Оценка влияния синтетического тимического гексапептида в системе in vitro на уровни экспрессии NF-κb, IFNα/βR и CD119 нейтрофильных гранулоцитов у пациентов с хроническими герпесвирусными коинфекциями
- Авторы: Нестерова И.В.1,2, Халтурина Е.О.3, Нелюбин В.Н.4, Хайдуков С.В.5, Чудилова Г.А.2
-
Учреждения:
- ФГАБОУ ВО Российский университет дружбы народов Министерства образования и науки России
- ЦНИЛ ФГБОУ ВО Кубанский государственный медицинский университет Минздрава России
- ФГАОУ ВО Первый МГМУ имени И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)
- ФГБОУ ВО Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова Минздрава России
- ФНЦ ФГБУН Институт биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинников
- Выпуск: Том 12, № 5 (2022)
- Страницы: 850-858
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- URL: https://journal-vniispk.ru/2220-7619/article/view/119109
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-EOT-1928
- ID: 119109
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Стратегии взаимодействие герпесвирусов с клетками организма человека весьма сложны и многогранны. С одной стороны, существуют врожденные дефекты противовирусной иммунной защиты, в том числе и системы интерферонов, на фоне которых развиваются хронические упорно рецидивирующие вирусные инфекции, такие как повторные респираторные вирусные, герпесвирусные, папилломавирусные инфекции. С другой стороны, многие вирусы сами способны повреждать как иммунную систему, так и систему интерферонов. При врожденных и приобретенные дефектах системы интерферонов наблюдается врожденная или индуцированная мутация генов молекул, участвующих в сигналлинге, направленном на повышение экспрессии генов, ответственных за синтез IFN. Одной из стратегий вирусов является нарушение ряда клеточных сигнальных путей — факторов транскрипции, в том числе ядерного фактора NF-kB. В настоящее время описана противовирусная активность НГ. При этом механизмы противовирусной защиты нейтрофильных гранулоцитов (НГ) и в частности особенности экспрессии NF-kB в доступной нам литературе не освещены. Цель исследования: изучить особенности экспрессии ядерного фактора NF-kB, мембранных рецепторов к IFNα и IFNγ на НГ у пациентов, страдающих атипичными хроническими активными герпесвирусными инфекциями (АХА-ГВИ), с последующей оценкой в эксперименте in vitro эффектов влияния на них синтетического аналога активного центра гормона тимопоэтина аргинил-альфа-аспартил-лизил-валил-тирозил-аргинин (гексапептид (ГП), Иммунофан, Россия). Материалы и методы. Под нашим наблюдением находилось 25 пациентов обоих полов в возрасте от 23 до 64 лет, страдающих АХА-ГВИ, манифестирующими синдромом хронической усталости и различными когнитивными расстройствами. Дизайн исследования: этап 1 включал комплекс традиционных методов (сбор анамнеза, методы физикального обследования, ОАК и пр.), дополнительно для детекции герпес- вирусных инфекций использовались методы серодиагностики (определение IgM VCA EBV, IgG VCA EBV, IgM CMV, IgG CMV IgM HSV1/2, IgG HSV1/2 методом ИФА). Для обнаружения генома вирусов в биоматериалах (кровь, слюна, моча, соскоб с миндалин и задней стенки глотки) был использован метод ПЦР-РВ. Этап 2 — эксперимент in vitro: изучено 32 образца крови от 8 условно здоровых человек и 375 образцов крови от 25 пациентов с АХА-ГВИ: определен процент НГ, экспрессирующих NF-kB, IFNα/βR, IFNγR и уровни их MFI с помощью проточной цитофлюориметрии до и после инкубации с ГП (гексапептидом). Результаты. В результате проведенного исследования у пациентов, страдающих АХА-ГВИ, был выявлен низкий уровень экспрессии (MFI) NF-kB у 100% НГ, который сочетался со сниженным процентом НГ, экспрессирующих IFNα/βR и IFNγR, и низким уровнем сывороточных IFNα и IFNγ по сравнению со здоровыми людьми. В эксперименте in vitro ГП оказывает неоднозначные вариативные эффекты влияния на экспрессию ядерного фактора NF-kB и мембранных рецепторов IFNα/β и IFNγ НГ пациентов, страдающих АХА-ГВИ. Было показано, что 100% НГ экспрессировали NF-kB после воздействия ГП. Но только 48% пациентов (ГИ2) восстановили уровень экспрессии NF-kB (MFI) до нормального значения, а в 52% случаев (ГИ1) динамики не выявлено. В то же время ГП увеличил процент НГ, экспрессирующих IFNα/βR в ГИ2 и увеличил процент НГ, экспрессирующих IFNγ в ГИ 1. Заключение. Было показано, что ГП в эксперименте in vitro оказывает неоднозначное влияние на экспрессию NF-kB, процент НГ, экспрессирующих IFNα/β и IFNγR у пациентов с АХА-ГВИ. Мы предполагаем, что различный ответ на влияние ГП связан с врожденным или вторичным дефицитом NF-kB.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
И. В. Нестерова
ФГАБОУ ВО Российский университет дружбы народов Министерства образования и науки России; ЦНИЛ ФГБОУ ВО Кубанский государственный медицинский университет Минздрава России
Email: inesterova1@yandex.ru
Е. О. Халтурина
ФГАОУ ВО Первый МГМУ имени И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)
Автор, ответственный за переписку.
