Бактериальные сообщества, формирующие микроэкосистему влагалища в норме и при бактериальном вагинозе
- Авторы: Назарова В.В.1, Шипицына Е.В.1, Шалепо К.В.1, Савичева А.М.1
-
Учреждения:
- ФГБНУ «НИИ АГиР им. Д.О. Отта»
- Выпуск: Том 66, № 6 (2017)
- Страницы: 30-43
- Раздел: Статьи
- URL: https://journal-vniispk.ru/jowd/article/view/7682
- DOI: https://doi.org/10.17816/JOWD66630-43
- ID: 7682
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Актуальность. Бактериальный вагиноз (БВ) — нарушение микробиоты влагалища, характеризующееся замещением лактобацилл анаэробными бактериями и способное оказывать неблагоприятное влияние на репродуктивное здоровье женщины. В развитие БВ вовлечен широкий спектр бактерий, существенно различающихся по своим свойствам. Группирование бактериальных сообществ влагалища в кластеры, или типы микробиоценоза, может способствовать пониманию механизмов патогенеза и разработке эффективных методов диагностики и терапии этого заболевания.
Цель — определение и сравнительный анализ кластеров бактериальных сообществ влагалища в норме и при БВ.
Материалы и методы. В исследовании участвовали женщины репродуктивного возраста. Для диагностики БВ использовали метод Нуджента. Микрофлору влагалища исследовали методом мультиплексной количественной ПЦР в реальном времени (тест Фемофлор-16). Для разделения бактериальных сообществ на группы применяли двухэтапный кластерный анализ. Анализ различий между кластерами проводили путем их попарного сравнения.
Результаты. Из 280 женщин, включенных в исследование, у 172 была выявлена нормальная микрофлора, у 27 — промежуточная микрофлора, у 81 — БВ. В кластерный анализ были включены 270 образцов, имевших валидные результаты при ПЦР-исследовании. Все бактериальные сообщества влагалища были сгруппированы в четыре кластера. Кластер 1 (n = 171) включал случаи, когда вагинальная микрофлора состояла преимущественно из лактобацилл. В кластер 2 (n = 11) вошли случаи доминирования аэробной микрофлоры: Enterobacteriaceae, Streptococcus и Staphylococcus. Кластеры 3 (n = 57) и 4 (n = 31) были связаны с БВ, к ним были отнесены случаи доминирования факультативно-анаэробной (Gardnerella vaginalis, Atopobium vaginae) и облигатно-анаэробной (Sneathia/Leptotrichia/Fusobacterium, Megasphaera/Veillonella/Dialister, Lachnobacterium/Clostridium) микрофлоры соответственно. Практически все случаи кластера 1 вошли в категорию нормальной микрофлоры по шкале Нуджента. Большинство бактериальных сообществ кластера 2 вошли в категорию промежуточной микрофлоры, кластера 3 — в категорию БВ с числом баллов 7 и 8, кластера 4 — в категорию БВ с числом баллов 9 и 10. Кластеры значительно различались между собой по значению рН влагалища, при этом самые высокие показатели наблюдались для кластера 4.
Заключение. Бактериальные сообщества влагалища группируются в четыре основных кластера, характеризующихся доминированием лактобацилл, аэробной, факультативно-анаэробной или облигатно-анаэробной микрофлоры. Описанные кластеры принадлежат разным категориям по шкале Нуджента и значительно различаются по значению рН влагалища.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Вероника Викторовна Назарова
ФГБНУ «НИИ АГиР им. Д.О. Отта»
Автор, ответственный за переписку.
Email: iagmail@ott.ru
врач-бактериолог лаборатории микробиологии
Россия, Санкт-ПетербургЕлена Васильевна Шипицына
ФГБНУ «НИИ АГиР им. Д.О. Отта»
Email: iagmail@ott.ru
д-р биол. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории микробиологии
Санкт-ПетербургКира Валентиновна Шалепо
ФГБНУ «НИИ АГиР им. Д.О. Отта»
Email: iagmail@ott.ru
старший научный сотрудник лаборатории микробиологии
Россия, Санкт-ПетербургАлевтина Михайловна Савичева
ФГБНУ «НИИ АГиР им. Д.О. Отта»
Email: savitcheva@mail.ru
д-р мед. наук, профессор, зав. лабораторией микробиологии
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Taylor BD, Darville T, Haggerty CL. Does bacterial vaginosis cause pelvic inflammatory disease. Sex Transm Dis. 2013;40(2):117-22. doi: 10.1097/OLQ.0b013e31827c5a5b.
- Donati L, Di Vico A, Nucci M, et al. Vaginal microbial flora and outcome of pregnancy. Arch Gynecol Obstet. 2010;281(4):589-600. doi: 10.1007/s00404-009-1318-3.
- Haggerty CL, Totten PA, Tang G, et al. Identification of novel microbes associated with pelvic inflammatory disease and infertility. Sex Transm Infect. 2016;92(6):441-6. doi: 10.1136/sextrans-2015-052285.
- Bradshaw CS, Morton AN, Hocking J, et al. High recurrence rates of bacterial vaginosis over the course of 12 months after oral metronidazole therapy and factors associated with recurrence. J Infect Dis. 2006;193:1478-86. doi: 10.1086/503780.
- Klebanoff MA, Schwebke JR, Zhang J, et al. Vulvo vaginal symptoms in women with bacterial vaginosis. Obstet Gynecol. 2004;104(2):267-272. doi: 10.1097/01.AOG.0000134783.98382.b0.
- Ling Z, Kong J, Liu F, et al. Molecular analysis of the diversity of vaginal microbiota associated with bacterial vaginosis. BMC Genomics. 2010;11(Sep7):488. doi: 10.1186/1471-2164-11-488.
