mechanisms to mitochondrial electron transport inhibitors in a field-collected strain of Tetranychus urticae Koch. (Acari: Tetranychidae). Bull. Entomol. Res. V. 99(1): P. 23-31.
  24. Scott J. G. (1999) Cytochromes P450 and insecticide resistance. Insect Biochem. Mol. Biol. V. 29: P. 757-777.
  25. Shono T. (1985) Pyrethroid resistance: importance of kdr-type mechanism. J. Pest. Sci. V. 10(1): P. 141-146.
  26. Soderlund D. M. (2008) Pyrethroids, knockdown resistance and sodium channels. Pest Manag. Sci. V. 64(6): P. 610-616.
  27. Stumpf N., Nauen R. (2001) Cross-resistance, inheritance and biochemistry of mitochondrial electron transport inhibitor-acaricide resistance in Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae). J. Econ. Entomol. V. 94(4): P. 1577-1583.
  28. Šula J., Weyda F. (1983) Esterase polymorphism in several populations of the two-spotted spider mite, Tetranychus urticae Koch. Experientia. V. 39: P. 78-79.
  29. Zhao X., Salgado V. L. (2010) The role of GABA and glutamate receptors in susceptibility and resistance to chloride channel blocker insecticides. Pest. Biochem. Physiol. V. 97: P. 153-160.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Сундуков О.В., Тулаева И.А., Зубанов Е.А., 2014

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 


Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».