Снижение спонтанной и индуцированной экспрессии СD203c базофилов после подкожной иммунотерапии аллергенами амброзии и полыни
- Авторы: Барычева Л.Ю.1, Душина Л.В.1,2, Масальский С.С.3,4, Смолкин Ю.С.3,4,5, Козьмова Н.А.1, Куропатникова Е.А.4,5
-
Учреждения:
- Ставропольский государственный медицинский университет
- Ставропольский краевой клинический консультативно-диагностический центр
- Ассоциация детских аллергологов и иммунологов России
- Научно-клинический консультативный центр аллергологии и иммунологии
- Академия постдипломного образования Федерального научно-клинического центра специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий
- Выпуск: Том 19, № 3 (2022)
- Страницы: 299-316
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://journal-vniispk.ru/raj/article/view/121716
- DOI: https://doi.org/10.36691/RJA1534
- ID: 121716
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Обоснование. Тест активации базофилов (basophil activation test, BAT) отражает представленность IgE на поверхности клетки и может быть инструментом мониторинга эффективности аллергенспецифической иммунотерапии. Вероятно, уровень спонтанного и индуцированного аллергеном BAT может изменяться после эффективной подкожной иммунотерапии, что имеет клиническое значение.
Цель ― определение маркеров активации базофилов у пациентов, сенсибилизированных к пыльце сорных трав, при проведении подкожной иммунотерапии.
Материалы и методы. Исследование в реальной клинической практике (2 года, 60 пациентов с аллергическим ринитом, которым проводилась подкожная иммунотерапия аллергенами сорных трав в течение двух сезонов). Определяли долю базофилов, экспрессирующих CD203c, спонтанно и после экспозиции с триггерным аллергеном. BAT выполняли до лечения, после первого и второго курсов предсезонной подкожной иммунотерапии (0, 3, 15-й мес лечения). Эффективность подкожной иммунотерапии оценивалась по динамике шкалы симптомов RTSS (Rhinoconjunctivitis total symptom score) и медикаментозной оценки DMS (Daily medical score).
Результаты. Подкожная иммунотерапия водно-солевыми экстрактами была эффективна: медианы RTSS у пациентов после двух курсов снизились с 13,0 [10,0; 15,0] до 4,5 [3,00; 7,25] баллов (p <0,001), оценка DMS ― с 2,0 [2,0; 2,0] до 1,0 [1,0; 2,0] балла (p <0,001). Спонтанный BAT оставался неизменным после первого курса аллергенспецифической иммунотерапии. Средние показатели ВАТ до терапии и после первого курса подкожной иммунотерапии не различались (8,15% [6,10; 11,9] и 9,0% [6,30; 12,0]). После второго курса лечения спонтанный BAT уменьшился (8,15% [6,10; 11,9] и 6,20% [4,27; 9,00], χ2=15,5, p <0,001). BAT, индуцированные аллергенами, достоверно снижались уже после первого курса лечения. Суммарное изменение в общей группе составило для BAT с амброзией после первого курса подкожной иммунотерапии 11,25% (CI 95% 7,10; 15,10), p <0,001. Суммарная разница в тесте индуцированного ВАТ к окончанию терапии достигла 8,63% (CI 95 5,30; 12,05), p <0,001. После первого курса терапии аллергенами полыни показатели индуцированного BAT снизились на 12,0% (CI 95% 6,95; 17,90), p <0,001, разница с первоначальными значениями после второго курса составила 9,67% (CI 95% 6,85; 15,90), p <0,001.
Заключение. Подкожная иммунотерапия аллергенами амброзии и полыни была эффективна. Изменение спонтанного и индуцированного BAT связано с положительным эффектом от аллергенспецифической иммунотерапии.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Людмила Юрьевна Барычева
Ставропольский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: for_ludmila@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0002-4069-0566
SPIN-код: 8946-3393
д.м.н., профессор
Россия, СтавропольЛюдмила Валентиновна Душина
Ставропольский государственный медицинский университет; Ставропольский краевой клинический консультативно-диагностический центр
Email: dushina.stv@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-5806-972X
SPIN-код: 3599-5095
к.м.н.
Россия, Ставрополь; СтавропольСергей Сергеевич Масальский
Ассоциация детских аллергологов и иммунологов России; Научно-клинический консультативный центр аллергологии и иммунологии
Email: masalsky85@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-2048-5709
SPIN-код: 1709-2182
к.м.н.
