Рекомбинантная продукция, видоспецифическая активность на канале TRPA1 и важная роль N-концевого остатка токсина ProTx-I из яда тарантула Thrixopelma pruriens
- Авторы: Шулепко М.А.1, Джан М.1, Живов Е.А.2,3, Кульбацкий Д.С.2, Парамонов А.С.2, Чэ Ю.1, Кузнецов А.В.1, Попов А.В.2,4, Кирпичников М.П.2,5, Шенкарев З.О.2,3, Люкманова Е.Н.1,2,3,5
-
Учреждения:
- Шэньчжэньский МГУ-ППИ Университет
- Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук
- Московский центр перспективных исследований
- Курчатовский комплекс медицинской приматологии НИЦ «Курчатовский институт»
- Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
- Выпуск: Том 17, № 4 (2025)
- Страницы: 121-129
- Раздел: Экспериментальные статьи
- URL: https://journal-vniispk.ru/2075-8251/article/view/365066
- DOI: https://doi.org/10.32607/actanaturae.27590
- ID: 365066
Цитировать
Аннотация
Токсин ProTx-I из яда тарантула Thrixopelma pruriens ингибирует потенциал-зависимые натриевые (NaV), калиевые и кальциевые каналы, а также хемочувствительный канал TRPA1, влияя на процессы их активации. Благодаря активности в отношении каналов NaV1.7, NaV1.8 и TRPA1, участвующих в восприятии и распространении болевых сигналов, ProTx-I может рассматриваться в качестве модели для создания анальгетиков нового поколения. ProTx-I состоит из 35 аминокислотных остатков, при этом три дисульфидные связи в его структуре образуют мотив ингибиторного цистинового узла, что затрудняет рекомбинантную продукцию токсина. Разработка эффективной системы продукции ProTx-I необходима для изучения механизма действия токсина на молекулярном уровне. В представленной работе мы сравнили ряд подходов к бактериальной продукции дисульфидсодержащих токсинов. Цитоплазматическая экспрессия ProTx-I в составе слитого растворимого белка с тиоредоксином или глутатион-S-трансферазой не позволила получить правильно свернутый токсин. В то же время ProTx-I с природной структурой был получен в ходе «прямой» экспрессии в виде цитоплазматических телец включения с последующей ренатурацией, а также при секреции в периплазматическое пространство в слитой конструкции с мальтозосвязывающим белком. Активность рекомбинантного ProTx-I была изучена электрофизиологическими методами на ооцитах Xenopus laevis, экспрессирующих каналы TRPA1 крысы и человека. Токсин показал большую активность на канале крысы, чем на канале человека (IC50 = 250 ± 70 и 840 ± 190 нМ соответственно). Также было обнаружено, что наличие дополнительного N-концевого остатка метионина у токсина, полученного в ходе «прямой» экспрессии, значительно ослабляет активность ProTx-I.