Email: jane_k@inbox.ru
В. Н. Нелюбин
ФГБОУ ВО Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова Минздрава России
Email: vlnelyubin@mail.ru
С. В. Хайдуков
ФНЦ ФГБУН Институт биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинников
Email: hsv@mail.ibch.ru
Г. А. Чудилова
ЦНИЛ ФГБОУ ВО Кубанский государственный медицинский университет Минздрава России
Email: chudilova2015@yandex.ru
Список литературы
- Amici C., Belardo G., Rossi A., Santoro M.G. Activation of I kappa b kinase by herpes simplex virus type 1. A novel target for anti-herpetic therapy. J. Biol. Chem., 2001, vol. 276, no. 31, pp. 28759–28766.
- Caselli E., Fiorentini S., Amici C., Di Luca D., Caruso A., Santoro M.G. Human herpesvirus 8 acute infection of endothelial cells induces monocyte chemoattractant protein 1-dependent capillary-like structure formation: role of the IKK/NF-kB pathway. Blood, 2007, vol. 109, no. 7, pp. 2718–2726. doi: 10.1182/blood-2006-03-012500
- Charostad J., Nakhaie M., Dehghani A., Faghihloo E. The interplay between EBV and KSHV viral products and NF-kB pathway in oncogenesis. Infect. Agents Cancer, 2020, vol. 15: 62. doi: 10.1186/s13027-020-00317-4
- Chew T., Taylor K.E., Mossman K.L. Innate and adaptive immune responses to herpes simplex virus. Viruses, 2009, vol. 1, pp. 979–1002. doi: 10.3390/v1030979
- De Jesus A.A., Hou Y., Brooks S. Distinct interferon signatures and cytokine patterns define additional systemic autoinflammatory diseases. J. Clin. Invest., 2020, vol. 130, no. 4, pp. 1669–1682. doi: 10.1172/JCI129301
- De Oliveira D.E., Ballon G., Cesarman E. NF-kB signaling modulation by EBV and KSHV. Trends Microbiol., 2010, vol. 18, no. 6, pp. 248–257.
- Dell’Oste V., Gatti D., Giorgio A.G., Gariglio M., Landolfo S., De Andrea M. The interferon-inducible DNA-sensor protein IFI16: a key player in the antiviral response. New Microbiol., 2015, vol. 38, no. 1, pp. 5–20.
- Ehrlich E.S., Chmura J.C., Smith J.C., Kalu N.N., Hayward G.S. KSHV RTA abolishes NF-kB responsive gene expression during lytic reactivation by targeting vFLIP for degradation via the proteasome. PLoS One, 2014, vol. 9, no. 3: e91359. doi: 10.1371/journal.pone.0091359
- Gianni T., Leoni V., Campadelli-Fiume G. Type I interferon and NF-kappaB activation elicited by herpes simplex virus gH/gL via alphavbeta3 integrin in epithelial and neuronal cell lines. J. Virol., 2013, vol. 87, no. 24, pp. 13911–13916.
- Hatada E.N., Krappmann D., Scheidereit C. NF-kappaB and the innate immune response. Curr. Opin. Immunol., 2000, vol. 12, pp. 52–58. doi: 10.1016/S0952-7915(99)00050-3
- Hiscott J. Convergence of the NF-kappaB and IRF pathways in the regulation of the innate antiviral response. Cytokine Growth Factor Rev., 2007, vol. 18, pp. 483–490.
