Теоретический и научно-практический электронный журнал «Современное садоводство»

С 2024 года журнал выходит на Национальной платформе периодических научных изданий РЦНИ, https://journals.rcsi.science/2312-6701/index

Свежий номер

2023 №4

ГЕНЕТИКА, СЕЛЕКЦИЯ, СОРТОИЗУЧЕНИЕ

Должикова М.А., Пикунова А.В., Павленко А.А., Голяева О.Д.

ДНК-паспортизация сортов смородины красной зарубежной селекции биоресурсной коллекции ВНИИСПК с применением SSR-маркеров

Посмотреть аннотацию

Должикова М.А., Пикунова А.В., Павленко А.А., Голяева О.Д. ДНК-паспортизация сортов смородины красной зарубежной селекции биоресурсной коллекции ВНИИСПК с применением SSR-маркеров // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 1-11. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0401

Смородина красная – важная ягодная культура, которая ценна своим витаминным составом, неприхотливостью в агротехнике, ее популярность набирает силу в век развития тенденции здорового витаминизированного питания человека. Молекулярно-генетические методы активно используются как весомое дополнение к классическим подходам изучения растительных ресурсов, в частности, в целях наиболее точной сортовой идентификации. ДНК-паспортизация – метод корректной идентификации исследуемого объекта по коротким генетическим маркерам в ДНК. Как показывают исследования в России и за рубежом наиболее распространенными и эффективными для целей паспортизации являются микросателлитные маркеры (SSR). Для данного типа маркеров характерны значительная аллельная изменчивость, кодоминантность, распределение по всему геному. В представленном исследовании было проведено генотипирование зарубежных сортов смородины красной биоресурсной коллекции ВНИИСПК с использованием микросателлитных ДНК-маркеров. В анализе были задействованы сорта: Батищевская, Белая крупная, Blanka, Boulogne Blanche, White cherry, Viksne, Warner`s Grape, Heros, Weisse Hollandische, Rote Hollandische, Gondouin, Дарница, North Star, Jonkheer van Tets, Cascad, Red Cross, Losan, Margaritar, Ненаглядная, Transparent Blanche, Пурпурная, Rovada, Rondom, Светлица, Святомихайловская, White grape, Чародейка. Было проанализировано 14 микросателлитных маркеров: g1-K04, g1-M07, e1-O01, Cra-489, Cra-531, e3-B02, g2-L17, g2-G12, g2-H21, e1-O21, g1-A01, g2-J08, g1-L12, gr2-J05. Маркеры были объединены в мультиплексные наборы: оптимальные сочетания SSR-маркеров позволили одновременно анализировать несколько локусов и получать хорошо интерпретируемые результаты при фрагментном анализе продуктов полимеразной цепной реакции (ПЦР). По результатам микросателлитного профилирования изучаемые сорта смородины красной показали сорт-специфические комбинации аллелей. В результате проведенного анализа для 25 сортов смородины красной по 14 микросателлитным локусам разработаны идентификационные формулы генотипов – генетические паспорта.

Ссылки

1. Воробьева М.М., Пошелюк А.Д. ДНК-паспортизация некоторых редких видов растений фауны Беларуси // Биотехнология: достижения и перспективы развития: материалы конференции. Пинск: ПолесГУ. 2021. С. 4-8. EDN: UDXGRM

2. Голяева О.Д., Панфилова О.В. Основные итоги селекции красной смородины во ВНИИСПК // Селекция и сорторазведение садовых культур. 2020. Т. 7, № 1-2. С. 49-51. EDN: HIBCUV

3. Голяева О.Д., Панфилова О.В. Генетическая коллекция смородины красной ВНИИСПК-результаты и перспективы использования // Плодоводство и ягодоводство России. 2016. Т. 47. С. 103-106. EDN: XCRKCP

4. Должикова М.А. Павленко А.А., Пикунова А.В., Голяева О.Д. Изучение полиморфизма микросателлитных локусов сортов смородины красной Ribes rubrum // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2021. № 4. С. 20-23. https://doi.org/10.30850/vrsn/2021/4/20-23. EDN: IGZZAT

5. Должикова М.А. ДНК-маркеры в изучении генома смородины красной // Современное садоводство. 2019. № 4. С. 1-15. https://doi.org/10.24411/2312-6701-2019-10401. EDN: GLDCCN

6. Межнина О.А., Урбанович О.Ю. Изучение генетического разнообразия представителей рода Ribes L., выращиваемых в Беларуси // Цитология и генетика. 2017. Т. 51, № 6. С. 32-40.

7. Пикунова А.В., Горюнова С.В., Горюнов Д.В., Должикова М.А., Голяева О.Д. Генетическая карта смородины красной (Ribes rubrum L.), построенная с применением SSR и SNP ДНК-маркеров // Генетика. 2020. Т. 56, № 11. С. 1340-1344. https://doi.org/10.31857/S0016675820100100. EDN: FAGZVX

8. Сухарева А.С., Кулуев Б.Р. ДНК-маркеры для генетического анализа сортов культурных растений // Биомика. 2018. Т. 10, № 1. С. 069-084. EDN: XRLWSL

9. Antonius K., Karhu S., Kaldmae H., et al. Development of the Northern European Ribes core collection based on a microsatellite (SSR) marker diversity analysis // Plant Genetic Resources. 2012. Vol. 10, № 1. P. 70-73. https://doi.org/10.1017/S1479262111000980

10. Brennan R., Jorgensen L., Woodhead M., Russell J. Development and characterization of SSR markers in Ribes species // Molecular Ecology Notes. 2002. Vol. 2, № 3. P. 327-330. https://doi.org/10.1046/j.1471-8286.2002.00233.x

11. Cavanna M., Torello Marinoni D., Beccaro G.L., Bounous G. Microsatellite-based evaluation of Ribes spp. germplasm // Genome. 2009. Vol. 52, № 10. P. 839-848. https://doi.org/10.1139/G09-057

12. Galli Z., et al. Molecular identification of commercial apple cultivars with microsatellite markers // HortScience. 2005. Vol. 40, № 7. P. 1974-1977. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.40.7.1974

13. Doyle J.J., Doyle J.L. Isolation of plant DNA from fresh tissue // Focus. 1990. Vol. 12, № 1. P. 13-15. https://doi.org/10.4236/ijoc.2019.92009

14. Palmieri L., Grando M.S., Sordo M., et al. Establishment of molecular markers for germplasm management in a worldwide provenance Ribes spp. collection // Plant Omics. 2013. Vol. 6, №3. P. 165-174. https://www.pomics.com/palimeri_6_3_2013_165_174.pdf

15. Russell J.R., Bayer M., Booth C. et al. Identification, utilisation and mapping of novel transcriptome-based markers from blackcurrant (Ribes nigrum) // BMC Plant Biol. 2011. № 11. P. 147. https://doi.org/10.1186/1471-2229-11-147

16. Russell J., Hackett C., Hedley P., et al. The use of genotyping by sequencing in blackcurrant (Ribes nigrum): developing high-resolution linkage maps in species without reference genome sequences // Molecular Breeding. 2014. № 33. P. 835–849. https://doi.org/10.1007/s11032-013-9996-8

Лыжин А.С., Лукъянчук И.В.

Использование ДНК-маркеров в селекции земляники садовой на устойчивость к патогенам (Sphaerotheca macularis, Colletotrichum acutatum, Phytophthora fragariae var. fragariae)

Посмотреть аннотацию

Лыжин А.С., Лукъянчук И.В. Использование ДНК-маркеров в селекции земляники садовой на устойчивость к патогенам (Sphaerotheca macularis, Colletotrichum acutatum, Phytophthora fragariae var. fragariae) // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 12-22. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0402

В статье приведены результаты использования диагностических ДНК-маркеров для идентификации локусов устойчивости к Sphaerotheca macularis, Colletotrichum acutatum и Phytophthora fragariae var. fragariae у 29 генотипов рода Fragaria L. Маркер IB535110 (локус 08 To-f устойчивости к мучнистой росе) выявлен у дикорастущих видов F. orientalis, F. moschata, сортов и отборных формы земляники садовой (F. × ananassa) Былинная, Сударушка, Troubadour, Red Gauntlet, Korona, Polka, 69-29 (Фейерверк × Былинная), 72-71 (Привлекательная × Былинная). Маркер STS-Rca2_240 (ген Rca2 устойчивости к антракнозу) выявлен у сортов земляники садовой Сударушка, Elianny, Troubadour и отборной формы межвидового происхождения 933-4 (F. virginiana subsp. platypetala × Рубиновый кулон). Маркер SCAR-R1A (ген Rpf1 устойчивости к фитофторозу) присутствует у дикорастущего вида F. virginiana subsp. platypetala, сортов и отборных формы земляники садовой Былинная, 69-29 (Фейерверк × Былинная), 72-24, 72-71 (Привлекательная × Былинная). Сорта Сударушка и Troubadour характеризуются сочетанием локусов 08 To-f и Rca2, сорт Былинная и отборные формы 69-29 (Фейерверк × Былинная), 72-71 (Привлекательная × Былинная) – локусов 08 To-f и Rpf1. Указанные генотипы являются перспективными исходными формами в селекции земляники на устойчивость к грибным патогенам.

Ссылки

1. Алейников А.Ф. Метод неинвазивного определения грибных болезней земляники садовой // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2018. Т. 48, № 3. С. 71-83. https://doi.org/10.26898/0370-8799-2018-3-10. EDN: XTLARF

2. Александров И.Н., Скрипка О.В., Дудченко И.П., Сурина Т.А., Никифоров С.В. Фитофтороз земляники // Защита и карантин растений. 2007. № 5. С. 32-34. EDN: LETVBN

3. Головин С.Е. Новые болезни земляники в средней полосе России // Плодоводство и ягодоводство России. 2014. Т. 38, № 1. С. 88-95. EDN: RQRCNJ

4. Дудченко И.П., Скрипка О.В., Копина М.Б. Вспышка антракноза земляники в Воронежской области // Современная микология в России: Материалы III Международного микологического форума. Т. 5. М.: Нац. акад. микол., 2015. С. 28-29.

5. Лыжин А.С., Лукъянчук И.В. Анализ сортов и форм земляники по гену устойчивости к антракнозу (Rca2) с использованием молекулярных маркеров // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2019. № 55. С. 1-11. https://doi.org/10.30679/2219-5335-2019-1-55-1-11. EDN: YTVOHZ

6. Лыжин А.С., Лукьянчук И.В. Анализ полиморфизма генотипов земляники (Fragaria L.) по гену устойчивости к фитофторозной корневой гнили Rpf1 для идентификации перспективных для селекции и садоводства форм // Вес. Нац. акад. навук Беларусі. Сер. аграр. навук. 2020. Т. 58, № 3. С. 311-320. https://doi.org/10.29235/1817-7204-2020-58-3-311-320. EDN: ULZPPA

7. Лыжин А.С., Лукъянчук И.В. Молекулярный скрининг перспективных отборных форм земляники по устойчивости к антракнозу (ген Rca2) // Таврический вестник аграрной науки. 2022. № 2. С. 66-73. EDN: KIDKRQ

8. Пикунова А.В. Оценка генетического разнообразия исходного и селекционного материала ягодных культур с помощью молекулярных маркёров. дисс. … канд. биол. наук. Санкт-Петербург, 2011. 153 с. EDN: QFZMLP

9. Холод Н.А., Семенова Л.Г. Восприимчивость сортов земляники садовой к мучнистой росе // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2014. № 25. С. 111-115. EDN: RTCZBZ

10. Храбров И.Э., Антонова О.Ю., Шаповалов М.И., Семенова Л.Г. Молекулярный скрининг сортовой коллекции земляники ВИР на наличие маркера гена устойчивости к антракнозной черной гнили Rca2 // Биотехнология и селекция растений. 2021. Т. 4, № 4. С. 15-24. https://doi.org/10.30901/2658-6266-2021-4-o3. EDN: LVGPMW

11. Ahmed M.F.A., El-Fiki I.A.I. Effect of biological control of root rot diseases of strawberry using Trichoderma spp. // Middle East Journal of Applied Sciences. 2017. Vol. 7(3). P. 482-492.

12. Denoyes-Rothan B., Lerceteau-Kohler E., Guérin G., Bosseur S., Bariac J., Martin E., Roudeillac P. QTL analysis for resistance to Colletotrichum acutatum and Phytophthora cactorum in octoploid strawberry (Fragaria × ananassa) // Acta Hort. 2004. Vol. 663. P. 147-151. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2004.663.19

13. Dirlewanger E., Graziano E., Joobeur T., Garriga-Caldere F., Cosson P., Howad W., Arus P. Comparative mapping and marker-assisted selection in Rosaceae fruit crops // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2004. Vol. 101(26). P. 9891-9896.https://doi.org/10.1073/pnas.0307937101

14. Haymes K.M., Van de Weg W.E., Arens P., Maas J.L., Vosman B., Den Nijs A.P.M. Development of SCAR Markers Linked to a Phytophthora fragariae Resistance Gene and Their Assessment in European and North American Strawberry Genotypes // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 2000. Vol. 125(3). P. 330-339. https://doi.org/10.21273/JASHS.125.3.330

15. Kalia R.K., Rai M.K., Kalia S., Singh, R., Dhawan, A.K. Microsatellite markers: an overview of the recent progress in plants // Euphytica. 2011. Vol. 177(3). P. 309-334. https://doi.org/10.1007/s10681-010-0286-9

16. Keldibekova M., Bezlepkina E., Zubkova M., Dolzhikova M. DNA-screening of strawberry cultivars and hybrids (Fragaria ananassa Duch.) for resistance to fungal diseases // Pakistan Journal of Botany. 2024. Vol. 56(2). P. 29. https://doi.org/10.30848/PJB2024-2(29)

17. Koishihara H., Enoki H., Muramatsu M., Nishimura S., Susumu Y.U.I., Honjo M. Marker associated with powdery mildew resistance in plant of genus Fragaria and use thereof. U.S. Patent No. 10,724,093. Washington, DC: U.S. Patent and Trademark Office. 2020.