Об авторах
Михаил Анатольевич Шулепко
Шэньчжэньский МГУ-ППИ Университет
Email: mikhailshulepko@yandex.ru
Биологический факультет
Китай, провинция Гуандун, Шэньчжэнь, 518172Менди Джан
Шэньчжэньский МГУ-ППИ Университет
Email: zmd010816@163.com
Биологический факультет
Китай, провинция Гуандун, Шэньчжэнь, 518172Евгений Андреевич Живов
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук; Московский центр перспективных исследований
Email: evgeniy-kovalenko2016@mail.ru
Россия, Москва, 117997; Москва, 123592
Дмитрий Сергеевич Кульбацкий
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук
Email: d.kulbatskiy@gmail.com
Россия, Москва, 117997
Александр Сергеевич Парамонов
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук
Email: apar@nmr.ru
ORCID iD: 0000-0003-3614-560X
Россия, Москва, 117997
Юйци Чэ
Шэньчжэньский МГУ-ППИ Университет
Email: cheyuqi1997@163.com
Биологический факультет
Китай, провинция Гуандун, Шэньчжэнь, 518172Александр В. Кузнецов
Шэньчжэньский МГУ-ППИ Университет
Email: kuznetsov.a25@icloud.com
Биологический факультет
Китай, провинция Гуандун, Шэньчжэнь, 518172А. В. Попов
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук; Курчатовский комплекс медицинской приматологии НИЦ «Курчатовский институт»
Email: lyukmanova_ekaterina@smbu.edu.cn
Россия, Москва, 117997; Краснодарский край, Сочи, 354376
Михаил Петрович Кирпичников
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук; Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
Email: kirpichnikov@inbox.ru
Междисциплинарная научно-образовательная школа «Молекулярные технологии живых систем и синтетическая биология», биологический факультет Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова
Россия, Москва, 117997; Москва, 119234Захар Олегович Шенкарев
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук; Московский центр перспективных исследований
Email: zakhar-shenkarev@yandex.ru
Россия, Москва, 117997; Москва, 123592
Екатерина Назымовна Люкманова
Шэньчжэньский МГУ-ППИ Университет; Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук; Московский центр перспективных исследований; Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
Автор, ответственный за переписку.
Email: lyukmanova_ekaterina@smbu.edu.cn
Биологический факультет, Шэньчжэньский МГУ-ППИ Университет; Междисциплинарная научно-образовательная школа «Молекулярные технологии живых систем и синтетическая биология», биологический факультет Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова
Китай, провинция Гуандун, Шэньчжэнь, 518172; Москва, 117997 Россия; Москва, 123592 Россия; Москва, 119234 РоссияСписок литературы
- Kuhn-Nentwig L, Stöcklin R, Nentwig W. Venom Composition and Strategies in Spiders. In: Advances in Insect Physiology. Vol 40. Elsevier; 2011:1−86. doi: 10.1016/B978-0-12-387668-3.00001-5
- Peigneur S, de Lima ME, Tytgat J. Phoneutria nigriventer venom: A pharmacological treasure. Toxicon. 2018;151:96−110. doi: 10.1016/j.toxicon.2018.07.008
- Lyukmanova EN, Shenkarev ZO. Toxins from Animal Venom—A Rich Source of Active Compounds with High Pharmacological Potential. Toxins. 2024;16(12):512. doi: 10.3390/toxins16120512
- Cardoso FC, Lewis RJ. Structure-Function and Therapeutic Potential of Spider Venom-Derived Cysteine Knot Peptides Targeting Sodium Channels. Front Pharmacol. 2019;10:366. doi: 10.3389/fphar.2019.00366
- Kintzing JR, Cochran JR. Engineered knottin peptides as diagnostics, therapeutics, and drug delivery vehicles. Curr Opin Chem Biol. 2016;34:143−150. doi: 10.1016/j.cbpa.2016.08.022
