Характеристика иммунного ландшафта при эндометриозе
- Авторы: Пацап О.И.1, Хабарова М.Б.2, Буянова А.А.3, Михалев С.А.3, Атякшин Д.А.1, Бабкина А.В.4, Михалева Л.М.5
-
Учреждения:
- Российский университет дружбы народов
- Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
- Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
- Городская клиническая онкологическая больница № 1
- Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского
- Выпуск: Том 78, № 1 (2023)
- Страницы: 5-10
- Раздел: АКТУАЛЬНЫЕ ВОПРОСЫ АКУШЕРСТВА И ГИНЕКОЛОГИИ
- URL: https://journal-vniispk.ru/vramn/article/view/126248
- DOI: https://doi.org/10.15690/vramn2259
- ID: 126248
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Обзор посвящен эндометриоз-ассоциированным иммунным клеткам и иммунным молекулам, анализу различных баз данных, а также полученным новым представлениям, теориям, биомаркерам, исследованиям в этой области. До настоящего времени было предпринято много попыток определения роли иммунных клеток и микроокружения в развитии эндометриоза. Тем не менее, несмотря на интенсивные исследования эндометриоза, роль клеток и молекул воспаления освещена не в полном объеме. Сегодня достаточно поверхностно изучены патобиология эндометриоза и роль в прогрессировании заболевания местной и системной воспалительной реакции. Не уточнены роль иммунной системы и ее значение в патогенезе эндометриоза, в том числе в случаях атипичного эндометриоза и эндометриоз-ассоциированных опухолей яичников. Вышеизложенное требует дальнейшего изучения данной проблемы с целью оптимизации патогенетически обоснованной современной терапии эндометриоза.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Ольга Игоревна Пацап
Российский университет дружбы народов
Email: Cleosnake@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-4620-3922
SPIN-код: 6460-1758
к.м.н.
Россия, МоскваМарина Борисовна Хабарова
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: khabarovaMB@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-3526-0366
к.м.н.
Россия, МоскваАнастасия Александровна Буянова
Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
Email: anastasiiabuianova97@gmail.com
SPIN-код: 5725-7792
Scopus Author ID: 57218589485
ResearcherId: AGU-7781-2022
лаборант
Россия, МоскваСергей Александрович Михалев
Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
Email: mikhalev@me.com
ORCID iD: 0000-0002-4822-0956
SPIN-код: 8105-7908
к.м.н.
Россия, МоскваДмитрий Андреевич Атякшин
Российский университет дружбы народов
Email: atyakshin-da@rudn.ru
ORCID iD: 0000-0002-8347-4556
SPIN-код: 3830-8152
д.м.н.
Россия, МоскваАлександра Владимировна Бабкина
Городская клиническая онкологическая больница № 1
Email: nikanorovaalex@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-5485-5803
SPIN-код: 3815-4541
врач-патологоанатом
Россия, МоскваЛюдмила Михайловна Михалева
Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского
Автор, ответственный за переписку.
Email: mikhalevalm@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-2052-914X
SPIN-код: 2086-7513
д.м.н., профессор, член-корреспондент РАН
Россия, МоскваСписок литературы
- Méar L, Herr M, Fauconnier A, et al. Polymorphisms and endometriosis: A systematic review and meta-analyses. Hum Reprod Update. 2020;26(1):73–102. doi: https://doi.org/10.1093/humupd/dmz034
- Agarwal SK, Chapron C, Giudice LC, et al. Clinical diagnosis of endometriosis: A call to action. Am J Obstet Gynecol. 2019;220(4):354.e1–354.e12. doi: https://doi.org/10.1016/j.ajog.2018.12.039
- Sampson JA. Peritoneal endometriosis due to the menstrual dissemination of endometrial tissue into the peritoneal cavity. Am J Obstet Gynecol. 1927;14:422–469. doi: https://doi.org/10.1016/s0002-9378(15)30003-x
- O DF, Roskams T, Van den Eynde K, et al. The Presence of Endometrial Cells in Peritoneal Fluid of Women with and without Endometriosis. Reprod Sci. 2017;24(2):242–251. doi: https://doi.org/10.1177/1933719116653677