- Jiang J., Zhao M., Chang C., Wu H., Lu Q. Type I interferons in the pathogenesis and treatment of autoimmune diseases. Clin. Rev. Allergy Immunol., 2020, vol. 59, no. 2, pp. 248–272. doi: 10.1007/s12016-020-08798-2
- Kalamvoki M., Roizman B. HSV-1 degrades, stabilizes, requires, or is stung by STING depending on ICP0, the US3 protein kinase, and cell derivation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2014, vol. 111, pp. E611–E617. doi: 10.1073/pnas.1323414111
- Kawai T., Takahashi K., Sato S., Coban C., Kumar H., Kato H., Ishii K.J., Takeuchi O., Akira S. IPS-1, an adaptor triggering RIG-I- and Mda5-mediated type I interferon induction. Nat. Immunol., 2005, vol. 6, pp. 981–988. doi: 10.1038/ni1243
- Kim J.C., Lee S.Y., Kim S.Y., Kim J.K., Kim H.J., Lee H.M., Choi M.S., Min J.S., Kim M.J., Choi H.S., Ahn J.K. HSV-1 ICP27 suppresses NF-kappaB activity by stabilizing IkappaBalpha. FEBS Lett., 2008, vol. 582, no. 16, pp. 2371–2376. doi: 10.1016/ j.febslet.2008.05.044
- Le Negrate G. Viral interference with innate immunity by preventing NF-kappaB activity. Cell Microbiol., 2012, vol. 14, no. 2, pp. 168–181. doi: 10.1111/j.1462-5822.2011.01720.x
- Lepelley A., Martin-Niclós M.J., Le Bihan M., Mutations in COPA lead to abnormal trafficking of STING to the Golgi and interferon signaling. J. Exp. Med., 2020, vol. 217, no. 11: e20200600. doi: 10.1084/jem.20200600
- Low-Calle A.M., Prada-Arismendy J., Castellanos J.E. Study of interferon-beta antiviral activity against Herpes simplex virus type 1 in neuron-enriched trigeminal ganglia cultures. Virus Res., 2014, vol. 180, pp. 49–58. doi: 10.1016/j.virusres.2013.12.022
- Ma F., Li B., Liu S.Y., Iyer S.S., Yu Y., Wu A., Cheng G. Positive feedback regulation of type I IFN production by the IFN-inducible DNA sensor cGAS. J. Immunol., 2015, vol. 194, pp. 1545–1554. doi: 10.4049/jimmunol.1402066
- Marino-Merlo F., Papaianni E., Frezza C., Pedatella S., De Nisco M., Macchi B., Grelli S., Mastino A. NF-kB-dependent production of ROS and restriction of HSV-1 infection in U937 monocytic cells. Viruses, 2019, vol. 11, no. 5: 428. doi: 10.3390/v11050428
- Michalska A., Blaszczyk K., Wesoly J., Bluyssen A positive feedback amplifier circuit that regulates interferon (IFN)-stimulated gene expression and controls type I and type II IFN responses. Front. Immunol., 2018, vol. 9: 1135. doi: 10.3389/fimmu.2018.01135
- O’Neill L.A., Bowie A.G. Sensing and signaling in antiviral innate immunity. Curr. Biol., 2010, vol. 20, pp. R328–R333. doi: 10.1016/j.cub.2010.01.044
- Okada S., Asano T., Moriya K., Boisson-Dupuis S. Human STAT1 gain-of-function heterozygous mutations: chronic mucocutaneous candidiasis and type I interferonopathy. J. Clin. Immunol., 2020, vol. 40, no. 8, pp. 1065–1081. doi: 10.1007/s10875-020-00847-x
- Poma P. NF-kB and disease. Int. J. Mol. Sci., 2020, vol. 21, no. 23: 9181. doi: 10.3390/ijms21239181
- Roizman B., Whitley R.J. An inquiry into the molecular basis of HSV latency and reactivation. Annu. Rev. Microbiol., 2013, vol. 67, pp. 355–374. doi: 10.1146/annurev-micro-092412-155654
- Santoro M.G., Rossi A., Amici C. NF-kappaB and virus infection: who controls whom. EMBO J., 2003, vol. 22, pp. 2552–2560.
- Sen R., Baltimore D. Multiple nuclear factors interact with the immunoglobulin enhancer sequences. Cell, 1986, vol. 46, no. 5, pp. 705–716.