18. Lerceteau-Kohler E., Roudeillac P., Markocic M., Guerin G., Praud K., Denoyes-Rothan B. The use of molecular markers for durable resistance breeding in the cultivated strawberry (Fragaria × ananassa) // Acta Hort. 2002. Vol. 567(2). P. 615-618. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2002.567.132

19. Lerceteau-Kohler E., Guerin G., Denoyes-Rothan B. Identification of SCAR markers linked to Rca2 anthracnose resistance gene and their assessment in strawberry germplasm // Theor. Appl. Genet. 2005. Vol. 111. P. 862-870. https://doi.org/10.1007/s00122-005-0008-1

20. Lifshitz C., David N., Shalit N., Slotzky S., Tanami Z., Elad Y., Dai N. Inheritance of powdery mildew resistance in strawberry lines from the Israeli germplasm collection // NASS/NASGA Proceedings. 2007. P. 74-76.

21. Luk’yanchuk I.V., Lyzhin A.S., Kozlova I.I. Analysis of strawberry genetic collection (Fragaria L.) for Rca2 and Rpf1 genes with molecular markers // Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2018. Vol. 22, No. 7. P. 795-799. https://doi.org/10.18699/VJ18.423. EDN: YMZLJJ

22. Nelson M.D., Gubler W.D., Shaw D.V. Inheritance of powdery mildew resistance in greenhouse-grown versus field-grown California strawberry progenies // Phytopathology. 1995. Vol. 85(4). P. 421-424.

23. Njuguna W. Development and use of molecular tools in Fragaria: PhD thesis. Oregon State University, 2010.

24. Sturzeanu M., Coman M., Ciuca M., Ancu I., Cristina D., Turcu A.G. Molecular characterization of allelic status of the Rpf1 and Rca2 genes in six cultivars of strawberries // Acta Horticulturae. 2016. Vol. 1139. P. 107-112. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2016.1139.19

25. Sturzeanu M., Ciuca M., Cristina D. Turcu A.G. Use of RAPD and SCAR markers for identification of strawberry genotypes with red stele resistance genes Rpf1 and fruit rot resistance genes Rca2 in the hybrid progenies // Acta Horticulturae. 2021. Vol. 1309. P. 93-100. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2021.1309.15

26. Whitaker V.M. Applications of molecular markers in strawberry // Journal of Berry Research. 2011. Vol. 1. P. 115-127. https://doi.org/10.3233/BR-2011-013

Макаркина М.А., Седов Е.Н., Ветрова О.А.

Оценка и отбор сортов яблони для селекции на повышенное содержание фенольных соединений в плодах

Посмотреть аннотацию

Макаркина М.А., Седов Е.Н., Ветрова О.А. Оценка и отбор сортов яблони для селекции на повышенное содержание фенольных соединений в плодах // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 23-35. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0403

Создание новых сортов яблони с улучшенным химическим составом плодов – одно из приоритетных направлений селекционной программы Всероссийского НИИ селекции плодовых культур. Важнейшим показателем, обуславливающим антиоксидантную активность яблок, являются фенольные соединения. В статье представлено многолетнее исследование 75 сортов яблони по содержанию в плодах Р-активных катехинов и общего количества фенольных соединений. Выделены генотипы различных сроков созревания, различного происхождения, иммунные (Rvi6) и устойчивые (Rvi5) к парше, имеющие диплоидный (2х) и триплодный (3х) набор хромосом, сильнорослые и интенсивного типа (ген Co), в качестве источников изучаемых признаков. Наивысший показатель содержания катехинов в плодах (185,9±18,8 мг/100 г) отмечен по группе сортов осеннего срока созревания, лучшие из них: Соковинка, Славянин, Память Исаева, Зарянка, Орловский пионер, полученные от скрещивания Антоновка краснобочка × SR0523 (159,0…288,0 мг/100 г). Из сортов летнего срока созревания выделены: Желанное, Орловим, Раннее алое, Юбиляр (152,0…170,0 мг/100 г), зимнего срока созревания – Курнаковское, Олимпийское, Поэзия, Свежесть, Бежин луг, Куликовское, Старт, Здоровье, Академик Савельев, Праздничное, Орловская заря, Памяти Блынского, Вита, Марс, Имрус, Память Семакину, Чистотел, Кандиль орловский, Утренняя звезда, (161,2…353,5 мг/100 г). В качестве источников общего количества фенольных соединений (более 400,0 мг/100 г) отобраны и более детально проанализированы следующие сорта: с геном Rvi6 – Старт, Зарянка, Ивановское, Имрус, Орловское полесье, Здоровье, Болотовское, Памяти Хитрово, Кандиль орловский; с геном Rvi5 – Орловский пионер и Чистотел; триплоиды – Память Семакину, Бежин луг, Тургеневское, Марс, Орловский партизан, Тренер Петров, Патриот, Августа (404,0…623,9 мг/100 г), из них у сортов Марс и Тренер Петров присутствует ген Rvi6.

Ссылки

1. Акимов М.Ю., Макаров В.Н., Жбанова Е.В. Роль плодов и ягод в обеспечении человека жизненно важными биологически активными веществами // Достижения науки и техники АПК. 2019. Т. 33, № 2. С. 56-60. https://doi.org/10.24411/0235-2451-2019-10214. EDN: ZBALUD

2. Атажанова Е.В., Лукичева Л.А. Анализ состояния и мировые тенденции выращивания и селекции яблони // Биология растений и садоводство: теория, инновации. 2021. № 3. С. 76-85. https://doi.org/10.36305/2712-7788-2021-3-160-76-85. EDN: BINFMM

3. Егоров Е.А., Шадрина Ж.А., Кочьян Г.А. Государственное регулирование рынка плодовой продукции как фактор обеспечения устойчивости отраслевого производства // Садоводство и виноградарство. 2018. № 3. С. 11-15. https://doi.org/10.25556/VSTISP.2018.3.14168. EDN: XUBBNR

4. Ермаков А.И., Арасимович В.Е., Ярош Н.П., Перуанский Ю.В., Луковникова Г.А., Иконникова М.И. Методы биохимического исследования растений / под ред. А.И. Ермакова. Ленинград: Агропромиздат, 1987. 430 с.

5. Кузичева Н.Ю. Стратегические ориентиры развития садоводства // Наука и Образование. 2022. Т. 5, № 2. EDN: OUVWGG

6. Онищенко К.В., Белоус О.Г. Анализ основных направлений в возделывании яблони (литературный обзор) // Субтропическое и декоративное садоводство. 2019. № 68. С. 137-146. https://doi.org/10.31360/2225-3068-2019-68-137-146. EDN: TOZJHJ

7. Самородова-Бианки Г.Б., Стрельцина С.А. Исследование биологически активных веществ плодовых культур: методические указания. Л., 1989. С. 21-23.

8. Седов Е.Н. Селекция и новые сорта яблони. Орел: ВНИИСПК, 2011. 624 с. EDN: OKGZCH

9. Седов Е.Н., Седова З.А., Стрельцина С.А. Селекция на продуктивность и качество продукции // Программа и методика селекции плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под ред. Е.Н. Седова. Орел: ВНИИСПК, 1995. С. 48-57. EDN: EQWEWS

10. Aguilera Y., Martin-Cabrejas M.A., Gonzalez de Mejia E. Phenolic compounds in fruits and beverages consumed as part of the mediterranean diet: their role in prevention of chronic diseases // Phytochemistry Reviews. 2016. Vol. 15, N 3. P 405-423. https://doi.org/10.1007/s11101-015-9443-z

11. Alberti A., Zielinski A.F., Zardo D.M., Demiate I.M., Nogueira A.., Mafra L.I. Optimisation of the extraction of phenolic compounds from apples using response surface methodology // Food Chemistry. 2014. Vol. 149. P.151-158. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2013.10.086

12. Amaki K., Saito E., Taniguchi K., Joshta K., Murata M. Role of chlorogenic acid quinone and interaction of chlorogenic acid quinone and catechins in the enzymatic browning of apple // Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. 2011. Vol. 75, N 5. P. 829-832. https://doi.org/10.1271/bbb.100444

13. Boyer J., Liu R.H. Apple phytochemicals and their health benefits // Nutrition Journal. 2004. Vol. 3. P. 5. https://doi.org/10.1186/1475-2891-3-5

14. Feng S., Yi J., Li X., Wu X., Zhao Y., Ma Y.B.J. Systematic review of phenolic compounds in apple fruits: compositions, distribution, absorption, metabolism, and processing stability // Journal of agricultural and food chemistry. 2021. Vol. 69, N 1. P 7-27. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.0c05481

15. Francini A., Sebastiani L. Phenolic compounds in apple (Malus x domestica Borkh.): compounds characterization and stability during postharvest and after processing // Antioxidants. 2013. Vol. 2, N 3. P. 181-193. https://doi.org/10.3390/antiox2030181

16. Hyson D.A. A comprehensive review of apples and apple components and their relationship to human health // Advances in nutrition. 2011. Vol. 2(5). P 408-420. https://doi.org/10.3945/an.111.000513

17. Jakobek L, Istuk J, Barron AR, Matic P. Bioactive phenolic compounds from apples during simulated in vitro gastrointestinal digestion: kinetics of their release // Applied sciences. 2023. Vol. 13, N 14. P. 8434. https://doi.org/10.3390/app13148434

18. Kalinowska M., Bielawska A., Lewandowska-Siwkiewicz H., Priebe W., Lewandowski W. Apples: content of phenolic compounds vs. variety, part of apple and cultivation model, extraction of phenolic compounds, biological properties // Plant physiology and biochemistry. 2014. Vol. 84. P. 169-188. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2014.09.006

19. Korban S.S. Apples: role of nutraceutical compounds // Compendium of crop genome designing for nutraceuticals / ed. Kole C. Singapore: Springer, 2023. P. 1-56. https://doi.org/10.1007/978-981-19-3627-2_34-1

20. Li N., Shi J., Wang K. Profile and antioxidant activity of phenolic extracts from 10 crabapples (Malus wild species) // Journal agricultural and food chemistry. 2014. Vol. 62, N 3. P 574-581. https://doi.org/10.1021/jf404542d

21. Liaudanskas M., Viskelis P., Kviklys D., Raudonis R., Janulis V. A comparative study of phenolic content in apple fruits // International journal of food properties. 2015. Vol. 18, N 5. P. 945-953. https://doi.org/10.1080/10942912.2014.911311

22. Lima G., Vianello F., Correa C., Campos R., Borguini M. Polyphenols in fruits and vegetables and its effect on human health // Food and nutrition sciences. 2014. Vol. 5, N 11. P. 1065-1082. http://dx.doi.org/10.4236/fns.2014.511117

23. Liu R.H. Dietary bioactive compounds and their health implications // Journal food science. 2013. Vol. 78, N s1. P. 18-25. https://doi.org/10.1111/1750-3841.12101

24. Mignard P., Begueria S., Reig G., Font i Forcada C., Moreno M.A., Genetic origin and climate determine fruit quality and antioxidant traits on apple (Malus x domestica Borkh) // Scientia horticulturae. 2021. Vol. 285. P. 110142. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2021.110142

25. Panzella L., Petriccione M., Rega P., Scortichini M., Napolitano A. A reappraisal of traditional apple cultivars from Southern Italy as a rich source of phenols with superior antioxidant activity // Food chemistry. 2013. Vol. 140, N 4. P. 672-679. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2013.02.121

26. Raudonea L., Raudonis R., Liaudanskas M., Janulis V., Viskelis P. Phenolic antioxidant profiles in the whole fruit, flesh and peel of apple cultivars grown in Lithuania // Scientia horticulturae. 2017. Vol. 216 P. 186-192. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2017.01.005

27. Rodriguez-Mateos A., Vauzour D., Krueger C.G., Shanmuganayagam D., Reed J., Calani L., Mena P., Del Rio D., Crozier A. Bioavailability, bioactivity and impact on health of dietary flavonoids and related compounds: an update // Archives of Toxicology. 2014. Vol. 88, N 10. P. 1803-1853. https://doi.org/10.1007/s00204-014-1330-7

Киселева Е.Н., Раченко М.А., Раченко А.М.

Селекционная оценка сеянцев малины ремонтантной по основным биологическим и хозяйственным показателям

Посмотреть аннотацию

Киселева Е.Н., Раченко М.А., Раченко А.М. Селекционная оценка сеянцев малины ремонтантной по основным биологическим и хозяйственным показателям // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 36-47. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0404

В статье приведены результаты четырехлетних (2019…2022) исследований сеянцев малины ремонтантной, полученных от свободного опыления. Отбор был проведен по признакам: шиповатость, раннеспелость, штамбовость, повреждаемость грибными инфекциями. Проведена сравнительная оценка массы и размера плодов выделенных сеянцев и родительской формы. В качестве родительских форм были выбраны следующие сорта, успешно возделываемые в регионе: Оранжевое чудо, Геракл, Рубиновое ожерелье, Пингвин, Жар птица, Золотые купола, Евразия и формы: 37-15-4, 32-151-1 и 1-220-1. За четыре года было получено более 170 сеянцев ремонтантной малины от свободного опыления, из которых 105 проявили ремонтантность. Исследования проводили согласно программам сортоизучения и селекции плодовых, ягодных и орехоплодных культур. Сеянцы, полученные от свободного опыления сортов Геракл, Оранжевое чудо, формы 1-220-1 в первую зиму после высадки перезимовали на 100%, сортов Рубиновое ожерелье, Золотые купола, Евразия, Пингвин, формы 32-151-1 и 37-15-4 перезимовали на 80…93%. Низкий процент выживших растений наблюдался у растений, полученных от свободного опыления сорта Жар птица (менее 17%). Наибольшее количество раннеспелых образцов отмечено среди сеянцев, полученных от свободного опыления сорта Золотые купола. У 26,6 % образцов был выявлен этот признак. Наибольшее количество штамбовых растений выявлено у гибридов в потомстве сортов Евразия и Пингвин (50 и 53,3% соответственно). У сеянцев сорта Оранжевое чудо полученных от свободного опыления штамбовых растений отмечено менее 10%. Более 50% сеянцев, полученных от свободного опыления сортов Геракл, Рубиновое ожерелье, Пингвин, Евразия и форм 37-15-4 и 32-151-1 имели на стеблях жесткие шипы. Немногим более 19 % сортообразцов имели гладкий стебель. Тонкие, длинные шипы на поверхности стеблей были у 32% анализируемых сеянцев. Наибольший процент стеблей с волосовидными шипами имели сеянцы, полученных от свободного опыления сортов Золотые купола, Жар-птица, Оранжевое чудо. В результате отбора получены раннеспелые и среднеспелые генотипы ремонтантной малины со штамбовым кустом и со средне- и слабошиповатыми побегами.