- Milescu M, Bosmans F, Lee S, Alabi AA, Kim JI, Swartz KJ. Interactions between lipids and voltage sensor paddles detected with tarantula toxins. Nat Struct Mol Biol. 2009;16(10):1080−1085. doi: 10.1038/nsmb.1679
- Middleton RE, Warren VA, Kraus RL, et al. Two tarantula peptides inhibit activation of multiple sodium channels. Biochemistry. 2002;41(50):14734−14747. doi: 10.1021/bi026546a
- Gui J, Liu B, Cao G, et al. A Tarantula-Venom Peptide Antagonizes the TRPA1 Nociceptor Ion Channel by Binding to the S1–S4 Gating Domain. Current Biology. 2014;24(5):473−483. doi: 10.1016/j.cub.2014.01.013
- Maatuf Y, Geron M, Priel A. The Role of Toxins in the Pursuit for Novel Analgesics. Toxins (Basel). 2019;11(2). doi: 10.3390/toxins11020131
- Souza Monteiro de Araujo D, Nassini R, Geppetti P, De Logu F. TRPA1 as a therapeutic target for nociceptive pain. Expert Opinion on Therapeutic Targets. 2020;24(10):997−1008. doi: 10.1080/14728222.2020.1815191
- Dormer A, Narayanan M, Schentag J, et al. A Review of the Therapeutic Targeting of SCN9A and Nav1.7 for Pain Relief in Current Human Clinical Trials. J Pain Res. 2023;16:1487−1498. doi: 10.2147/JPR.S388896
- Moore SJ, Cochran JR. Engineering knottins as novel binding agents. Methods Enzymol. 2012;503:223−251. doi: 10.1016/B978-0-12-396962-0.00009-4
- Fitches EC, Pyati P, King GF, Gatehouse JA. Fusion to snowdrop lectin magnifies the oral activity of insecticidal ω-Hexatoxin-Hv1a peptide by enabling its delivery to the central nervous system. PLoS One. 2012;7(6):e39389. doi: 10.1371/journal.pone.0039389
- Yang S, Pyati P, Fitches E, Gatehouse JA. A recombinant fusion protein containing a spider toxin specific for the insect voltage-gated sodium ion channel shows oral toxicity towards insects of different orders. Insect Biochem Mol Biol. 2014;47(100):1−11. doi: 10.1016/j.ibmb.2014.01.007
- Monfared N, Ahadiyat A, Fathipour Y, Mianroodi RA. Evaluation of recombinant toxin JFTX-23, an oral-effective anti-insect peptide from the spider Selenocosmia jiafu venom gland proteome. Toxicon. 2022;217:78−86. doi: 10.1016/j.toxicon.2022.08.003
- Matsubara FH, Meissner GO, Herzig V, et al. Insecticidal activity of a recombinant knottin peptide from Loxosceles intermedia venom and recognition of these peptides as a conserved family in the genus. Insect Mol Biol. 2017;26(1):25−34. doi: 10.1111/imb.12268
- Costa S, Almeida A, Castro A, Domingues L. Fusion tags for protein solubility, purification and immunogenicity in Escherichia coli: the novel Fh8 system. Front Microbiol. 2014;5:63. doi: 10.3389/fmicb.2014.00063
- Berlec A, Strukelj B. Current state and recent advances in biopharmaceutical production in Escherichia coli, yeasts and mammalian cells. J Ind Microbiol Biotechnol. 2013;40(3-4):257−274. doi: 10.1007/s10295-013-1235-0
- Klint JK, Senff S, Saez NJ, et al. Production of recombinant disulfide-rich venom peptides for structural and functional analysis via expression in the periplasm of E. coli. PLoS One. 2013;8(5):e63865. doi: 10.1371/journal.pone.0063865
- Anangi R, Rash LD, Mobli M, King GF. Functional Expression in Escherichia coli of the Disulfide-Rich Sea Anemone Peptide APETx2, a Potent Blocker of Acid-Sensing Ion Channel 3. Marine Drugs. 2012;10(7):1605−1618. doi: 10.3390/md10071605
- Logashina YA, Solstad RG, Mineev KS, et al. New Disulfide-Stabilized Fold Provides Sea Anemone Peptide to Exhibit Both Antimicrobial and TRPA1 Potentiating Properties. Published online 2017:23.