- Jiang L, Zhang M, Wang S, et al. Common and specific gene signatures among three different endometriosis subtypes. Peer J. 2020;8:e8730. doi: https://doi.org/10.7717/peerj.8730
- Zubrzycka A, Migdalska-Sęk M, Jędrzejczyk S, et al. Circulating miRNAs Related to Epithelial-Mesenchymal Transitions (EMT) as the New Molecular Markers in Endometriosis. Curr Issues Mol Biol. 2021;43(2):900–916. doi: https://doi.org/.3390/cimb43020064
- Eggers JC, Martino V, Reinbold R, et al. microRNA miR-200b affects proliferation, invasiveness and stemness of endometriotic cells by targeting ZEB1, ZEB2 and KLF4. Reprod Biomed Online. 2016;32(4):434–445. doi: https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2015.12.013
- Pluchino N, Taylor HS. Endometriosis and Stem Cell Trafficking. Reprod Sci. 2016;23(12):1616–1619. doi: https://doi.org/10.1177/1933719116671219
- Laganà AS, Salmeri FM, Vitale SG, et al. Stem Cell Trafficking During Endometriosis: May Epigenetics Play a Pivotal Role? Reprod Sci. 2018;25(7):978–979. doi: https://doi.org/10.1177/1933719116687661
- Mashayekhi P, Noruzinia M, Zeinali S, et al. Endometriotic Mesenchymal Stem Cells Epigenetic Pathogenesis: Deregulation of miR-200b, miR-145, and let7b in a Functional Imbalanced Epigenetic Disease. Cell J. 2019;21(2):179–185. doi: https://doi.org/10.22074/cellj.2019.5903
- Acloque H, Adams MS, Fishwick K, et al. Epithelial-mesenchymal transitions: the importance of changing cell state in development and disease. J Clin Invest. 2009;119(6):1438–1449. doi: https://doi.org/10.1172/JCI38019
- Mikhaleva LM, Radzinsky VE, Orazov MR, et al. Current Knowledge on Endometriosis Etiology: A Systematic Review of Literature. Int J Womens Health. 2021;13:525–537. doi: https://doi.org/10.2147/IJWH.S306135
- Scheerer C, Bauer P, Chiantera V, et al. Characterization of endometriosis-associated immune cell infiltrates (EMaICI). Arch Gynecol Obstet. 2016;294(3):657–664. doi: https://doi.org/10.1007/s00404-016-4142-6
- Porpora MG, Scaramuzzino S, Sangiuliano C, et al. High prevalence of autoimmune diseases in women with endometriosis: A case-control study. Gynecol Endocrinol. 2020;36(4):356–359. doi: https://doi.org/10.1080/09513590.2019.1655727
- Shigesi N, Kvaskoff M, Kirtley S, et al. The association between endometriosis and autoimmune diseases: A systematic review and meta-analysis. Hum Reprod Update. 2019;25(4):486–503. doi: https://doi.org/10.1093/humupd/dmz014
- Crispim PCA, Jammal MP, Murta EFC, et al. Endometriosis: What is the Influence of Immune Cells? Immunol Invest. 2021;50(4):372–388. doi: https://doi.org/10.1080/08820139.2020.1764577
- Itoh F, Komohara Y, Takaishi K, et al. Possible involvement of signal transducer and activator of transcription-3 in cell-cell interactions of peritoneal macrophages and endometrial stromal cells in human endometriosis. Fertil Steril. 2013;99(6):1705–1713. doi: https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2013.01.133
- Shao J, Zhang B, Yu J-J, et al. Macrophages promote the growth and invasion of endometrial stromal cells by downregulating IL-24 in endometriosis. Reproduction. 2016;152(6):673–682. doi: https://doi.org/10.1530/REP-16-0278
- Chan RWS, Lee C-L, Ng EHY, et al. Co-culture with macrophages enhances the clonogenic and invasion activity of endometriotic stromal cells. Cell Prolif. 2017;50(3):e12330. doi: 10.1111/cpr.12330
- Takebayashi A, Kimura F, Kishi Y, et al. Subpopulations of macrophages within eutopic endometrium of endometriosis patients. Am J Reprod Immunol. 2015;73(3):221–231. doi: https://doi.org/10.1111/aji.12331
- Wang Y, Fu Y, Xue S, et al. The M2 polarization of macrophage induced by fractalkine in the endometriotic milieu enhances invasiveness of endometrial stromal cells. Int J Clin Exp Pathol. 2013;7(1):194–203.