Ссылки

1. Кичина В.В. Генетика и селекция ягодных культур. М.: Колос, 1984. 278 с.

2. Казаков И.В, Евдокименко С.Н. Ремонтантная малина // Наука и жизнь. 2007. № 9. С. 111-116.

3. Киселева Е.Н., Раченко М.А., Раченко А.М., Камышова Л.Е. Биолого-хозяйственные особенности ремонтантной малины в условиях юго-восточной лесостепной зоны Иркутской области // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2021. № 1. С. 33-36. https://doi.org/10.30850/vrsn/2021/1/33-36. EDN: PMGQGJ

4. Легкая Л.В., Дмитриева А.М. Селекционная оценка потомства малины по основным хозяйственным показателям // Плодоводство. 2010. Т. 22. С. 195-200.

5. Легкая Л.В., Дмитриева А.М., Емельянова О.В. Итоги изучения сортов малины летнего срока созревания // Плодоводство. 2011. Т. 23. С. 235-239.

6. Павлова Е.В., Моторина В.А., Красильникова Е.В., Коковкина С.В., Тарабукина Т.В. Особенности развития сортов ремонтантной малины в природно-климатических условиях Республики Коми // Известия Коми научного центра УрО РАН. 2021. № 1. С. 29-36. https://doi.org/10.19110/1994-5655-2021-1-29-36. EDN: CXYMMZ

7. Подорожный В.Н., Пиянина Н.А. Совершенствование сортимента ремонтантной малины для Северо-Кавказского региона РФ на основе использования биологического потенциала коллекций ВИР // Биотехнология и селекция растений. 2021. Т. 4, № 1. С. 13-24. https://doi.org/10.30901/2658-6266-2021-1-o2. EDN: EEHHYZ

8. Казаков И.В. Малина. // Помология. Т. 5. Земляника. Малина. Орехоплодные и редкие культуры / под общ. ред. Е. Н. Седова. Орел: ВНИИСПК, 2014. С. 97.

9. Кичина В.В., Казаков И.В., Грюнер Л.А. Селекция малины и ежевики // Программа и методика селекции плодовых, ягодных и орехоплодных культур / Под ред. Е.Н. Седова. Орел: ВНИИСПК, 1995. С. 368-386. EDN: EFSXZI

10. Блинова Е.Е., Огольцова Т.П. Дисперсионный анализ // Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под ред. Е.Н Седова, Т.П. Огольцовой. Орел: ВНИИСПК, 1999. С. 545-573. EDN: YHAQIT

11. Убугунов Л.Л., Белозерцева И.А., Убугунова В.И., Сорокова А.А. Районирование почв бассейна озера Байкал: экологический подход // Природа внутренней Азии. 2019. № 2. С.40-59. https://doi.org/10.18101/2542-0623-2019-2-40-59. EDN: OGKMIM

12. Хохрякова Т.М. и др. Изучение устойчивости плодовых, ягодных и декоративных культур к заболеваниям: метод. указ. Л.: ВИР, 1972. 122 с.

13. Шарафутдинова Е.И., Данилова А.А. Перспективы селекции малины // Плодоводство и ягодоводство России. 2009. Т. 22, № 2. С. 377-380. EDN: KXWPCR

14. Foster T.M., Bassil N.V., Dossett M., Worthington M.L., Graham J. Genetic and genomic resources for Rubus breeding: a roadmap for the future // Horticulture Research. 2019. Vol. 6. Р. 116. https://doi.org/10.1038/s41438-019-0199-2

Савельева Н.Н., Юшков А.Н., Земисов А.С., Чивилев В.В., Богданов Р.Е., Борзых Н.В.

Перспективные генотипы фундука из коллекции ФНЦ им И.В. Мичурина для использования в селекции

Посмотреть аннотацию

Савельева Н.Н., Юшков А.Н., Земисов А.С., Чивилев В.В., Богданов Р.Е., Борзых Н.В. Перспективные генотипы фундука из коллекции ФНЦ им И.В. Мичурина для использования в селекции // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 48-54. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0405

В работе представлены результаты исследований по некоторым направлениям селекции фундука в ФНЦ им. И.В. Мичурина. В мире развивается тенденция к здоровому питанию, которое наряду с фруктами включает также и орехи. Россия располагает богатой территорией, пригодной для выращивания фундука. Учитывая дефицит ореха на внутреннем рынке, можно утверждать, что есть огромный потенциал его производства для внутреннего потребления и экспорта. Таким образом, исследования, способствующие развитию селекции фундука являются перспективными. Работа проведена в селекционно-генетическом центре (ВНИИГиСПР им. И.В. Мичурина), который с 2016 года входит в состав Федерального научного центра им. И.В. Мичурина (г. Мичуринск) с 2017 по 2022 гг. Исследования выполнены по общепринятым методикам. Приведены показатели по морозостойкости, продуктивности и силе роста шести сортов ореха. Коллекция фундука селекционно-генетического центра (ВНИИГиСПР), представленная 60 сортами и формами, относящимися к видам Corylus avellana L. и Corylus pontica C. (Koch.), позволяет вести селекцию по многим направлениям. Посадочный материал отобран академиком РАН Савельевым Н.И. и кандидатом с.-х. наук Чивилевым В.В. Установлено, что морозостойкость сортов Щелкунчик, Московский рубин, Академик Яблоков вполне достаточна для выращивания в ЦЧР (поражение древесины – 1,1…1,6 балла, кора и камбий практически не пострадали). Высокая продуктивность, 5,3 кг и 4,2 кг орехов на растение, отмечена у сортов Щелкунчик и Академик Яблоков соответственно. Сорт Щелкунчик лидирует по продуктивности, морозостойкости и имеет компактную форму кроны. Отмеченные сорта рекомендуется использовать в дальнейшей селекции.

Ссылки

1. Козловская З.А., Ярмолич С.А., Якимович О.А., Гашенко Т.А., Кондратенок Ю.Г., Таранов А.А., Васеха В.В., Васильева М.Н., Матвеев В.А., Полубятко И.Г., Рудницкая Н.Л., Устинов В.Н. Генетические основы и методика селекции плодовых культур и винограда. Минск: Беларуская навука, 2019. 249 с. EDN: RDECYE

2. Кудашева Р.Ф. Селекция лещины // Лесное хозяйство, научная информация ВНИИЛМ. 1962. № 1.

3. Мичурин И.В. Сочинения. Т. IV. М., Огиз,1948.

4. Савельева Н.Н., Чивилев В.В., Юшков А.Н., Земисов А.С., Борзых Н.В., Богданов Р.Е. Селекция фундука в Федеральном научном центре им. И.В. Мичурина // Роль сорта в современном садоводстве: материалы конференции. Воронеж: Кварта, 2019. С. 244-247. EDN: SSCULS

5. Савельева Н.Н., Юшков А.Н., Земисов А.С., Чивилев В.В., Богданов Р.Е., Борзых Н.В. Продуктивность сортов фундука в Федеральном научном центре им. И. В. Мичурина // Агроэкологические аспекты устойчивого развития АПК : материалы XVIII конф. Брянск, 2021. Ч. 3. С. 194-199. EDN: MXGDEK

6. Луговской А.П., Махно В.Г., Денисов В.П. Орехоплодные культуры // Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под ред. Е.Н. Седова, Т.П. Огольцовой. Орел: ВНИИСПК, 1999. С. 493 -534.

7. Смольянинова Л.Я. Орехоплодные. Культурная флора СССР Т. XVII, Л., Гос. изд-во совхозной и колхозной лит-ры, 1936.

8. Хужахметова А.Ш. Отбор сортов фундука на зимостойкость // Плодоводство и ягодоводство России. 2018. № 55. С. 60-63. https://doi.org/10.31676/2073-4948-2018-55-60-63. EDN: YWORSX

9. МНИАП.РФ. Потенциал импортозамещения в ореховой отрасли // Международный независимый институт аграрной политики http://xn--80aplem.xn--p1ai/repository/analytics/220/document.pdf

10. Enescu C.M., Durrant T.H., Rigo D., Caudullo G. Corylus avellana in Europe: distribution, habitat, usage and threats // European atlas of forest tree species. Luxembourg, 2016. P. 86-87.

11. Savage G.P., McNeil D.L. Chemical composition of hazelnuts (Corylus avellana L.) grown in New Zealand // International journal of food sciences and nutrition. 1998. Vol. 49, N 3. P. 199-203. https://doi.org/10.3109/09637489809086412

12. Saveleva N., Zemisov A., Yushkov A., Borzykh N., Chivilev V. Frost resistance of hazelnut varieties in the Central Black Earth Region of Russia // BIO web of conferences. 2021. Vol. 34. P. 01006. https://doi.org/10.1051/bioconf/20213401006

13. Shahidi F., Alasalvar C., Liyana-Pathirana C.M. Antioxidant phytochemicals in hazelnut kernel (Corylus avellana L.) and hazelnut byproducts // Journal of agricultural and food chemistry. 2007. Vol. 55, N 4. P. 1212-1220. https://doi.org/10.1021/jf062472o

Корнилов Б.Б., Грюнер Л.А.

Проблемы и перспективы селекции ежевики ремонтантного типа в средней полосе России (обзор)

Посмотреть аннотацию

Корнилов Б.Б., Грюнер Л.А. Проблемы и перспективы селекции ежевики ремонтантного типа в средней полосе России (обзор) // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 55-69. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0406

На основании анализа мировых тенденций при создании современных сортов ежевики обозначены приоритетные направления селекции ремонтантных сортов этой культуры в условиях средней полосы России, исходя из климата региона и биологических особенностей растения. Статья состоит из четырех основных разделов, в первом из которых показана значимость проблемы зимостойкости ежевики в климатических условиях указанного региона. Во втором разделе изложена история создания ремонтантных сортов ежевики в США, показана перспективность таких сортов в решении проблемы зимостойкости ежевики в зоне проведения исследований авторами статьи. В третьем разделе сообщается о требованиях ремонтантных сортов к условиям выращивания. В четвертом разделе представлена модель идеального сорта ремонтантной ежевики для средней полосы России, предлагаемая авторами. Основными параметрами этой модели являются следующие: период вегетации не более 180 дней; высокая урожайность; компактность кустов; бесшипность побегов; размер зоны осеннего плодоношения не менее 2/3 побега; раннее осеннее созревание ягод; крупный размер плодов; высокая транспортабельность ягод; легкая отделяемость зрелых плодов от чашечки при отсутствии их преждевременной осыпаемости; дружность созревания; гибкость и прочность плодовых веточек; мелкосемянность; продолжительное хранение и привлекательный внешний вид плодов; высокие вкусовые качества плодов; высокое содержание в плодах комплекса важных биохимических компонентов; иммунность растений к болезням и вредителям. В статье указаны некоторые ремонтантные сорта-источники перечисленных селекционно-ценных признаков. Актуальность и новизна работы по созданию ремонтантных сортов ежевики в средней полосе России определяются отсутствием таких сортов, адаптированных к условиям этого региона, остро стоящей здесь проблемой зимостойкости указанной культуры. К 2023 году во ВНИИСПК собрана коллекция из 9 ремонтантных сортов ежевики мирового сортимента, потенциально перспективных в качестве исходного материала для дальнейшей селекции. Созданный генофонд и проведенный анализ литературы позволяют планировать и вести дальнейшую работу по совершенствованию сортимента ремонтантной ежевики в условиях средней полосы России.

Ссылки

1. Грюнер Л.А. Адаптационные возможности ежевики в условиях Орловской области // Современное садоводство. 2019. № 3. С. 27-41. https://doi.org/10.24411/2312-6701-2019-10305. EDN: HWDPGB
2. Грюнер Л.А., Князев С.Д., Кулешова О.В. Элементы технологии выращивания ежевики в условиях Орловской области // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2018. № 4. С. 31-34. https://doi.org/10.30850/vrsn/2018/4/31-34. EDN: LYQAQH

3. Грюнер Л.А. Зимостойкость ежевики в Предгорной зоне Кавказа: Сб. научн. тр. по прикладной ботанике, генетике и селекции (10). Л., 1986, 85-86.