- Nugent RP, Krohn MA, Hillier SL. Reliability of diagnosing bacterial vaginosis isimproved by a standardized method of gram stain interpretation. J Clin Microbiol. 1991;29:297-301.
- Amsel R, Totten PA, Spiegel CA, et al. Nonspecific vaginitis. Diagnostic criteria and microbial and epidemiologic associations. Am J Med. 1983;74:14-22. doi: 10.1016/0002-9343(83)91112-9.
- Назарова В.В., Шипицына Е.В., Герасимова Е.Н., Савичева А.М. Критерии диагностики бактериального вагиноза с использованием теста Фемо флор-16 // Журнал акушерства и женских болезней. – 2017. – Т. 66. – № 4. – С. 57–67. [Nazarova VV, Shipitsyna EV, Gerasimova EN, Savicheva AM. Criteria for diagnosis of bacterial vaginosis using the test Femoflor-16. Journal of Obstetrics and Women’s Diseases. 2017;66(4):57-67. (In Russ.)]. doi: 10.17816/JOWD66457-67.
- Ravel J, Gajer P, Abdo Z, et al. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci USA. 2011;108:S4680-7. doi: 10.1073/pnas.1002611107.
- Gajer P, Brotman RM, Bail G, et al. Temporal dynamics of the human vaginal microbiota. Science Translational Medicine. 2012;4. doi: 10.1126/scitranslmed.3003605.
- MacIntyre DA, Chandiramani M, Lee YS, et al. The vaginal microbiome during pregnancy and the postpartum period in a European population. Sci Rep. 2015;5:8988. doi: 10.1038/srep08988.
- Brotman RM, Shardell MD, Gajer P, et al. Interplay between the temporal dynamics of the vaginal microbiota and human papillomavirus detection. J Infect Dis. 2014;210(11):1723-33. doi: 10.1093/infdis/jiu330.
- Huang YE, Wang Y, He Y, et al. Homogeneity of the vaginal microbiome at the cervix, posterior fornix, and vaginal canal in pregnant Chinese women. Microb Ecol. 2015;69(2):407-14. doi: 10.1007/s00248-014-0487-1.
- Srinivasan S, Hoffman NG, Morgan MT, et al. Bacterial communities in women with bacterial vaginosis: high resolution phylogenetic analyses reveal relationships of microbiota to clinical criteria. PLOS One. 2012;7(6):e37818. doi: 10.1371/journal.pone.0037818.
- Dols JA, Molenaar D, van der Helm JJ, et al. Molecular assessment of bacterial vaginosis by Lactobacillus abundance and species diversity. BMC Infect Dis. 2016;16:180. doi: 10.1186/s12879-016-1513-3.
- Donders GG, Vereecken A, Bosmans E, et al. Definition of a type of abnormal vaginal flora that is distinct from bacterial vaginosis: aerobic vaginitis. BJOG. 2002;109(1):34-43. doi: 10.1111/j.1471-0528.2002.00432.x.
- Swidsinski A, Verstraelen H, Loening-Baucke V, et al. Presence of a polymicrobial endometrial biofilm in patients with bacterial vaginosis. PLOS one. 2013;8(1):e53997. doi: 10.1371/journal.pone.0053997.
- Patterson JL, Stull-Lane A, Girerd PH, Jefferson KK. Analysis of adherence, biofilm formation and cytotoxicity suggests a greater virulence potential of Gardnerella vaginalis relative to other bacterial-vaginosis-associated anaerobes. Microbiology. 2010;156:392-9. doi: 10.1099/mic.0.034280-0.
- Verstraelen H, Swidsinski A. The biofilm in bacterial vaginosis: implications for epidemiology, diagnosis and treatment. Curr Opin Infect Dis. 2013;26(1):86-9. doi: 10.1097/QCO.0b013e32835c20cd.
- Machado A, Cerca N. Influence of Biofilm Formation by Gardnerella vaginalis and Other Anaerobes on Bacterial Vaginosis. J Infect Dis. 2015;212(12):1856-61. doi: 10.1093/infdis/jiv338.
- Alves P, Castro J, Sousa C, et al. Gardnerella vaginalis outcompetes 29 other bacterial species isolated from BV patients in an in vitro biofilm formation model. J Infect Dis. 2014;210(4):593-6. doi: 10.1093/infdis/jiu131.
- Schellenberg JJ, Links MG, Hill JE, et al. Molecular definition of vaginal microbiota in East African commercial sex workers. Appl Environ Microbiol. 2011;77(12):4066-74. doi: 10.1128/AEM.02943-10.
- Ferris MJ, Masztal A, Aldridge KE, et al. Association of Atopobium vaginae, a recently described metronidazole resistant anaerobe, with bacterial vaginosis. BMC Infect Dis. 2004;4:5. doi: 10.1186/1471-2334-4-5.
- Hardy L, Jespers V, Abdellati S, De Baetselier I, et al. A fruitful alliance: the synergy between Atopobium vaginae and Gardnerella vaginalis in bacterial vaginosis-associated biofilm. Sex Transm Infect. 2016. pii: sextrans-2015-052475. doi: 10.1136/sextrans-2015-052475.
- Wade WG. The Genus Eubacterium and Related Genera. Procaryotes. 2006;4:823-35. doi: 10.1007/0-387-30744-3_28.
- Srinivasan S, Morgan MT, Fiedler TL, et al. Metabolic signatures of bacterial vaginosis. MBio. 2015;6(2). pii: e00204-15. doi: 10.1128/mBio.00204-15.
Дополнительные файлы