Россия, Москва; МоскваЮрий Соломонович Смолкин
Ассоциация детских аллергологов и иммунологов России; Научно-клинический консультативный центр аллергологии и иммунологии; Академия постдипломного образования Федерального научно-клинического центра специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий
Email: smolking@df.ru
ORCID iD: 0000-0001-7876-6258
SPIN-код: 7068-4939
д.м.н.
Россия, Москва; Москва; МоскваНаталья Александровна Козьмова
Ставропольский государственный медицинский университет
Email: kozmova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0971-5347
SPIN-код: 5236-9634
Россия, Ставрополь
Елена Андрияновна Куропатникова
Научно-клинический консультативный центр аллергологии и иммунологии; Академия постдипломного образования Федерального научно-клинического центра специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий
Email: Lenysionok@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5764-6441
SPIN-код: 2065-9023
Россия, Москва; Москва
Список литературы
- D’Amato G., Chong-Neto H.J., Monge Ortega O.P., et al. The effects of climate change on respiratory allergy and asthma induced by pollen and mold allergens // Allergy. 2020. Vol. 75, N 9. Р. 2219–2228. doi: 10.1111/all.14476
- Katelaris C.H., Beggs P.J. Climate change: allergens and allergic diseases // Intern Med J. 2018. Vol. 48, N 2. Р. 129–134. doi: 10.1111/imj.13699
- Damialis A., Traidl-Hoffmann C., Treudler R. Climate change and pollen allergies // Biodiversity Health Face Climate Change. Springer, Cham, 2019. Р. 47–66. doi: 10.1007/978-3-030-02318- 8_3
- Bergmann K.C., Heinrich J., Niemann H. Current status of allergy prevalence in Germany: position paper of the environmental medicine commission of the Robert Koch institute // Allergo J Int. 2016. Vol. 25. Р. 6–10. doi: 10.1007/s40629-016-0092-6
- Аллергология и клиническая иммунология. Клинические рекомендации / Под ред. Р.М. Хаитова, Н.И. Ильиной. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2019. 336 с.
- Трофименко Л., Ракова КА. Заболеваемость поллинозом в Ростове-на-Дону // Российская ринология. 2015. № 23. C. 36–39.
- Мачарадзе Д.Ш. Амброзийная аллергия. Особенности диагностики и лечения // Медицинский оппонент. 2019. Т. 2, № 6. C. 48–55.
- Pfaar O., Bonini S., Cardona V., et al. Perspectives in allergen immunotherapy: 2017 and beyond // Allergy. 2018. Vol. 73, Suppl 104. Р. 5–23. doi: 10.1111/all.13355
- Масальский С.С., Смолкин Ю.С. Антигистаминные препараты в терапии аллергического ринита // Аллергология и иммунология в педиатрии. 2018. Т. 2, № 53. C. 5–13. doi: 10.24411/2500-1175-2018-00006
- Балаболкин И.И. Поллиноз у детей и подростков: современные аспекты патогенеза и тенденции в терапии // Аллергология и иммунология в педиатрии. 2020. Т. 62, № 3. C. 6–14. doi: 10.24411/2500-1175-2020-10007
- Mueller R.S. Update on allergen immunotherapy // Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2019. Vol. 49, N 1. Р. 1–7. doi: 10.1016/j.cvsm.2018.08.001
- Drazdauskaitė G., Layhadi J.A., Shamji M.H. Mechanisms of allergen immunotherapy in allergic rhinitis // Curr Allergy Asthma Rep. 2020. Vol. 21, N 1. Р. 2. doi: 10.1007/s11882-020-00977-7
- Sindher S.B., Long A., Acharya S., et al. The use of biomarkers to predict aero-allergen and food immunotherapy responses // Clin Rev Allergy Immunol. 2018. Vol. 55, N 2. Р. 190–204. doi: 10.1007/s12016-018-8678-z
- Moingeon P. Biomarkers for allergen immunotherapy: a “panoromic” view // Immunol Allergy Clin North Am. 2016. Vol. 36, N 1. Р. 161–179. doi: 10.1016/j.iac.2015.08.004
- Matricardi P.M., Dramburg S., Potapova E., et al. Molecular diagnosis for allergen immunotherapy // J Allergy Clin Immunol. 2019. Vol. 143, N 3. Р. 831–843. doi: 10.1016/j.jaci.2018.12.1021
- Callery E.L., Keymer С., Barnes N.A., Rowbottom A.W. Component-resolved diagnostics in the clinical and laboratory investigation of allergy // Ann Clin Biochem. 2020. Vol. 57, N 1. Р. 26–35. doi: 10.1177/0004563219877434
- Feng M., Zeng X., Su Q. Allergen immunotherapy-induced immunoglobulin g4 reduces basophil activation in house dust mite-allergic asthma patients // J Front Cell Dev Biol. 2020. N 8. Р. 30. doi: 10.3389/fcell.2020.00030
- Barycheva L.Y., Dushina L.V., Medvedenko Y.N. Changes in basophil reactivity and synthesis of specific immunoglobulins e influenced by allergen-immunotherapy // Allergology Immun Pediatrics. 2020. Vol. 1, N 64. Р. 15–23. doi: 10.24412/2500-1175-2021-1-15-23
- Pfaar O., Demoly P., Gerth van Wijk R., et al.; European Academy of Allergy and Clinical Immunology. Recommendations for the standardization of clinical outcomes used in allergen immunotherapy trials for allergic rhinoconjunctivitis: an EAACI Position Paper // Allergy. 2014. Vol. 69, N 7. Р. 854–867. doi: 10.1111/all.12383
- Адо А.Д. Частная аллергология. Москва: Медицина, 1976. 510 c.