4. Казаков И.В. Малина // Помология: Земляника. Малина. Орехоплодные и редкие культуры Т. 5. Орел, 2014. С. 97-108. EDN: ZACNLN

5. Казаков И.В., Евдокименко С.Н. Малина ремонтантная. М., 2007. 287 с. EDN: QKYSBF

6. Казаков И.В., Сидельников А.И., Степанов В.В. Ремонтантная малина в России. Челябинск: НПО Сад и огород, 2010. 135 с. EDN: QLBSDF

7. Телепенько Ю.Ю. Морозостiйкость сортiв ожины (Rubus Subg. Eubatus Focke) в умовах Захiдного Лiсостепу Украiни // Plant Varieties Studying and Protection. 2018. Vol.14, N 1. P. 124-131. https://doi.org/10.21498/2518-1017.14.1.2018.126521. EDN: YWKOUI

8. Якимов В.В. Ежевика в России. Челябинск, 2010. 311 с. EDN: QLBEED

9. Andersen P.C. The Blackberry. 2001. URL: https://www.growables.org/information/LowChillFruit/documents/BlackberryEdis.pdf

10. Clark J.R. ‘Osage’ thornless blackberry // HortScience. 2013. Vol. 48, N 7. P. 909-912. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.48.7.909

11. Clark J.R. Primocane-fruiting blackberry breeding // HortScience. 2008. Vol. 43, N 6. P. 1637-1639. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.43.6.1637

12. Clark J.R. ‘Prime-Ark Freedom‘ primocane-fruiting thornless blackberry // HortScience. 2014. Vol. 49, N 8. P. 1097-1101. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.49.8.1097

13. Clark J.R., Finn Ch.E. Blackberry breeding and genetics // Fruit, Vegetable and Cereal Science and Biotechnology / H. Flachowsky, V.-M. Hanke Eds. 2011. Vol. 5, N 1. P. 27-43. URL: http://www.globalsciencebooks.info/Online/GSBOnline/images/2011/FVCSB_5(SI1)/FVCSB_5(SI1)27-43o.pdf

14. Clark J.R., Strik B.C., Thompson E., Finn Ch.E., Progress and challenges in primocane-fruiting blackberry breeding and cultural management // Acta horticulturae. 2012. Vol. 926. P. 387-392. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2012.926.54

15. Clark, J.R., Moore J.N. ‘Ouachita’ thornless blackberry // HortScience. 2005. Vol. 40, N 1. P. 258-260. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.40.1.258

16. Clark J.R., Moore J.N. ‘Natchez’ thornless blackberry // HortScience. 2008. Vol. 43, N 6. P. 1897-1899. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.43.6.1897

17. Clark J.R., Moore J.N., Lopez-Medina J., Finn C., Perkins-Veazie P. ‘Prime-Jan’ (‘APF-8’) and ‘Prime-Jim’ (‘APF-12’) primocane-fruiting blackberries // HortScience. 2005. Vol. 40, N 3. P. 852-855. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.40.3.852

18. Clark J.R., Perkins-Veazie P. ‘APF-45 ’primocane-fruiting blackberry // HortScience. 2011. Vol. 46, N 4. P. 670-673. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.46.4.670

19. Clark J.R., Salgado A. ‘Prime-Ark^® Traveler’ Primocane-fruiting thornless blackberry for the commercial shipping market // HortScience. 2016. Vol. 51, N 10. P. 1287-1293. https://doi.org/10.21273/HORTSCI10753-16

20. Clark J.R., Worthington M., Ernst T. ‘Caddo’ thornless blackberry // HortScience. 2019 Vol. 54, N 9. P. 1632-1636. https://doi.org/10.21273/HORTSCI14119-19

21. Danek J., Kolodziejczak P. Breeding of blackberries for Polish climatic conditions // Acta Horticulturae. 1993. Vol. 352. Р. 283-284. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.1993.352.40

22. Darrow G.M. Blackberry and raspberry Improvement // Yearbook of Agriculture. Washington : Dept. of Agriculture, 1937. Р. 496-533. https://archive.org/details/yoa1937/page/495/mode/2up

23. Debner А., Hatterman-Valenti H. Establishment of primocane blackberry cultivars in a northern climate // Acta horticulturae. 2016. Vol. 1133. Р. 201-206. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2016.1133.30

24. Finn Ch. E., Clark J R.. Blackberry // Fruit Breeding / Eds. Badenes M., Byrne D. Springer, Boston, 2012. Р. 151-190.

https://doi.org/10.1007/978-1-4419-0763-9_5

25. Finn C.E., Strik B.C. Blackberry cultivars for oregon. 2014. https://extension.oregonstate.edu/sites/default/files/documents/ec1617.pdf

26. Gruner L.A., Kornilov B.B. Priority trends and prospects of blackberry breeding in conditions of Central Russia // Vavilov journal of genetics and breeding. 2020. Vol. 24, N 5. P. 489-500. https://doi.org/10.18699/VJ20.641. EDN: UGZOAO

27. Gruner L.A., Kornilov B.B. The diversity of blackberry habitus and its significance for cultivars’ growing in the conditions of central Russia // E3S Web of Conferences. 2021. Vol. 254. P. 01009. https://doi.org/10.1051/e3sconf/202125401009. EDN: JBSSLI

28. Lim, Y.K., V.H. Knight. The successful transfer of primocane fruiting expression from raspberry to Rubus hybrid berry // Euphytica. 2000. № 116. Р. 257-263. https://doi.org/10.1023/A:1004052214370

29. Lopez-Medina J., Moore J.N., McNew R.W. A proposed model for inheritance of primocane fruiting in tetraploid erect blackberry // Journal of the american society for horticultural science. 2000. Vol. 125, N 2. Р. 217-221. https://doi.org/10.21273/JASHS.125.2.217

30. Orzel A., Simlat M., Danek J. Directions in raspberry and blackberry breeding program conducted in NIWA Berry Breeding Ltd. Brzezna, Poland // Acta horticulturae. 2016. Vol. 1133. P. 29-34. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2016.1133.5

31. Strik B., Clark J., Finn Ch. Management of primocane-fruiting blackberry to maximize yield and extend the fruiting season // Acta horticulturae. 2008. № 777. Р. 423-428. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2008.777.63

32. Takeda F., Handley D.A. Winter Protection Method for Blackberries // HortScience. 2006. Vol. 41, N 4. P. 1011. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.41.4.1011D
33. Takeda F., Rose A., Demchak K. Effects of cane emergence time, bending, and defoliation on flowering and yield in primocane-fruiting blackberry // Agronomy. 2020. Vol. 10, N 11. P. 1737. https://doi.org/10.3390/agronomy10111737
34. Thompson M.M. Chromosome numbers of Rubus cultivars at the national clonal germplasm repository // HortScience. 1995. Vol. 30, N 7. P. 1453-1456. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.30.7.1453
35. Thompson E., Strik B., Clark J., Finn Ch. Flowering and fruiting morphology of primocane-fruiting blackberries // Acta horticulturae. 2008. Vol. 777. Р. 281-288. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2008.777.42
36. Thompson E., Strik B.C., Finn C.E., Zhao Y., Clark J.R. High tunnel versus open field: management of primocane-fruiting blackberry using pruning and tipping to increase yield and extend the fruiting season // HortScience. 2009. Vol. 44, N 6. P. 1581-1587. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.44.6.1581
37. Wojcik-Seliga J., Wojcik-Gront E. Evaluation of blackberry and hybrid berry cultivars new to Polish climate – Short communication // Horticultural science. 2013. Vol. 40. P. 88-91. https://doi.org/10.17221/1/2012-HORTSCI

Киселева Г.К., Ульяновская Е.В., Хохлова А.А., Караваева А.В.

Оценка адаптивного потенциала сортов яблони по физиолого-биохимическим показателям в Краснодарском крае

Посмотреть аннотацию

Киселева Г.К., Ульяновская Е.В., Хохлова А.А., Караваева А.В. Оценка адаптивного потенциала сортов яблони по физиолого-биохимическим показателям в Краснодарском крае // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 70-79. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0407

Проведены сравнительные физиолого-биохимические исследования яблони по содержанию некоторых метаболитов в течение зимнего периода 2020…2023 гг. в условиях Краснодарского края. Объекты исследований: сорта яблони различного эколого-географического происхождения – Enterprise (Америка), Florina (Франция), Орфей, Марго, Багрянец Кубани (Россия). Общепринятыми физиолого-биохимическими методами исследований обнаружено, что в побегах сортов Enterprise, Орфей, Марго содержалось повышенное количество крахмала, сахаров и аскорбиновой кислоты в предзимний период. В зимний период у этих сортов углевод крахмал имел большое значение в перенесении зимних неблагоприятных условий, его содержание уменьшалось в 1,6…1,9 раз, в то время как у сортов Florina и Багрянец Кубани содержание крахмала изменялось незначительно. Увеличение содержания растворимых сахаров в результате гидролиза крахмала отмечено у сортов Enterprise, Орфей, Марго в 1,3…1,4 раз, у сортов Florina и Багрянец Кубани содержание растворимых сахаров изменялось незначительно. Показано, что в течение зимнего периода происходило накопление аскорбиновой кислоты в побегах всех сортов яблони, причем в большей степени у Enterprise, Орфей, Марго – в 2,1…2,4 раз, у сортов Florina, Багрянец Кубани – в 1,9 и 1,7 раз соответственно. Физиолого-биохимическая адаптация сортов яблони к пониженным температурам зимнего периода достигалась за счет гидролиза крахмала, повышения содержания водорастворимых сахаров и аскорбиновой кислоты в зимующих побегах. Установлено, что сорта яблони Enterprise, Орфей и Марго проявили себя более адаптивными в сравнении с сортами Florina и Багрянец Кубани в условиях осенне-зимнего периода и рекомендуются для возделывания в Краснодарском крае.

Ссылки

1. Гончаровская И.В., Левон В.Ф., Клименко С.В., Кузнецов В.В. Содержание антоцианов и халконов в побегах крупноплодных сортов и кребов яблони в связи с зимостойкостью // Фенольные соединения: функциональная роль в растениях: сб. докл. Х Международного Симпозиума М.: PRESS-BOOK.RU, 2018. С. 106-110. EDN: XVKCRF

2. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). 5-е издание, переработанное и дополненное. М.:Альянс, 2014. 351 с.

3. Егоров Е.А., Шадрина Ж.А., Кочьян Г.А., Куликов И.М., Борисова А.А. Роль селекционно-питомниководческих центров в инновационном развитии отрасли садоводства // Садоводство и виноградарство. 2020. № 4. С. 49-57. https://doi.org/10.31676/0235-2591-2020-4-49-57. EDN: YTIUCU

4. Киселева Г.К., Ульяновская Е.В., Караваева А.В., Схаляхо Т.В. Адаптационная устойчивость яблони в условиях меняющегося климата // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2022. № 78. С. 287-300. https://doi.org/10.30679/2219-5335-2022-6-78-287-300. EDN: BBIRYM

5. Киселева Г.К., Ильина И.А., Соколова В.В., Запорожец Н.М., Хохлова А.А., Схаляхо Т.В. Роль аскорбиновой кислоты в адаптации Vitis L. к низким температурам // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2023. № 79. С. 93-107. https://doi.org/10.30679/2219-5335-2023-1-79-93-107. EDN: FKHMAY

6. Клименко В.П. Толерантность сортов винограда к ожидаемым стрессам водного дефицита // Магарач. Виноградарство и виноделие. 2023а. Т. 25, № 2. С. 145-154. https://doi.org/10.34919/IM.2023.25.2.007. EDN: RRUOSV

7. Клименко В.П. Механизмы регуляции гомеостаза растений винограда в условиях водного дефицита // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2023b. № 82. С. 125-148. https://doi.org/10.30679/2219-5335-2023-4-82-125-148. EDN: FVKHMU

8. Колупаев Ю.Е., Горелова Е.И., Ястреб Т.О. Механизмы адаптации растений к гипотермии: роль антиоксидантной системы // Вісник Харківського національного аграрного університету. Серія: Біологія. 2018. № 1. С. 6-33.

9. Красова Н.Г. Адаптивный потенциал сортов яблони // Садоводство и виноградарство. 2015. № 3. С. 38-45. https://doi.org/10.31676/0235-2591-2015-3-38-45. EDN: TTLVFT

10. Красова Н.Г., Ожерельева З.Е., Галашева А.М., Makarkina M.A., Лупин М.В. Оценка адаптивности и качества плодов сортов яблони для интенсивных садов // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2022. Т. 183, № 4. С. 48-59. https://doi.org/10.30901/2227-8834-2022-4-48-59. EDN: UEBNEX

11. Прудников П.С., Ожерельева З.Е., Кривушина Д.А., Гуляева А.А. Физиолого-биохимическая оценка зимостойкости сортов Prunus domestica L. // Современное садоводство. 2018. № 2. С. 15-21. https://doi.org/10.24411/2312-6701-2018-10203. EDN: XTFSRF

12. Ульяновская Е.В., Беленко Е.А. Генетические ресурсы рода Malus для создания современных адаптивных сортов яблони // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2021. № 72. С.1-17. https://doi.org/10.30679/2219-5335-2021-6-72-1-17. EDN: NCFROT

13. Якуба Ю.Ф., Ильина И.А., Захарова М.В., Лифарь Г.В. Методика определения массовой концентрации аскорбиновой, хлорогеновой и кофейной кислот в побегах и листьях плодовых культур и винограда с применением капиллярного электрофореза // Современные инструментально-аналитические методы исследования плодовых культур и винограда / под общей редакцией Н.И. Ненько. Краснодар: СКЗНИИСиВ, 2015. С. 68-73. EDN: VSJXNZ

14. Dalhaus T., Schlenker W., Blanke M.M., Bravin E., Finger R. The effects of extreme weather on apple quality // Scientific reports. 2020. № 10. P. 7919. https://doi.org/10.1038/s41598-020-64806-7

15. Fernandez E., Cuneo I.F., Luedeling E., Alvarado L., Farias D., Saa S. Starch and hexoses concentrations as physiological markers in dormancy progression of sweet cherry twigs // Trees. 2019. № 33. P. 1187-1201. https://doi.org/10.1007/s00468-019-01855-0

16. Leyva A., Quintana A., Sanchez M., Rodriguez E.N., Cremata J., Sanchez J.C. Rapid and sensitive anthrone-sulfuric acid assay in microplate format to quantify carbohydrate in biopharmaceutical products: method development and validation // Biologicals. 2008. Vol. 36, № 2. P. 134-141. https://doi.org/10.1016/j.biologicals.2007.09.001

17. Rachenko M.A., Rachenko A.M. The variation of the content of dehydrin proteins in the bark of Malus app. trees differing in winter hardiness in Southern Cisbaikalia conditions // Zemdirbyste-Agriculture. 2020. Vol. 107, № 2. P. 185-190. https://doi.org/10.13080/z-a.2020.107.024. EDN: RHASQR

18. Raza A., Razzaq A., Mehmood S.S., Zou X., Zhang X., Lv Y., Xu J. Impact of climate change on crops adaptation and strategies to tackle its outcome: A review // Plants. 2019. Vol. 8, № 2. P. 34. https://doi.org/10.3390/plants8020034

19. Wang Y., Ya H.U., Chen B., Zhu Y., Dawuda M.M. Physiological mechanisms of resistance to cold stress associated with 10 elite apple rootstocks // Journal of Integrative Agriculture. 2018. Vol. 17, № 4. P. 857-866 https://doi.org/10.1016/S2095-3119(17)61760-X

Кружков Ал.В., Кириллов Р.Е., Чивилев В.В.