- Cominelli A, Gaide Chevronnay HP, Lemoine P, et al. Matrix metalloproteinase-27 is expressed in CD163+/CD206+ M2 macrophages in the cycling human endometrium and in superficial endometriotic lesions. Mol Hum Reprod. 2014;20(8):767–775. doi: https://doi.org/10.1093/molehr/gau034
- Nematian SE, Mamillapalli R, Kadakia TS, et al. Systemic Inflammation Induced by microRNAs: Endometriosis-Derived Alterations in Circulating microRNA 125b-5p and Let-7b-5p Regulate Macrophage Cytokine Production. J Clin Endocrinol Metab. 2018;103(1):64–74. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2017-01199
- Zhang Z, Li H, Zhao Z, et al. miR-146b level and variants is associated with endometriosis related macrophages phenotype and plays a pivotal role in the endometriotic pain symptom. Taiwan J Obstet Gynecol. 2019;58(3):401–408. doi: https://doi.org/10.1016/j.tjog.2018.12.003
- Atiakshin D, Buchwalow I, Tiemann M. Mast cells and collagen fibrillogenesis. Histochem Cell Biol. 2020;154(1):21–40. doi: https://doi.org/10.1007/s00418-020-01875-9
- Atiakshin D, Buchwalow I, Samoilova V, et al. Tryptase as a polyfunctional component of mast cells. Histochem Cell Biol. 2018;149(5):461–477. doi: https://doi.org/10.1007/s00418-018-1659-8
- Atiakshin D, Buchwalow I, Tiemann M. Mast cell chymase: morphofunctional characteristics. Histochem Cell Biol. 2019;152(4):253–269. doi: https://doi.org/10.1007/s00418-019-01803-6
- Borelli V, Martinelli M, Luppi S, et al. Mast Cells in Peritoneal Fluid from Women with Endometriosis and Their Possible Role in Modulating Sperm Function. Front Physiol. 2020;10:1543. doi: https://doi.org/10.3389/fphys.2019.01543
- Pahl J, Cerwenka A. Tricking the balance: NK cells in anti-cancer immunity. Immunobiology. 2017;222(1):11–20. doi: https://doi.org/10.1016/j.imbio.2015.07.012
- Thiruchelvam U, Wingfield M, O’Farrelly C. Natural Killer Cells: Key Players in Endometriosis. Am J Reprod Immunol. 2015;74(4):291–301. doi: https://doi.org/10.1111/aji.12408
- Jeung IC, Chung Y-J, Chae B, et al. Effect of helixor A on natural killer cell activity in endometriosis. Int J Med Sci. 2015;12(1):42–47. doi: https://doi.org/10.7150/ijms.10076
- Montenegro ML, Ferriani RA, Basse PH. Exogenous activated NK cells enhance trafficking of endogenous NK cells to endometriotic lesions. BMC Immunol. 2015;16:51. doi: https://doi.org/10.1186/s12865-015-0105-0
- Tscharke DC, Croft NP, Doherty PC, et al. Sizing up the key determinants of the CD8(+) T-cell response. Nat Rev Immunol. 2015;15(11):705–716. doi: https://doi.org/10.1038/nri3905
- Hirahara K, Nakayama T. CD4+ T-cell subsets in inflammatory diseases: beyond the Th1/Th2 paradigm. Int Immunol. 2016;28(4):163–171. doi: https://doi.org/10.1093/intimm/dxw006
- Mier-Cabrera J, Jiménez-Zamudio L, García-Latorre E, et al. Quantitative and qualitative peritoneal immune profiles, T-cell apoptosis and oxidative stress-associated characteristics in women with minimal and mild endometriosis. BJOG. 2011;118(1):6–16. doi: https://doi.org/10.1111/j.1471-0528.2010.02777.x
- Takamura M, Koga K, Izumi G, et al. Simultaneous Detection and Evaluation of Four Subsets of CD4+ T Lymphocyte in Lesions and Peripheral Blood in Endometriosis. Am J Reprod Immunol. 2015;74(6):480–486. doi: https://doi.org/10.1111/aji.12426
- Gogacz M, Winkler I, Bojarska-Junak A, et al. Increased percentage of Th17 cells in peritoneal fluid is associated with severity of endometriosis. J Reprod Immunol. 2016;117:39–44. doi: https://doi.org/10.1016/j.jri.2016.04.289
- Wei C, Mei J, Tang L, et al. 1-Methyl-tryptophan attenuates regulatory T cells differentiation due to the inhibition of estrogen-IDO1-MRC2 axis in endometriosis. Cell Death Dis. 2016;7(12):e2489. doi: https://doi.org/10.1038/cddis.2016.375
- Tokmak A, Yildirim G, Öztaş E, et al. Use of Neutrophil-to-Lymphocyte Ratio Combined with CA-125 to Distinguish Endometriomas from Other Benign Ovarian Cysts. Reprod Sci. 2016;23(6):795–802. doi: https://doi.org/10.1177/1933719115620494
- Zhou J, Chern BSM, Barton-Smith P, et al. Peritoneal Fluid Cytokines Reveal New Insights of Endometriosis Subphenotypes. Int J Mol Sci. 2020;21(10):3515. doi: https://doi.org/10.3390/ijms21103515
Дополнительные файлы