- Chen J., Zhou Y., Wang Y., et al. Specific immunoglobulin E and immunoglobulin G4 toward major allergens of house-dust mite during allergen-specific immunotherapy // Am J Rhinol Allergy. 2017. Vol. 31, N 3. Р. 156–160. doi: 10.2500/ajra.2017.31.4434
- Sahin E., Bafaqeeh S.A., Guven S.G, et al. Mechanism of action of allergen immunotherapy // Am J Rhinol Allergy. 2016. Vol. 30, N 5. Р. 1–3. doi: 10.2500/ajra.2016.30.4367
- Narisety S.D., Frischmeyer-Guerrerio P.A., Keet C.A., et al. A randomized, double-blind, placebo-controlled pilot study of sublingual versus oral immunotherapy for the treatment of peanut allergy // J Allergy Clin Immunol. 2015. Vol. 135, N 5. Р. 1275–1282. doi: 10.1016/j.jaci.2014.11.005
- Vickery B.P., Scurlock A.M., Kulis M., et al. Sustained unresponsiveness to peanut in subjects who have completed peanut oral immunotherapy // J Allergy Clin Immunol. 2014. Vol. 133, N 2. Р. 468–475. doi: 10.1016/j.jaci.2013.11.007
- Gorelik M., Narisety S.D., Guerrerio A.L., et al. Suppression of the immunologic response to peanut during immunotherapy is often transient // J Allergy Clin Immunol. 2015. Vol. 135, N 5. Р. 1283–1292. doi: 10.1016/j.jaci.2014.11.010
- Zidarn M., Kosnik M., Silar M., et al. Sustained effect of grass pollen subcutaneous immunotherapy on suppression of allergen-specific basophil response; a real-life, nonrandomized controlled study // Allergy. 2015. Vol. 70. Р. 547–555. doi: 10.1111/all.12581
- Liм Q., Li M., Yue W., et al. Predictive factors for clinical response to allergy immunotherapy in children with asthma and rhinitis // Int Arch Allergy Immunol. 2014. Vol. 164, N 3. Р. 210–217. doi: 10.1159/000365630
- Andorf S., Borres M.P., Block W., et al. Association of clinical reactivity with sensitization to allergen components in multifood-allergic children // J Allergy Clin Immunol Pract. 2017. Vol. 5, N 5. Р. 1325–1334. doi: 10.1016/j.jaip.2017.01.016
- Bidad K., Nawijn M.C., van Oosterhout A.J., et al. Basophil activation test in the diagnosis and monitoring of mastocytosis patients with wasp venom allergy on immunotherapy // Cytometry B Clin Cytom. 2014. Vol. 86, N 3. Р. 183–190. doi: 10.1002/cyto.b.21148
- Ozdemir S.K., Sin B.A., Guloglu D., et al. Short-term preseasonal immunotherapy: is early clinical efficacy related to the basophil response? // Int Arch Allergy Immunol. 2014. Vol. 164, N 3. Р. 237–245. doi: 10.1159/000365628
- Hoffmann H.J., Valovirta E., Pfaar O., et al. Novel approaches and perspectives in allergen immunotherapy // Allergy. 2017. Vol. 72, N 7. Р. 1022–1034. doi: 10.1111/all.13135
- Santos A.F., Alpan O., Hoffmann H. Basophil activation test: mechanisms and considerations for use in clinical trials and clinical practice // Allergy. 2021. Vol. 76, N 8. Р. 2420–2432. doi: 10.1111/all.14747
- Sainte-Laudy J., Touraine F., Cluzan D., Moudourou F. Follow-up of venom immunotherapy on flow cytometry and definition of a protective index // Int Arch Allergy Immunol. 2016. Vol. 170, N 4. Р. 243–250. doi: 10.1159/000449162
- Santos A.F., James L.K., Bahnson H.T., et al. IgG4 inhibits peanut-induced basophil and mast cell activation in peanut-tolerant children sensitized to peanut major allergens // J Allergy Clin Immunol. 2015. Vol. 135, N 5. Р. 1249–1256. doi: 10.1016/j.jaci.2015.01.012