Оценка силы роста генотипов груши и вишни

Посмотреть аннотацию

Кружков Ал.В., Кириллов Р.Е., Чивилев В.В. Оценка силы роста генотипов груши и вишни // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 80-89. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0408

Приведены результаты изучения силы роста сортов и форм груши и вишни. Работа проведена в условиях северной части Тамбовской области в 2019…2022 гг. Объектами научных исследований служили 17 сортов и 5 гибридных сеянцев груши и 9 сортов, 6 элитных форм, 5 сеянцев вишни. Измеряли высоту деревьев. Объем выборки – 10 растений каждой формы в трехкратной повторности. Целью исследований являлось выделение слаборослых генотипов плодовых культур. Выявлены различия между изучаемыми сортами и формами. Выделены карликовые формы груши Ямал, 1-07-27, 5-07-30, 5-07-92, 14-07-10,14-07-47. Их высота составила 1,8…2,3 м. К слаборослым отнесены сорта Августовская роса, Аллегро, Гера, Сюита высотой 2,7…3,5 м. Выявлены среднерослые генотипы Ника, Первомайская, Светлянка, Феерия, Яковлевская. Высота деревьев у них достигала 3,9…4,4 м. Высота сильнорослых генотипов груши, таких как Бессемянка, Любимица Яковлева, Красавица Черненко, Осенняя Яковлева, Скороспелка из Мичуринска варьировала от 4,7 до 6,5 м. Выделены слаборослые сеянцы вишни 1-2-01 и 1-4-01 высотой не более 2 м. Высота среднерослых сортов и форм Акварель, Морозовка, Романтика, Роза, Северянка, 12-75, 12-78, 12-79 варьировала от 2,2 до 3,1 м. В группу сильнорослых вошли сорта Жуковская, Фея и элитные формы Восторг, Гранит, Джуси Фрут, 6-85. Их высота составила 3,6…5,0 м. Высота сортов вишни Вечерняя заря, Комсомольская, Харитоновская, элитной формы Память Горшкова варьировала от 5,1 до 6,2 м. Выявленные слаборослые генотипы представляют значительный интерес для селекции.

Ссылки

1. Артюхова Л.В. Оценка восприимчивости и отбор устойчивых гибридных форм ореха грецкого к зимне-весенним подмерзаниям в Прикубанской зоне садоводства // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2023. № 81. С. 189-201. https://doi.org/10.30679/2219-5335-2023-3-81-189-201. EDN: CLIFWP

2. Борзых Н.В., Юшков А.Н., Абызов В.В., Дубровская О.Ю. Биологически активные вещества в плодах земляники // Вестник Мичуринского государственного аграрного университета. 2016. № 2. С. 37-40. EDN: WKFJIZ

3. Гуляева А.А., Берлова Т.Н., Безлепкина Е.В., Галькова А.А., Ефремов И.Н. Изучение товарных и потребительских показателей гибридных форм вишни селекции ВНИИСПК // Вестник аграрной науки. 2021. № 4. С. 17-21. https://doi.org/10.17238/issn2587-666X.2021.4.17. EDN: MRQLTO

4. Гуляева А.А., Ефремов И.Н. Достижения и перспективы селекции вишни в ФГБНУ ВНИИСПК // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2022. № 5. С. 13-15. https://doi.org/10.31857/2500-2082/2022/5/13-15. EDN: JZIHGB

5. Джигадло Е.Н., Колесникова А.Ф., Еремин Г.В., Морозова Т.В., Дебискаева С.Ю., Каньшина М.В., Медведева Н.И., Симагин В.С. Косточковые культуры // Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под ред. Е.Н. Седова, Т.П. Огольцовой. Орел: ВНИИСПК, 1999. С. 300-350. EDN: YHAQHP

6. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. М.: Альянс, 2011. 351 с. EDN: QLCQEP

7. Жуков О.С., Никифорова Г.Г. Вишня и черешня // Создание новых сортов и доноров ценных признаков на основе идентифицированных генов плодовых растений. Мичуринск, 2002. С. 68-89.

8. Заремук Р.Ш., Копнина Т.А., Доля Ю.А. Физиологические аспекты засухоустойчивости сортов вишни // Таврический вестник аграрной науки. 2021. № 2. С. 89-99. https://doi.org/10.33952/2542-0720-2021-2-26-89-99. EDN: MJUIFL

9. Зацепина И.В. Формы груши и айвы, устойчивые к бурой пятнистости // Защита и карантин растений. 2023. № 6. С. 37-38. https://doi.org/10.47528/1026-8634_2023_6_37. EDN: HQFBCB

10. Карпова О.И., Князев С.Д. Современные тенденции развития плодово-ягодного сектора экономики АПК Орловской области // Экономика сельскохозяйственных и перерабатывающих предприятий. 2022. № 6. С. 28-33. https://doi.org/10.31442/0235-2494-2022-0-6-28-33. EDN: JSFQVN

11. Козаева М.И. Оценка экологической устойчивости различных форм и сортов вишни на основе мониторинга эндофитной микробиоты // Тенденции развития науки и образования. 2022. № 88-1. С. 124-126. https://doi.org/10.18411/trnio-08-2022-36. EDN: FWEZPA

12. Кружков А.В., Дубровский М.Л., Лыжин А.С., Кириллов Р.Е. Засухоустойчивость генотипов вишни // Плодоводство и ягодоводство России. 2015. Т. 42. С. 232-234. EDN: UDEBVZ

13. Кружков А.В., Дубровский М.Л., Чурикова Н.Л. Результаты и перспективы селекционной работы с абрикосом в условиях его северного ареала возделывания // Наука и Образование. 2020. Т. 3, № 4. С. 134. EDN: HWURZN

14. Левгерова Н.С., Салина Е.С., Сидорова И.А. Новые сорта плодовых и ягодных культур селекции ВНИИСПК для производства натуральных продуктов питания // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2020. № 4. С. 33-37. https://doi.org/10.30850/vrsn/2020/4/33-37. EDN: KSEEDF

15. Макаркина М.А., Князев С.Д., Курашев О.В., Павел А.Р. Биохимическая оценка новых сортов крыжовника селекции ВНИИСПК // Плодоводство и ягодоводство России. 2019. Т. 59. С. 86-91. https://doi.org/10.31676/2073-4948-2019-59-86-91. EDN: DWDYAT

16. Миронов А.М., Акимов М.Ю., Кольцов В.А., Богданов Р.Е. Исследование комплекса фенольных соединений в плодах сливы домашней (Prunus domestica L.) в условиях Тамбовской области // Российская сельскохозяйственная наука. 2023. № 3. С. 25-30. . https://doi.org/10.31857/S2500262723030055. EDN: EYZERI

17. Ожерельева З.Е., Прудников П.С., Ефремов И.Н. Изучение морозостойкости сортов вишни селекции ВНИИСПК // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2020. № 4. С. 29-33. https://doi.org/10.30850/vrsn/2020/4/29-33. EDN: EJZQDY

18. Попов М.А., Новоторцев А.А., Богданов Р.Е., Кружков А.В. Совершенствование сортимента и технологий возделывания вишни и сливы в средней полосе России // Достижения науки и техники АПК. 2019. Т. 33, № 2. С. 39-44. https://doi.org/10.24411/0235-2451-2019-10210. EDN: GSESCX

19. Савельев Н.И., Юшков А.Н., Чивилев В.В., Савельева Н.Н., Земисов А.С. Потенциал устойчивости плодовых культур к низкотемпературным стрессорам // Плодоводство и ягодоводство России. 2008. Т. 18. С. 503-506. EDN: MBGQPJ

20. Свистунова Н.Ю., Бурменко Ю.В. Современные достижения и направления селекции груши (Pyrus L.) в России (обзор) // Вестник КрасГАУ. 2022. № 2. С. 85-92. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2022-2-85-92. EDN: CBSTOX

21. Седов Е.Н., Долматов Е.А., Красова Н.Г. Оценка исходных форм и результаты селекции груши во ВНИИСПК // Аграрный научный журнал. 2017. № 8. С. 29-32. EDN: ZEMARV

22. Седов Е.Н., Красова Н.Г., Долматов Е.А. Краткие итоги селекции груши во Всероссийском НИИ селекции плодовых культур // Аграрный научный журнал. 2021. № 10. С. 53-55. https://doi.org/10.28983/asj.y2021i10pp53-55. EDN: RWQTJV

23. Седов Е.Н., Красова Н.Г., Жданов В.В., Долматов Е.А., Можар Н.В. Семечковые культуры (яблоня, груша, айва) // Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под ред. Е.Н. Седова, Т.П. Огольцовой. Орел: ВНИИСПК, 1999. С. 253-299. EDN: YHAPPN

24. Сёмин И.В., Долматов Е.А., Ожерельева З.Е. Перспективы использования подвоя интенсивного типа для возделывания садов груши в условиях Центральной России // Овощи России. 2020. № 5. С. 75-80. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2020-5-75-80. EDN: QMWUEE

25. Хрыкина Т.А., Долматов Е.А. Результаты ступенчатых скрещиваний в селекции доноров карликовости у груши // Плодоводство и ягодоводство России. 2021. Т. 64. С. 40-45. https://doi.org/10.31676/2073-4948-2021-64-40-45. EDN: AELLDV

26. Чивилев В.В., Савельев Н.И., Кириллов Р.Е., Качалкин М.В. Генетические основы создания морозостойких форм груши с моногенной карликовостью // Плодоводство и ягодоводство России. 2012. Т. 32, № 2. С. 299-302. EDN: OWLPMF

Полубятко И.Г., Таранов А.А.

Сравнительная оценка коллекционных сортов и гибридов черешни по хозяйственно ценным признакам и показателям устойчивости в условиях Беларуси

Посмотреть аннотацию

Полубятко И.Г., Таранов А.А. Сравнительная оценка коллекционных сортов и гибридов черешни по хозяйственно ценным признакам и показателям устойчивости в условиях Беларуси // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 90-105. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0409

К промышленному сортименту черешни предъявляют высокие требования, а возрастающий интерес к ее коммерческому возделыванию определяет необходимость совершенствования сортимента в природно-экологических условиях Беларуси. В статье приводится сравнительная оценка перспективных сортов и гибридов черешни коллекции РУП «Институт плодоводства»: Донецкий уголек, Итальянка, Любава, Skeena, № 3, № 4, 2014-2/89, 84-10/97, 84-10/98, 94-30/41. Исследования проведены в 2021…2023 гг. в коллекционном саду черешни отдела селекции плодовых культур РУП «Институт плодоводства». Участок исследований, согласно агроклиматическому зонированию, относится к южной агроклиматической области Беларуси, где сумма температур воздуха выше 10°С составляет 2200-2600°С. Проведена оценка морозостойкости сортов и гибридов черешни в лабораторных условиях с помощью климатической камеры TMAX-CT 408 по четырем компонентам зимостойкости. Исследования биохимического состава плодов проводили в Республиканском контрольно-испытательном комплексе по качеству и безопасности продуктов питания РУП «Научно-практический центр Национальной академии наук Беларуси по продовольствию». Дана краткая характеристика зимостойкости, устойчивости к болезням (коккомикоз, монилиоз), качества плодов изучаемых сортов и гибридов черешни. Определен биохимический состав плодов: фактическое содержание витамина С, углеводов, органических кислот в изучаемых образцах черешни. По комплексу хозяйственно ценных признаков в элиту выделены гибриды черешни 84-10/98, 94-30/41, 2014-2/89. Выделенные элитные гибриды черешни 84-10/98 (Донецкая красавица св.оп.) и 94-30/41 (Аэлита св.оп.) переданы в систему государственного сортоиспытания Республики Беларусь под названиями Регула и Антарес соответственно.

Ссылки

1. Колесникова А.Ф., Вишня, черешня. Харьков, 2003. 255 с.

2. Мосина Р.В., Джигадло Е.Н., Ряполова И.Н. Оценка зимостойкости цветковых почек у вишни, черешни и сливы в полевых условиях и при искусственном промораживании // Селекция и сортовая агротехника плодовых культур. 2004. С. 114-119. EDN: YHAODB

3. Заремук Р.Ш., Алехина Е.М., Говорущенко С.А., Богатырева С.В. Адаптивные сорта – основа стабильной продуктивности косточковых культур на юге России // Плодоводство и ягодоводство России. 2008. Т. 20. С. 96-103. EDN: MICYRV

4. Каньшина М.В., Астахов А.А. Адаптивность сортов вишни и черешни в условиях Брянской области // Плодоводство и ягодоводство России. 2008. Т. 20. С. 120-123. EDN: MICYSZ

5. Мельник В.И., Данилович И.С., Кулешова И.Ю., Комаровская Е.В., Мельчакова Н.В. Оценка агроклиматических ресурсов территории Беларуси за период с 1989 по 2015 г. // Природные ресурсы. 2018. № 2. С. 88-101. EDN: KYVABC

6. Козловская З.А., Ярмолич С.А., Якимович О.А., Гашенко Т.А., Кондратенок Ю.Г., Таранов А.А., Васеха В.В., Васильева М.Н., Матвеев В.А., Полубятко И.Г., Рудницкая Н.Л., Устинов В.Н. Генетические основы и методика селекции плодовых культур и винограда. Минск: Беларуская навука, 2019. 249 с. EDN: RDECYE.

7. Астахов А.А. Адаптивность и продуктивность сортов черешни на юге Нечерноземья // Мобилизация адаптационного потенциала садовых растений в динамичных условиях внешней среды: материалы Междунар. науч.-практ. конф. М.: ВСТИСП, 2004. С. 287-292. EDN: YTXCRP

8. Орлова С.Ю., Юшев А.А. Устойчивость сортов вишни и черешни к монилиальному ожогу в условиях Северо-Запада России // Плодоводство. 2011. Т. 23. С. 297-306. EDN: WLBSEX

9. Кузнецова А.П. Ускоренная оценка устойчивости черешни и вишни к коккомикозу и монилиозу // Садоводство и виноградарство. 2005. № 1. С. 19-20. EDN: PCUCOB

10. Каньшина М.В. Анализ наследования хозяйственно-ценных признаков у черешни // Мобилизация адаптационного потенциала садовых растений в динамичных условиях внешней среды: материалы междунар. науч.-практ. конф. М.: ВСТИСП, 2004. С. 76-81. EDN: UIAUKQ

11. Юшев А.А., Витковский В.Л., Корнейчук В.А., Блажек Я., Папрштейн Ф. Широкий унифицированный классификатор СЭВ рода Cerasus Mill. Л.: ВИР, 1989. 46 с. EDN: WMGDHJ

Богданов Р.Е.