- Lyukmanova EN, Mironov PA, Kulbatskii DS, et al. Recombinant Production, NMR Solution Structure, and Membrane Interaction of the Phα1β Toxin, a TRPA1 Modulator from the Brazilian Armed Spider Phoneutria nigriventer. Toxins. 2023;15(6):378. doi: 10.3390/toxins15060378
- Berkut AA, Peigneur S, Myshkin MY, et al. Structure of Membrane-active Toxin from Crab Spider Heriaeus melloteei Suggests Parallel Evolution of Sodium Channel Gating Modifiers in Araneomorphae and Mygalomorphae. J Biol Chem. 2015;290(1):492−504. doi: 10.1074/jbc.M114.595678
- Shlyapnikov YM, Andreev YA, Kozlov SA, Vassilevski AA, Grishin EV. Bacterial production of latarcin 2a, a potent antimicrobial peptide from spider venom. Protein Expression and Purification. 2008;60(1):89−95. doi: 10.1016/j.pep.2008.03.011
- Paiva ALB, Matavel A, Peigneur S, et al. Differential effects of the recombinant toxin PnTx4(5-5) from the spider Phoneutria nigriventer on mammalian and insect sodium channels. Biochimie. 2016;121:326−335. doi: 10.1016/j.biochi.2015.12.019
- Zhang H, Huang PF, Meng E, et al. An efficient strategy for heterologous expression and purification of active peptide hainantoxin-IV. PLoS One. 2015;10(2):e0117099. doi: 10.1371/journal.pone.0117099
- Shulepko MA, Lyukmanova EN, Shenkarev ZO, et al. Towards universal approach for bacterial production of three-finger Ly6/uPAR proteins: Case study of cytotoxin I from cobra N. oxiana. Protein Expr Purif. 2017;130:13−20. doi: 10.1016/j.pep.2016.09.021
- Andreev YA, Kozlov SA, Vassilevski AA, Grishin EV. Cyanogen bromide cleavage of proteins in salt and buffer solutions. Anal Biochem. 2010;407(1):144−146. doi: 10.1016/j.ab.2010.07.023
- Rupasinghe DB, Herzig V, Vetter I, et al. Mutational analysis of ProTx-I and the novel venom peptide Pe1b provide insight into residues responsible for selective inhibition of the analgesic drug target NaV1.7. Biochem Pharmacol. 2020;181:114080. doi: 10.1016/j.bcp.2020.114080
- Vásquez-Escobar J, Benjumea-Gutiérrez DM, Lopera C, et al. Heterologous Expression of an Insecticidal Peptide Obtained from the Transcriptome of the Colombian Spider Phoneutria depilate. Toxins (Basel). 2023;15(7):436. doi: 10.3390/toxins15070436
- Dubovskii PV, Dubinnyi MA, Konshina AG, et al. Structural and Dynamic “Portraits” of Recombinant and Native Cytotoxin I from Naja oxiana: How Close Are They? Biochemistry. 2017;56(34):4468−4477. doi: 10.1021/acs.biochem.7b00453
- Lyukmanova EN, Shenkarev ZO, Khabibullina NF, et al. N-terminal fusion tags for effective production of g-protein-coupled receptors in bacterial cell-free systems. Acta Naturae. 2012;4(4):58−64.
- Saez NJ, Cristofori-Armstrong B, Anangi R, King GF. A Strategy for Production of Correctly Folded Disulfide-Rich Peptides in the Periplasm of E. coli. Methods Mol Biol. 2017;1586:155−180. doi: 10.1007/978-1-4939-6887-9_10
- Li J, Zhang H, Liu J, Xu K. Novel genes encoding six kinds of three-finger toxins in Ophiophagus hannah (king cobra) and function characterization of two recombinant long-chain neurotoxins. Biochem J. 2006;398(2):233−242. doi: 10.1042/BJ20060004
- Clement H, Flores V, De la Rosa G, Zamudio F, Alagon A, Corzo G. Heterologous expression, protein folding and antibody recognition of a neurotoxin from the Mexican coral snake Micrurus laticorallis. J Venom Anim Toxins Incl Trop Dis. 2016;22(1):25. doi: 10.1186/s40409-016-0080-9
- Lyukmanova EN, Shulga AA, Arsenieva DA, et al. A Large-Scale Expression in Escherichia coli of Neurotoxin II from Naja oxiana Fused with Thioredoxin. Russian Journal of Bioorganic Chemistry. 2004;30(1):25−34. doi: 10.1023/B:RUBI.0000015770.38602.e3
Дополнительные файлы