- Sun L., Wu J., Du F., Chen X., Chen Z.J. Cyclic GMP-AMP synthase is a cytosolic DNA sensor that activates the type I interferon pathway. Science, 2013, vol. 339, pp. 786–791. doi: 10.1126/science.1232458
- Swiecki M., Omattage N.S., Brett T.J. BST-2/tetherin: structural biology, viral antagonism, and immunobiology of a potent host antiviral factor. Mol. Immunol., 2013, vol. 54, pp. 132–139. doi: 10.1016/j.molimm.2012.11.008
- Unterholzner L. The interferon response to intracellular DNA: why so many receptors? Immunobiology, 2013, vol. 218, pp. 1312–1321. doi: 10.1016/j.imbio.2013.07.007
- Vahed H., Agrawal A., Srivastava R., Prakash S., Coulon P.A., Roy S., BenMohamed L. Unique type I interferon, expansion/survival cytokines, and JAK/STAT gene signatures of multifunctional herpes simplex virus-specific effector memory CD8+ TEM cells are associated with asymptomatic herpes in humans. J. Virol., 2019, vol. 93, no. 4: e01882-18. doi: 10.1128/JVI.01882-18
- Valentine R., Dawson C.W., Hu C., Shah K.M., Owen T.J., Date K.L., Maia S.P., Shao J., Arrand J.R., Young L.S., O’Neil J.D. Epstein–Barr virus-encoded EBNA1 inhibits the canonical NF-kB pathway in carcinoma cells by inhibiting IKK phosphorylation. Mol. Cancer., 2010, vol. 9, no. 1: 1. doi: 10.1186/1476-4598-9-1
- Van Lint A.L., Murawski M.R., Goodbody R.E., Severa M., Fitzgerald K.A., Finberg R.W., Knipe D.M., Kurt-Jones E.A. Herpes simplex virus immediate-early ICP0 protein inhibits Toll-like receptor 2-dependent inflammatory responses and NF-kappaB signaling. J. Virol., 2010, vol. 84, pp. 10802–10811. doi: 10.1128/JVI.00063-10
- Wang K., Ni L., Wang S., Zheng C. Herpes simplex virus 1 protein kinase US3 hyperphosphorylates p65/RelA and dampens NF-kappaB activation. J. Virol., 2014, vol. 88, pp. 7941–7951. doi: 10.1128/JVI.03394-13
- Wei H., Prabhu L., Hartley A.-V., Martin M., Sun E., Jiang G., Liu Y., Lu T. Methylation of NF-kB and its role in gene regulation. In: Gene expression and regulation in mammalian cells. Transcription from general aspects. Ed. by F. Uchiumi. Ch. 14. 2018, pp. 291–306. doi: 10.5772/intechopen.72552
- Wu D.X., Fu X.Y., Gong G.Z., Sun K.W., Gong H.Y., Novel HBV mutations and their value in predicting efficacy of conventional interferon. Hepatobiliary Pancreat Dis. Int., 2017, vol. 16, no. 2, pp. 189–196. doi: 10.1016/s1499-3872(16)60184-4
- Xing J., Ni L., Wang S., Wang K., Lin R., Zheng C. Herpes simplex virus 1-encoded tegument protein VP16 abrogates the production of beta interferon (IFN) by inhibiting NF-kappaB activation and blocking IFN regulatory factor 3 to recruit its coactivator CBP. J. Virol., 2013, vol. 87, pp. 9788–9801. doi: 10.1128/JVI.01440-13
- Yamashiro L.H., Wilson S.C., Morrison H.M. Interferon-independent STING signaling promotes resistance to HSV-1 in vivo. Nat. Commun., 2020, vol. 11, no. 1: 3382. doi: 10.1038/s41467-020-17156-x
- Zhang J., Wang S., Wang K., Zheng C. Herpes simplex virus 1 DNA polymerase processivity factor UL42 inhibits TNF-alpha-induced NF-kappaB activation by interacting with p65/RelA and p50/NF-kappaB1. Med. Microbiol. Immunol., 2013, vol. 202, pp. 313–325.
- Zhang Q., Lenardo M.J., Baltimore D. 30 years of NF-kB: a blossoming of relevance to human pathobiology. Cell, 2017, vol. 168, no. 1–2, pp. 37–57. doi: 10.1016/j.cell.2016.12.012
Дополнительные файлы