Влияние неблагоприятных факторов зимнего и вегетационного периодов 2022-23 гг. на продуктивность растений сливы домашней

Посмотреть аннотацию

Богданов Р.Е. Влияние неблагоприятных факторов зимнего и вегетационного периодов 2022-23 гг. на продуктивность растений сливы домашней // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 106-114. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_04010

Проведена оценка влияния стрессовых воздействий зимнего и вегетационного периодов 2022-23 г. на урожайность насаждений сливы домашней. В исследование было включено 20 сортов: Венгерка Курсакова, Евразия 21, Заречная ранняя, Ночка, Светлячок, Ренклод колхозный, Ренклод Харитоновой, Аллейная, Артистичная, Венгерка заречная, Грация, Дубравная, Заречная поздняя, Престижная, Радость, Ренклод мичуринский, Ренклод розовый, Стартовая, Троицкая, Черносливная. В качестве контроля использовался районированный сорт Этюд. Оценку степени подмерзания почек, коры, камбия, древесины, сердцевины однолетних ветвей в зимний период, ранжирование устойчивости цветков к повторным весенним заморозкам, а также учет урожая проводили согласно общепринятым методическим рекомендациям. Установлено, что низкие отрицательные температуры в зимний период 2022-23 г. не вызвали существенных повреждений тканей и вегетативных почек у всех изученных сортов. Наибольшей устойчивостью генеративных почек (подмерзание не более 25%) характеризовались контрольный сорт Этюд, а также Ночка, Заречная ранняя, Венгерка Курсакова. Весной большинство изученных форм характеризовались обильным цветением. Исключение составил сорт сливы Ренклод Харитоновой, у которого степень цветения не превышала 2 баллов. Это обусловлено очень сильным подмерзанием генеративной сферы в зимний период. Во время цветения растений сливы домашней отмечены возвратные заморозки, которые вызвали подмерзание генеративной сферы. У изученных форм установлено слабое повреждение генеративной сферы, не превышающее 25%. Влажная, прохладная и ветреная погода в период цветения оказала неблагоприятное воздействие на выделение нектара и активность насекомых-опылителей, что отрицательно повлияло на завязываемость плодов. Наибольший урожай в сезон 2023 г. отмечен у сорта Венгерка Курсакова. Для дальнейшей селекции на повышение морозостойкости генеративной сферы рекомендуются сорта сливы домашней Ночка, Этюд, Заречная ранняя, Венгерка Курсакова. Для производственного использования наиболее перспективным является сорт Венгерка Курсакова.

Ссылки

1. Богданов Р.Е. Биологические особенности и хозяйственная ценность сортов и форм сливы для производства и селекции // автореф. дис. … канд. с.-х. наук. Мичуринск, 2003. 24 с. EDN: NJPMTB

2. Богданов Р.Е. Слива // Совершенствование исходного материала и создание новых сортов косточковых культур. Мичуринск, 2008. С. 31-54. EDN: YOZDBX

3. Джигадло Е.Н., Колесникова А.Ф., Еремин Г.В., Морозова Т.В., Дебискаева С.Ю., Каньшина М.В., Медведева Н.И., Симагин В.С. Косточковые культуры // Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под ред. Седова Е.Н., Огольцовой Т.П. Орел: ВНИИСПК, 1999. С 300-350. EDN: YHAQHP

4. Еремин Г.В. Слива и алыча. М.: АСТ, 2003. EDN: RROTXT

5. Жученко А.А. Адаптивная система селекции растений (эколого-генетические основы) растений. М.: Изд-во РУДН «Агрорус», 2001. Т. 2. 708 с.
6. Заремук Р.Ш., Богатырёва С.В. Создание адаптивных и продуктивных сортов сливы домашней на Юге России // Достижения науки и техники АПК. 2012. № 5. С. 18-20. EDN: OYBYRJ

7. Заремук Р.Ш. Адаптивный сортимент сливы для экологически устойчивого производства плодов в Краснодарском крае // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2013. № 20. С. 1-7. EDN: PXBJDD

8. Кашин В.И. Научные основы адаптивного садоводства. М.: Колос, 1995. 293 с.

9. Осипов Г.Е., Осипова З.А. Селекция сливы на зимостойкость в Татарском НИИСХ // Достижения науки и техники АПК. 2010. № 11. С. 56-58. EDN: NDAZCV

10. Савельев Н. И., Юшков А.Н., Кружков А.В. Анализ метеофакторов, дестабилизирующих реализацию биопотенциала плодовых в условиях Тамбовской области // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2011. № 68. С. 383-395. EDN: NTMEJR

11. Симонов В.С., Высоцкий В.А., Кулемеков С.Н. Получение новых зимостойких сортов сливы с использованием методов биотехнологии // Садоводство и виноградарство. 2013. № 4. С. 15-19. EDN: RAMRFX

12. Симонов В.С., Бурменко Ю.В. Роль генотипа сливы в наследовании признака устойчивости к низким отрицательным температурам // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2021. Т. 22, № 4. С. 542-550. https://doi.org/10.30766/2072-9081.2021.22.4.542-550. EDN: IOLYUM

13. Смирнов Ю.А., Смирнова Г.С., Богданов Р.Е. Слива // Создание новых сортов и доноров ценных признаков на основе идентифицированных генов плодовых растений. Мичуринск, 2002. С. 91-108. EDN: ZPCIXR

14. Солонкин А.В., Еремин Г.В. Использование местных и новых сортов Нижнего Поволжья в селекции адаптивных сортов сливы // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета, 2017. № 134. С. 368-378. https://doi.org/10.21515/1990-4665-134-031. EDN: YNWXTB

15. Тюрина М.М., Гоголева Г.А., Ефимова Н.В., Голоулина Л.К., Морозова Н. Г., Эчеди Й.Й., Волков Ф.А., Арсентьев А.П., Матяш Н.А. Определения устойчивости плодовых и ягодных культур к стрессорам холодного времени года в полевых и контролируемых условиях. М.: ВСТИСП, 2002. 120 с.

16. Юшков А.Н. Селекция плодовых растений на устойчивость к абиотическим стрессорам. Мичуринск, 2019. 332 с. EDN: ZAPLZR

Ершова И.В.

Биофлавоноиды ягод земляники садовой в процессе их хранения

Посмотреть аннотацию

Ершова И.В. Биофлавоноиды ягод земляники садовой в процессе их хранения // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 115-126. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0411

Земляника садовая (Fragaria × ananassa Duch.) является перспективным и доступным продуцентом биологически активных фенольных соединений – биофлавоноидов, которые являются мощными природными антиоксидантами. Кроме того, они играют большую роль в формировании вкуса и цвета плодов, влияя на эти показатели и в процессе хранения и переработки, обусловливая сроки хранения продукции, ее пищевую ценность и привлекательность для потребителя. В статье представлены результаты исследования суммарного содержания биофлавоноидов, а также – отдельных фракций, антоцианов, флаванов (катехины, процианидины), флавонолов в ягодах земляники, выращенной в условиях лесостепной зоны Алтайского края. Установлены сортовые различия и диапазоны изменчивости соответствующих показателей. Выделены перспективные генотипы, представляющие интерес по данному признаку, с максимальным сохранением исходного уровня биофлавоноидов после хранения ягод в замороженном виде. Исследования осуществлялись в 2017…2019 гг. Объекты исследований – сорта и гибриды земляники селекции института и интродуцированные сорта. Для изучения изменения качества ягод в процессе хранения свежие плоды замораживали и хранили при температуре -18ºС в пластиковой таре в течение 5 месяцев. Содержание биофлавоноидов определяли спектрофотометрическими и колориметрическими методами в этанольных экстрактах плодов. Суммарное содержание биофлавоноидов в ягодах земляники составляет в среднем 438,7 мг/100 г с диапазоном варьирования признака 280,0…704,9 мг/100 г. Установлено снижение их содержания в ягодах культуры после 5 месяцев хранения в замороженном виде. Степень снижения зависит от сортовых особенностей и может составлять 11,4…36,3% от первоначального количества. Потери антоцианов в ягодах земляники в процессе хранения варьируют в пределах 4…35%, катехинов – 6,0…39,8%, процианидинов – 3,4…33,2%, флавонолов – 7…56%. Сорта земляники Барабинская, Анастасия, Забелинская, Фестивальная ромашка, ремонтантные формы Р-Л-09-11, Р-Л-08-23 признаны пригодными для хранения в замороженном виде, как наиболее полно сохраняющие исходное качество ягод после их длительного хранения.

Ссылки

1. Акимов М.Ю., Лукьянчук И.В., Жбанова Е.В., Лыжин А.С. Плоды земляники садовой (Fragaria × Ananassa Duch.) как ценный источник пищевых и биологически активных веществ (обзор) // Химия растительного сырья. 2020. № 1. С. 5-18. https://doi.org/10.14258/jcprm.2020015511. EDN: IWNOKH

2. Гудковский В.А. Антиокислительный комплекс плодов и ягод и его роль в защите живых систем (человек, растение, плод) от окислительного стресса и заболеваний // Основные итоги и перспективы научных исследований ВНИИСС им. И.В.Мичурина (1931-2001 гг.) Сб. науч. трудов. Тамбов, 2001, Т.1. С.76-88. EDN: VWINTU

3. Жбанова Е.В., Лукъянчук И.В., Миронов А.М. Витаминная и антиоксидантная ценность плодов сортов и отборных форм земляники селекции ФГБНУ «ФНЦ им. И.В. Мичурина» // Известия ТСХА. 2019. № 6. С. 36-48. https://doi.org/10.34677/0021-342x-2019-6-36-48. EDN: HFXKHC

4. Макаркина М.А., Павел А.Р. Биологически активные вещества в ягодах земляники, выращенной в условиях Орловской области // Современное садоводство. 2017. № 2. С. 10-16. https://doi.org/10.24411/2218-5275-2017-00021. EDN: URNGPI

5. Ермаков А.И., Арасимович В.В., Ярош Н.П., Перуанский Ю.В., Луковникова Г.А., Иконникова М.И. Методы биохимического исследования растений / Под ред. А.И. Ермакова. Л.: Агропромиздат, 1987. 430 с.

6. Причко Т.Г., Германова М.Г. Сорта земляники, рекомендуемые для быстрого замораживания // Плодоводство. 2012. Т. 24. С. 293-300. EDN: RSOUTL

7. Причко Т.Г., Германова М.Г. Пищевая и биологическая ценность ягод перспективных сортов земляники, произрастающих на юге России // Плодоводство и ягодоводство России. 2016. Т. 45. С. 137-144. EDN: WDGDMN

8. Зубов А.А., Попова И.В. Селекция земляники // Программа и методика селекции плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под общ. ред. Е.Н. Седова. Орел: ВНИИСПК, 1995. 387-416 с. EDN: HFAUWB

9. Самородова–Бианки Г.Б., Стрельцина С.А. Исследования биологически активных веществ плодов: Методические указания. Л.:ВИР, 1989. 47 с.

10. Стольникова Н.П., Ершова И.В. Анализ коллекции земляники по биохимическому составу ягод в условиях колочной степи Алтайского края // Плодоводство. 2011. Т. 23. С. 307-313.

11. Упадышев М.Т. Роль фенольных соединений в процессах жизнедеятельности садовых растений. М.: Изд. Дом МСП, 2008. 320с. EDN: QKZJWR

12. Тараховский Ю. С., Ким Ю. А., Абдрасилов Б. С., Музафаров Е. Н. Флавоноиды: биохимия, биофизика, медицина. Пущино: Sуnchrobook, 2013. 310 c.

13. Arts M., Haenen G., Wilms L.C. et al. Interactions between flavonoids and proteins: Effect on the total antioxidant capacity // J. Agric. Food Chem. 2002. Vol. 50, N 5. P. 1184-1187. https://doi.org/10.1021/jf010855a

14. Es-Safi, N.E., Ghidouche S., Ducrot P.H. Flavonoids: hemisynthesis, reactivity, characterization and free radical scavenging activity // Molecules. 2007. 12. P. 2228-2258. https://doi.org/10.3390/12092228

15. Fang J. Classification of fruits based on anthocyanin types and relevance to their health effects // Nutrition. 2015. Vol. 31, N11-12. P. 1301-1306. https://doi.org/10.1016/j.nut.2015.04.015

16. Moor U., Karp K., Poldma P., Pae A. Cultural systems affect content of anthocyanins and vitamin C in strawberry fruits // Europ. J. Hort. Sci. 2005. Vol. 70, N 4. P. 195-201.

17. Rekika D., Khanizadeh S., Deschenes M., Levasseur A., Charles M.T., Tsao R., Yang R. Antioxidant capacity and phenolic content of selected strawberry genotypes // HortScience. 2005. Vol. 40, N 6. P. 1777-1781.

https://doi.org/10.21273/HORTSCI.40.6.1777

18. Seeram N.P., Lee R., Scheuller S., Heber D. Identification of phenolic compounds in strawberries by liquidchromatography electrospray ionization mass spectroscopy (LC-ESI-MS) // Food Chemistry. 2006. Vol. 97, N 1. P. 1–11. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2005.02.047

19. Terao, J. Dietary flavonoids as antioxidants, Forum Nutr. 2009. 61. P. 87-94. https://doi.org/10.1159/000212741

Корнильев Г.В.