- Kanagaratham C., El Ansari Y.S., Lewis O.L., Oettgen H.C. IgE and IgG antibodies as regulators of mast cell and basophil functions in food allergy // Front Immunol. 2020. Vol. 11. Р. 603050. doi: 10.3389/fimmu.2020.603050
- Plewako H., Wosinska K., Arvidsson M., et al. Basophil interleukin 4 and interleukin 13 production is suppressed during the early phase of rush immunotherapy // Int Arch Allergy Immunol. 2006. Vol. 141, N 4. Р. 346–353. doi: 10.1159/000095461
- Gokmen N.M., Ersoy R.O., Gulbahar O., et al. Desensitization effect of preseasonal seven-injection allergoid immunotherapy with olive pollen on basophil activation: the efficacy of olive pollen-specific preseasonal allergoid immunotherapy on basophils // Int Arch Allergy Immunol. 2012. Vol. 159, N 1. Р. 75–82. doi: 10.1159/000335251
- Schmid J.M., Würtzen P.A., Dahl R., Hoffmann H.J. Early improvement in basophil sensitivity predicts symptom relief with grass pollen immunotherapy // J Allergy Clin Immunol. 2014. Vol. 134, N 3. Р. 741–744. doi: 10.1016/j.jaci.2014.04.029
- Schmid J.M., Wurtzen P.A., Siddhuraj P., et al. Basophil sensitivity reflects long-term clinical outcome of subcutaneous immunotherapy in grass pollen-allergic patients // Allergy. 2021. Vol. 76, N 5. Р. 1528–1538. doi: 10.1111/all.14264
- Van Overtvelt L., Baron-Bodo V., Horiot S., et al. Changes in basophil activation during grass-pollen sublingual immunotherapy do not correlate with clinical efficacy // Allergy. 2011. Vol. 66, N 12. Р. 1530–1537. doi: 10.1111/j.1398-9995.2011.02696.x
- Czarnobilska E.M., Bulanda M., Śpiewak R. The usefulness of the basophil activation test in monitoring specific immunotherapy with house dust mite allergens // Postepy Dermatol Alergol. 2018. Vol. 35, N 1. Р. 93–98. doi: 10.5114/ada.2018.73169
- Kim S.H., Kim S.H., Chung S.J, et al. Changes in basophil activation during immunotherapy with house dust mite and mugwort in patients with allergic rhinitis // Asia Pac Allergy. 2018. Vol. 8, N 1. Р. 6. doi: 10.5415/apallergy.2018.8.e6
- Trabado R.A., Hijón C.C., Cantariño R.A., et al. Short-, intermediate-, and long-term changes in basophil reactivity induced by venom immunotherapy // Allergy Asthma Immunol Res. 2016. Vol. 8, N 5. Р. 412–420. doi: 10.4168/aair.2016.8.5.412
- Christensen S.K., Krohn I., Thuraiaiyah J., et al. Sequential allergen desensitization of basophils is non-specific and may involve p38 MAPK // Allergy. 2014. Vol. 69, N 10. Р. 1343–1349. doi: 10.1111/all.12482
- Keet C.A., Frischmeyer-Guerrerio P.A., Thyagarajan A., et al. The safety and efficacy of sublingual and oral immunotherapy for milk allergy // J Allergy Clin Immunol. 2012. Vol. 129, N 2. Р. 448–455. doi: 10.1016/j.jaci.2011.10.023
- Thyagarajan A., Jones S.M., Calatroni A., et al. Evidence of pathway-specific basophil anergy induced by peanut oral immunotherapy in peanut-allergic children // Clin Exp Allergy. 2012. Vol. 42, N 8. Р. 1197–1205. doi: 10.1111/j.1365-2222.2012.04028.x
- MacGlashan D.W. Syk expression and IgE-mediated histamine release in basophils as biomarkers for predicting the clinical efficacy of omalizumab // J Allergy Clin Immunol. 2017. Vol. 139, N 5. Р. 1680–1682. doi: 10.1016/j.jaci.2016.12.965
Дополнительные файлы