Изучение генетического разнообразия дикорастущих форм винограда горно-лесной зоны Крыма с использованием микросателлитных маркеров

Посмотреть аннотацию

Корнильев Г.В. Изучение генетического разнообразия дикорастущих форм винограда горно-лесной зоны Крыма с использованием микросателлитных маркеров // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 127-137. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0412

Для оценки генетических ресурсов винограда Крыма актуальным является изучение дикорастущего винограда, представленного одичавшими представителями культурного винограда Vitis vinifera L. ssp. sativa (DC) Hegi. и собственно дикого винограда Vitis vinifera ssp. sylvestris (Gmelin) Hegi., который считается прародителем культурных сортов. Цель исследования – идентификация ДНК-профилей образцов дикорастущих форм винограда Крыма для оценки их генетического разнообразия с использованием ядерных (nSSR) и хлоропластных (cpSSR) микросателлитных локусов. Исследованы 50 образцов, отобранных в горно-лесной зоне Крыма. Генотипирование выполнено по 9 nSSR- (VVS2, VVMD5, VVMD7, VVMD25, VVMD27, VVMD28, VVMD32, VrZAG62, VrZAG79) и 3 cpSSR-маркерам (ccmp3, ccmp5, ccmp10). По nSSR-локусам выявлено 88 аллелей (в среднем 9 аллелей/локус). Наиболее часто встречались образцы, в nSSR-профилях которых присутствовали аллели: VVS2₁₃₃, VVMD5₂₃₄, VVMD7₂₄₉, VVMD25₂₄₉ и VVMD25₂₆₇, VVMD27₁₉₀, VVMD28₂₃₆, VVMD32₂₄₀, VrZAG62₁₉₄, VrZAG79₂₅₁. Среднее значение эффективного число аллелей (ne) составило 4,101. Среднее значение фактической гетерозиготности (Het_o) – 0,678, наблюдаемой гетерозиготности (Het_е) – 0,734. Среднее значение коэффициента Шеннона-Виннера (I) – 1.635. По cpSSR-локусам выявлены 6 аллелей: ccmp3₁₀₆, ccmp3₁₀₇, ccmp5₁₀₄, ccmp5₁₀₅, ccmp10₁₁₄, ccmp10₁₁₅. Установлено, что 38 образцов дикорастущего винограда имели хлоротип А, 2 образца – хлоротип С, 10 образцов – хлоротип D. Построенная на основании матрицы генетических дистанций дендрограмма показала наличие трёх кластеров, которые включали, соответственно, 25, 18 и 7 образцов. Образцы с хлоротипом А были представлены в трёх кластерах; с хлоротипом D – в двух; с хлоротипом С – в одном кластере. Выявлено, что образцы №7 и №37 имели идентичный генотип. Среди дикорастущих форм идентифицированы микросателлитные профили, соответствующие генотипам Молдова, Мускат а пти гран, Примитиво, Семильон, Чауш чёрный.

Ссылки

1. Гориславец С.М., Рисованная В.И., Волков Я.А., Колосова А.А., Володин В.А. Поиск и оценка дикорастущих форм винограда, произрастающих на территории Ялтинского горно-лесного природного заповедника, с использованием молекулярных маркеров // Магарач. Виноградарство и виноделие. 2017. №1. С. 19-21. EDN: YGUPJP

2. Гориславец С.М., Володин В.А., Колосова А.А., Волков Я.А., Спотарь Г.Ю., Рисованная В.И. Характеристика биологического разнообразия аборигенных и диких форм Vitaceae Juss. как важнейшего ресурса зародышевой плазмы Крыма на основе анализа микросателлитных локусов // Вестник РФФИ. 2020, № 2. С. 25-37. https://doi.org/10.22204/2410-4639-2020-106-02-25-37. EDN: PEQNDB

3. Гориславец С.М., Володин В.А., Спотарь Г.Ю., Рисованная В.И., Алексеев Я.И. Генотипирование сортов винограда селекции Института «Магарач» на основе анализа аллельного полиморфизма SSR локусов // Магарач. Виноградарство и виноделие. 2019. Т. 21, № 4. С. 289-293. https://doi.org/10.35547/IM.2019.21.4.002. EDN: HQGYYF

4. Звягин А.С., Трошин Л.П., Мухина Ж.М. Супрун И.И. Адаптация методики микросателлитного анализа для изучения генетического разнообразия сортов винограда Пино белый, Рислинг и их клонов // Новации и эффективность производственных процессов в виноградарстве и виноделии: сборник трудов конференции. Краснодар: СКФНЦСВВ. 2005. Т. 2. С. 113-117. EDN: RBDQAH

5. Звягин А.С., Трошин Л.П. О происхождении дикого и культурного винограда // Труды КубГАУ. 2010, № 25. С. 84-88. EDN: MWEORZ

6. Методика генотипирования, идентификации и регистрации генотипов винограда с помощью анализа микросателлитных локусов (SSR-PCR) / РД 00 384830-064. 2010, 21 с.

7. Рисованная В.И., Гориславец С.М. К вопросу о генетическом родстве сортов винограда Джеват кара и Буланый // Магарач. Виноградарство и виноделие. 2018. № 2. С. 4-6. EDN: XQFXBR

8. Чесноков Ю.В.. Артемьева А.М. Оценка меры информационного полиморфизма генетического разнообразия // Сельскохозяйственная биология. 2015. Т. 50, № 5. С. 571-578. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2015.5.571rus. EDN: UXSRIX

9. De Adres M.T., Benito A., Perez-Rivera G., Ocete R., Lopez M.A., Gaforio L., Arroyo-Garcia R. Genetic diversity of wild grapevine populations in Spain and their genetic relationships with cultivated grapevines // Molecular Ecology. 2012. Vol. 21, N 4. P. 800-816. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2011.05395.x

10. Arroyo-Garcia R., Ruiz-Garcia L., Bolling L., Ocete R., Lopez M.A., Arnold C., Ergul A., Soylemezoglu G., Uzun H.I., Cabello F., Ibanez J., Aradhya M.K., Atanassov A., Atanassov I., Balint S., Cenis J.L., Constantini L., Gorislavets S., Grando M.S., Klein B.I., McGovern P.E., Merdinoglu D., Pejic I., Pelsy F., Primikirios N., Risovannaya V., Roubelakis-Angelakis K.A., Snoussi H., Sotiri P., Tamhankar S., This P., Troshin L., Malpica M., Lefort F., Martinez-Zapater J.M. Multiple origins of cultivated grapevine (Vitis vinifera L. ssp. sativa) based on chloroplast DNA polymorphisms // Molecular Ecology. 2006. Vol. 15, N 12. P. 3707-3714. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2006.03049.x

11. Barth S., Forneck A., Verzeletti F., Blaich R., Schumann F. (2009). Genotypes and phenotypes of an ex situ Vitis vinifera ssp. sylvestris (Gmel.) Beger germplasm collection from the Upper Rhine Valley // Genetic Resources and Crop Evolution. 2009. Vol. 56, N 8. P. 1171-1181. https://doi.org/10.1007/s10722-009-9443-1

12. Cunha J., Teixeira-Santos M., Brazao J., Carneiro L.C., Veloso M., Fevereiro P., Eiras-Dias J.E.J. Genetic diversity in Portuguese native Vitis vinifera L. ssp. vinifera and ssp. sylvestris // Czech J. Genet. Plant. Breed. 2010. Vol. 46. P. 54-56. https://doi.org/10.17221/2447-CJGPB

13. Grassi F., Labra M., Imazio S., Rubio R., Failla O., Scienza A., Sala F. Phylogeographical structure and conservation genetics of wild grapevine // Conservation Genet. 2010. Vol. 7. P. 837-845. https://doi.org/10.1007/s10592-006-9118-9

14. Pei D., Song S., Kang J., Zhang C., Wang J., Dong T., Ge M., Pervaiz T., Zhang P., Fang J. Characterization of simple sequence repeat (SSR) markers mined in whole grape genomes // Genes. 2023. Vol. 14, N 3. P. 663. https://doi.org/10.3390/genes14030663

15. Riaz S., Lorenzis G., Velasco D., Koehmstedt A., Maghra D., Bobokashvili Z., Musayev M., Zdunic G., Laucou A., Walker A., Failla O., Preece J., Aradhya M., Arroyo-Garcia R. Genetic diversity analysis of cultivated and wild grapevine (Vitis vinifera L.) accessions around the Mediterranean basin and Central Asia Riazetal // BMC Plant Biology. 2018. Vol. 18. P. 1-14. https://doi.org/10.1186/s12870-018-1351-0

16. This P., Jung A., Boccacci P., Borrego J., Botta R., Constantini L., Crespan M., Dangl G., Eisenheld C., Ferreira-Monteiro F., Grando S., Ibanez J., Lacombe T., Luacou V., Magalhaes R., Meredith C.P., Milani N., Peterlunger E., Regner F., Zulini L., Maul E. Development of standard set of microsatellite reference alleles for identification of grape cultivars // Theoretical and Applied Genetics. 2004. Vol. 109. P. 1448-1458. https://doi.org/10.1007/s00122-004-1760-3

17. Zdunic G., Maul E., Hancevic K., Leko M., Butorac L., Mucalo A., Maletic E. Genetic diversity of wild grapevine (Vitis vinifera L. subsp. sylvestris Gmel. Hegi) in the Eastern Adriatic Region // American Journal of Enology and Viticulture. 2017. Vol. 68, N 2. P. 252-257. https://doi.org/10.5344/ajev.2016.16072

САДОВОДСТВО И ПИТОМНИКОВОДСТВО

Головунин В.П.

Влияние гуминового препарата «Торфяной дар Марий Эл» и азофоски на вегетативное развитие жимолости синей

Посмотреть аннотацию

Головунин В.П. Влияние гуминового препарата «Торфяной дар Марий Эл» и азофоски на вегетативное развитие жимолости синей // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 138-144. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0413

Резкое подорожание минеральных удобрений и ядохимикатов вынуждает искать новые способы увеличения производства растениеводческой продукции. Наиболее перспективным направлением решения этой проблемы широкое использование биологических средств защиты растений, стимуляторов роста и бактериальных удобрений. Новизна данной работы заключается в том что на дерново-подзолистой почве Республики Марий Эл будет впервые изучено влияние гуминового препарата «Торфяной ДАР Марий Эл» на обеспеченность растений основными элементами питания и на вегетативное развитие жимолости синей. В статье приводятся предварительные результаты опыта за последние три года (2021…2023 гг.). Определение среднегодичного прироста и общего состояния растений жимолости синей проводилось по общепринятым методикам. Содержание питательных элементов в листьях в фазу созревания ягод определялось согласно следующим ГОСТам: массовая доля азота ГОСТ 13496.4-2019, массовая доля фосфора ГОСТ 32041-2012, массовая доля калия ГОСТ 30504-97. Сорт жимолости синей – Нижегородский десерт. Повторность опыта трехкратная, общая площадь – 108 м², учетная – 86,4 м², количество учетных растений – 15, размещение делянок рендоминизированное, срок внесения гуминового стимулятора роста и минерального удобрения – 1 декада мая однократно. Внесение поверхностное. Использование изучаемых агромелиорантов увеличивает содержание элементов питания в листьях и находится в пределах оптимума, что положительно сказывается на росте и развитии растений жимолости. Использование гуминового препарата и минерального удобрения в начальный период роста положительно сказывается на величине среднегодичного прироста, что способствует увеличению потенциальной урожайности жимолости синей. В результате проводимых исследований выделился вариант «Гуминовый препарат 150 мл/м² + Азофоска», где получили наилучшие результаты: массовая доля азота в листьях составила 2,64%, массовая доля подвижных соединений фосфора 0,65%, массовая доля подвижных соединений калия 1,51%, среднегодичный прирост 35 см.

Ссылки

1. Безуглова О.С., Полиенко Е.А., Горовцов А.В. Гуминовые препараты как стимуляторы роста растений и микроорганизмов (обзор) // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2016. № 4. С. 11-13. EDN: WJUMLF

2. Богомазов С.В., Левин А.А., Ткачук О.А., Лянденбурская А.В. Урожайность и качество зерна яровой пшеницы в зависимости от применения гуминового и минерального удобрения // Нива Поволжья. 2019. № 3. С. 68-73. EDN: LHKDWI

3. Векленко В.И., Айдиев Р.А., Шамин Д.В. Эффективность биологических препаратов и регуляторов роста на посевах зерновых культур // Достижения науки и техники АПК. 2007. № 10. С. 46-47. EDN: IRGJIL

4. Касатиков В.А., Шабардина Н.П. Влияние торфо-гуминового удобрения на агрохимические свойства дерново-подзолистой почвы и урожайность культур в звене севооборота // Плодородие. 2021. № 5. С. 26-27. https://doi.org/10.25680/S19948603.2021.122.07. EDN: XXACLL

5. Куприна М.Н., Колесникова В.Л. Использование стимуляторов роста на основе торфа в ягодном питомнике // Вестник КрасГАУ. 2014. № 7. С. 85-91. EDN: SNFBNT

6. Макаров О.М., Степанов А.А., Черкашина Н.Ф., Чистова О.А., Панина Н.Н. Опыт оценки влияния гуминовых препаратов на урожайность и качество картофеля // Агрохимический вестник. 2016. № 1. С. 22-26. EDN: VVRDKR

7. Мамаев В.В., Сычева И.В., Сычев М.С. Влияние гуминовых и минеральных удобрений на урожайность озимой пшеницы // Агрохимический вестник. 2015. № 5. С. 10-12. EDN: UIEDSB

8. Резвякова С.В., Резвякова Е.С. Оценка воздействия стимуляторов роста на повышение зимостойкости и урожайности малины // Вестник аграрной науки. 2017. № 5. С. 3-11. https://doi.org/10.15217/issn2587-666X.2017.5.3. EDN: ZUFLLH

9. Северин В.Ф., Кандаурова В.В., Сочилов Д.А. К размножению смородины черной зелеными черенками: продуктивность маточника и влияние гуминовых удобрений на окоренение черенков и рост саженцев // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2006. № 6. С. 22-28. EDN: KUXSRB

10. Сулейменов Б.У., Сейтменбетова А.Т. Влияние гуминового удобрения «БиоЭкоГум» на биохимические показатели качества зерна озимой пшеницы // Почвоведение и агрохимия. 2021. № 1. С. 64-69. https://doi.org/10.51886/1999-740X_2021_1_64. EDN: ISMFVW

11. Плеханова М.Н. Жимолость // Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур / Под ред. Е.Н. Седова, Т.П. Огольцовой. Орел: ВНИИСПК, 1999. С. 444-457. EDN: YHAQHF

ДЕКОРАТИВНОЕ САДОВОДСТВО

Адрицкая Н.А., Капелян А.И.

Оценка современных сортов садовых роз в розарии ботанического сада Петра Великого

Посмотреть аннотацию

Адрицкая Н.А., Капелян А.И. Оценка современных сортов садовых роз в розарии ботанического сада Петра Великого // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 145-155. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0414

Современные садовые розы – кустарниковые розы (Shrub) представляют особый интерес для ландшафтного дизайна, обладающие высокой зимостойкостью, устойчивостью к болезням и неприхотливостью в уходе. Их популярность связана с высокими декоративными качествами и экологической пластичностью, что позволяет использовать в различных композициях. В статье представлены данные по оценке зимостойкости и декоративности современных коллекционных сортов садовых роз в условиях Санкт-Петербурга. Исследования проведены в 2020…2023 годах в розарии Ботанического сада Петра Великого БИН РАН. Объектами исследований являлись 10 сортов садовых гибридных Shrub-роз. При выполнении экспериментальной работы проводили фенологические наблюдения, согласно методике, для ботанических садов по фенологическим наблюдениям за повторно цветущими розами, а также биометрические наблюдения. Оценку зимостойкости проводили по методике Лапина П.И. и Сиднеевой С.В., по 7-балльной шкале, а оценку декоративности – по методике Былова В.Н. по 5-балльной шкале. В различных условиях перезимовки в годы исследований, Shrub-розы обладали хорошей зимостойкостью. У изучаемых сортов не было выпадов растений несмотря на то, что при их выращивании не используется зимнее укрытие, а обмерзали только однолетние побеги (2021…2022…2023 гг.) и двулетние побеги в неблагоприятных условиях перезимовки (2020…2021 г). Обильное и повторное цветение характерно для большинства сортов Shrub-роз. Они устойчивы к выгоранию и дождю. По продолжительности цветения наибольшие баллы имели непрерывно цветущие сорта Prairie Joy и Sommerwind. Высокие баллы при оценке декоративных достоинств были у сортов Golden Celebration и Harlow Carr – 4,8 балла, и Graham Thomas – 4,7 балла.

Ссылки

1. Адрицкая Н.А., Капелян А.И. Сравнительная оценка зимостойкости и декоративности различных сортов роз в розарии Ботанического сада Петра Великого // Известия Санкт-Петербургского государственного аграрного университета. 2022. № 2. С. 48-58. https://doi.org/10.24412/2078-1318-2022-2-48-58. EDN: GFJIHG

2. Адрицкая Н.А, Щетинин Д.С. Зимостойкость различных групп роз в розарии Ботанического сада // Вестник студенческого научного общества. 2017. Т. 8, № 1. С. 131-133. EDN: UOANPW

3. Бардакова С.А. Особенности роста и развития садовых роз английской селекции // Вестник АПК Ставрополья. 2019. № 1. С.71-73. EDN: MDSYRZ

4. Бойко Р.В., Щербакова О.Ф., Рубцова Е.Л., Чижанькова В.И. Методические рекомендации по фенологическим наблюдениям за повторно цветущими розами. Киев, 2015. 52 с.

5. Boronkay G., Jambor-Benczur E., Mathe A. Color stability of the flowers of some rose cultivar measured in CIEDE2000 // Horticultural Science. 2009. Vol. 36, N 2. Р. 61-68. https://doi.org/10.17221/1531-HORTSCI

6. Бумбеева Л.И., Демидов А.С., Бондорина И.А. Розарий. М., 2017. 80 с.

7. Бумбеева Л.И. Современные зимостойкие сорта роз и их происхождение // Цветоводство: история, теория, практика: материалы международной научной конференции. Минск: Конфидо, 2016. С .53-56. EDN: WXWZYX

8. Былов В.Н. Основы сравнительной сортооценки декоративных растений // Интродукция и селекция цветочно-декоративных растений. М., 1978. С. 7-32.

9. Капелян А.И. Привитые и корнесобственные розы в Ботаническом саду Петра Великого // Сборник научных трудов ГНБС. 2017. Т. 145. С. 271-274. EDN: ZKBCRT

10. Кушина И.В., Карпухин М.Ю. Розы в садово-парковом строительстве // Аграрное образование и наука. 2019. № 4. С.27-37. EDN: AOFJWA

11. Young M.A., Schorr P., Baer R The Comprehensive List of Roses in Cultivation or of Historical or Botanical Importance. Shreveport: The American Rose Society. 2007. 576 p.

12. Найда Н.М., Дюндиков Е.Э. Сравнительное анатомическое исследование вегетативных органов двух сортов роз // Известия Санкт-Петербургского государственного аграрного университета. 2022. № 1. С. 17-28. https://doi.org/10.24412/2078-1318-2022-1-17-28. EDN: XZHBCA

13. Сааков С.Г. Происхождение садовых роз и направление работ в селекции их. М.: Наука, 1965. 278 с.

14. Hall T. The Kew gardener`s guide to growing roses. Frances Lincoln Ltd, 2021. 144 p.

Козлова Е.А., Макаров С.С., Зубик И.Н., Орлова Е.Е., Кузнецова И.Б.

Влияние некоторых компонентов субстратов на рост, развитие и декоративные признаки петунии гибридной (Petunia

Посмотреть аннотацию

Козлова Е.А., Макаров С.С., Зубик И.Н., Орлова Е.Е., Кузнецова И.Б. Влияние некоторых компонентов субстратов на рост, развитие и декоративные признаки петунии гибридной (Petunia × hybrida Vilm.) // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 156-165. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0415

В работе приведены результаты оценки декоративных и хозяйственных признаков петунии гибридной (Petunia × hybrida Vilm.). Популярность однолетних культур для озеленения (в частности, петунии), возросла с возможностью их использования не только в условиях открытого грунта, но в контейнерной технологии выращивания. В настоящее время приоритет отдают гибридам F1 за их компактность, обильное и продолжительное цветение, устойчивость к болезням и внешним воздействиям. Представлено описание процесса хода роста и развития некоторых сортов петунии гибридной при выращивании их в контейнерной технологии. Цель – изучение влияния некоторых компонентов субстратов на декоративные признаки петунии в условиях открытого грунта г. Москвы. Проведена оценка динамики изменения высоты рассады и изменения количества побегов в зависимости от вариантов опыта. Более быстрые сроки прохождения некоторых фенологических фаз и активное развитие отмечены у растений петунии гибридной при выращивании на субстрате с добавлением гидрогеля. Начало бутонизации зафиксировано через 82 дня от посева семян, что характерно для крупноцветковых петуний. Наибольшее количество побегов и цветков (6 шт.) петунии гибридной на дату измерения (23 июня) отмечено при использовании субстрата торф + гидрогель (3:1), что больше других вариантов на 1…2 цветка. Полученные результаты могут быть применены в городском и частном садоводстве в условиях открытого грунта г. Москвы.

Ссылки

1. Баранова Е.Г., Саломатин В.А. Биологическое разнообразие и перспективы декоративного использования ресурсов петунии гибридной (Petunia hуbrida) коллекции ВНИИТТИ // Вопросы, гипотезы, ответы: наука XXI века. Кн. 9. Краснодар: Априори. 2015. С. 299-316. EDN: TQDQLT

2. Бейдеман И.Н. Методика изучения фенологии растений и растительных сообществ. Новосибирск: Наука. 1974. 155 с.

3. Велижанских Л.В. Агротехнические элементы выращивания петунии многоцветковой (Petunia Multiflora) в условиях Северного Зауралья // Инновационные технологии в полевом и декоративном растениеводстве: материалы 3 всероссийской научно-практической конференции. Курган: Курганская ГСХА, 2019. С. 63-67. EDN: KLXDZH

4. Горынина А., Пуха Д., Ермолаева Н.В. Влияние многолетнего применения основной обработки почвы на развитие агрофитоценоза многолетних трав и агрофизические свойства дерново-подзолистых почв в условиях костромской области // Актуальные вопросы развития науки и технологий: материалы 71-й студенческой научной и 72-й межрегиональной студенческой научных конференций. Караваево: Костромская ГСХА, 2021. С. 17-21. EDN: RLBCEF

5. Козлова Е.А. Совершенствование технологий выращивания, размножения и оценка декоративных качеств линий петунии гибридной: автореф. дисс. … канд. с.-х. наук. М., 2016. 26 с. EDN: ZQGYUN

6. Колесникова Е.Г. Петунии, сурфинии, калибрахоа. М.: МСП. 2004. 64 с.

7. Кудрявец Д.Б., Петренко Н.А. Однолетние и многолетние декоративные растения для цветников (иллюстрированный атлас). М.: Фитон XXI, 2014. 368 с.

8. Павленко Н.В., Варфоломеева Н.И. Биологические и технологические основы выращивания цветочных культур: учеб. пособие. Краснодар: КубГАУ, 2012. 248 с.

9. Соколова М.А., Кузичев О.Б., Гончарова С.В., Пугачева Г.М. Современные направления в селекции некоторых цветочных культур // Достижения науки и техники АПК. 2019. Т. 33, № 2. С. 34-38. https://doi.org/10.24411/0235-2451-2019-10209. EDN: UYSZDH

10. Соколова Т.А., Бочкова И.Ю. Декоративное растениеводство. Цветоводство: учеб. М.: Академия, 2010. 432 с.

11. Чуб В.В. Почему петуния – гибридная? // Ботанический сад МГУ на Ленинских горах: офиц. сайт. 31.07.2020. https://botsad.msu.ru/2020/07/31/pochemu-petuniya-gibridnaya/

12. Чулкова В. В. Особенности использования почвенных смесей при возделывании декоративных растений // Аграрное образование и наука. 2021. № 2. http://elar.urgau.ru/images/2021/02_2021/02_2021.pdf. EDN: HNHPGV

Масалова Л.И

Итоги изучения биоресурсной коллекции лиственных североамериканских растений дендрария ВНИИСПК

Посмотреть аннотацию

Масалова Л.И. Итоги изучения биоресурсной коллекции лиственных североамериканских растений дендрария ВНИИСПК // Современное садоводство. 2023. № 4. С. 165-171. https://www.doi.org/10.52415/23126701_2023_0416

В статье приведен таксономический анализ североамериканских лиственных растений генетической коллекции дендрария ВНИИСПК. Самыми многочисленным по числу представителей объектов исследования является семейство Rosaceae (6 родов, 10 видов и форм). Ежегодным отличным цветением и плодоношением характеризуются следующие виды: Juglans rupestris – представитель семейства Juglandaceae и Ptelea trifoliata – представитель семейства Rutaceae. Наиболее высокие результаты по устойчивости к вредителям и болезням показали: Juglans rupestris – представитель семейства Juglandaceae и Ptelea trifoliata – представитель семейства Rutaceae. Наиболее декоративными по результатам наших исследований оказались следующие растения: Juglans rupestris, Ptelea trifoliata, Crataegus submollis, Betula lenta, Quercus rubra, Quercus macrocarpa, Berberis ottawiensis f. purpurea и растения рода Mahonia. Из исследуемых растений следует рекомендовать виды и формы, обладающие ежегодным стабильным цветением и плодоношением: Juglans rupestris, Crataegus submollis, Ptelea trifoliata и Padus virginiana.

Ссылки

1. Бабич Н.А., Залывская О.С., Травникова Г.И. Интродуценты в зеленом строительстве северных городов: монография. Архангельск: Арханг. гос. техн. ун-т, 2008. 144 с. EDN:QKZMWT.

2. Гнаткович П.С., Рунова Е.М. Перспективы внедрения интродуцентов частных садов в ассортимент зеленых насаждений города Братска // Лесотехнический журнал. 2014. Т. 4, № 2(14). С. 68-78. https://doi.org/10.12737/4509. EDN:SJEIJB.

3. Головач А.Г. Деревья, кустарники и лианы ботанического сада БИН АН СССР. Л.: Наука, 1980. 188 с.

4. Емельянова О.Ю., Цой М.Ф., Павленкова Г.А., Масалова Л.И., Фирсов А.И. Генетическая коллекция дендрария ВНИИСПК как центр сохранения растительного биоразнообразия // Селекция и сорторазведение садовых культур. 2017. Т. 4, № 1-2. С. 41-44. EDN:ZBIWPN.

5. Котелова Н.В., Виноградова Н.В. Оценка декоративности деревьев и кустарников по сезонам года // Физиология и селекция растений и озеленение городов. М.: МЛТИ, 1974. С. 37-44.

6. Мартынов Л.Г. Цветение и плодоношение древесных растений, интродуцированных в условиях таежной зоны (на примере Ботанического сада института биологии Коми научного центра) // Известия Коми научного центра УрО РАН. № 1 (37). Сыктывкар, 2019. https://doi.org/10.19110/1994-5655-2019-1-56-63. EDN:GRHXIR.

7. Масалова Л.И., Фирсов А.Н., Емельянова О.Ю. Анализ сроков цветения декоративных древесных интродуцентов генофонда ВНИИСПК // Актуальные проблемы лесного комплекса. 2017. № 47. С. 189–192. EDN:YOXRFL.

8. Масалова Л.И. Перспективность использования североамериканских плодовых растений в садоводстве ЦЧР России // Селекция и сорторазведение садовых культур. 2020. Т. 7, № 1-2. С. 102-105. https://doi.org/10.24411/2500-0454-2020-11226. EDN:DBPALL.

9. Масалова Л.И., Емельянова О.Ю. Перспективность использования декоративных растений рода Berberis в культурной дендрофлоре Орловской области // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2021. № 5. С. 38-41. https://doi.org/10.30850/vrsn/2021/5/38-41. EDN:AOAUIW.

10. Масалова Л.И. Интродукция и перспективы использования в зеленом строительстве североамериканских древесных растений (на примере Орловской области): автореф. дис. … канд. с.-х. наук. Мичуринск., 2022.

11. Нетрадиционные плодовые культуры / Сост. Е.П. Куминов. Ростов-на-Дону: Феникс; Харьков: Фолио, 2005. 256 с.

12. Петровская-Баранова Т.П. Физиология адаптации и интродукция растений. М.: Наука, 1983. 152 с.

13. Сорокопудов В.Н., Ренгартен Г.А., Подкопайло Р.В., Литвинова Л.С., Ширина Л.С., Сорокопудова О.А., Евтухова М.В., Юшин Ю.В., Рыбицкий С.М., Сизиков С.В., Матущак М.M. Совершенствование сортимента нетрадиционных садовых культур России // Фундаментальные исследования. 2013. № 11-1. С. 115-121. EDN:RQRUZT.

СОВРЕМЕННОЕ САДОВОДСТВО - CONTEMPORARY HORTICULTURE

Свежий номер