Геномный анализ вирулентности и антибиотикорезистентности штаммов Klebsiella pneumoniae

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

В последние годы штаммы Klebsiella pneumoniae получили широкое распространение как при внебольничных инфекционных процессах, так и при нозокомиальных инфекциях. Выделяют два патотипа K. pneumoniae: классический (cKp) и гипервирулентный (hvKp). Представители любого патотипа склонны к приобретению и дальнейшей передаче генетических факторов антибиотикорезистентности и вирулентности, что может помочь при назначении адекватной терапии. Поскольку не существует универсально согласованного отдельного маркера гипервирулентности, нами предпринята попытка найти наиболее значимые комбинации генетических маркеров вирулентности и антибиотикорезистентности у штаммов K. pneumoniae. Цель исследования — выявление наиболее значимых комбинаций генетических маркеров вирулентности и антибиотикорезистентности для характеристики клинических изолятов K. pneumoniae. Материалы и методы. Исследовали 85 штаммов K. pneumoniae, выделенных из проб различного клинического материала от пациентов крупных стационаров Санкт-Петербурга. В работе использовали классические бактериологические методы, в том числе определение гипермукоидного типа с помощью «стринг-теста», масс-спектрометрический метод (MALDI-TOF MS) для идентификации бактерий, молекулярные методы для изучения маркеров вирулентности и антибиотикорезистентности (мультилокусное сиквенс-типирование, секвенирование генома штаммов K. pneumoniae). Результаты. Среди всех исследованных штаммов K. pneumoniae самыми распространенными генами карбапенемаз были гены OXA-48 (18,7%) и NDM-1 — 17,3% штаммов, в 6,7% штаммов гены NDM-1 и OXA-48 присутствовали одновременно. Доля штаммов с генами β-лактамаз CTX-M-15 составила 54,7%, OXA-1 — 17,3%, TEM-1D — 13,3% и в 17,3% случаев в штаммах одновременно присутствовали гены OXA-1 и TEM-1D. Гены резистентности к хинолонам встречались у 68,4% штаммов. Самыми распространенными генами были qnrS1 (40% штаммов) и qnrB1 (22,7%). Фенотипическая оценка чувствительности штаммов показала, что резистентностью к колистину обладали 23,5%, к карбапенемам — 64,7% штаммов. Гипермукоидным фенотипом обладали 32,9% изолятов K. pneumoniae, выделенные при флегмоне, пневмонии, сепсисе, перитоните. Наиболее распространенными сиквенс-типами оказались: ST395 (24,3%), ST23 (17,6%) и ST512 (9,5%). К капсульным типам К1 и К2 принадлежали 8% и 25,3% штаммов соответственно. Локус синтеза поликетидов ybt, характеризующий вирулентные штаммы, был выявлен у 69,3% изолятов, а локус clb присутствовал в 10,7% штаммов. У 73,3% и 14,7% штаммов были определены ассоциированные с плазмидой локусы вирулентности iuc и iro соответственно, которые кодируют биосинтез сидерофоров аэробактина и сальмохелина. Мы обнаружили 44 случая (58,7% штаммов) генотипической конвергенции вирулентности и антибиоткорезистентности, на что указывает одновременное наличие локуса аэробактина (iuc) и генов β-лактамаз или карбапенемаз. Таким образом, идентификация гипервирулентности может представлять ценную информацию для клинического ведения пациентов с hvKp-инфекциями. Поэтому очевидна необходимость разработки комплексного диагностического теста для одновременного скрининга множественно-устойчивых гипервирулентных штаммов K. pneumoniae.

Об авторах

А. А. Самойлова

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Автор, ответственный за переписку.
Email: samoilova@pasteurorg.ru

младший научный сотрудник лаборатории биопрепаратов

Россия, Санкт-Петербург

Л. А. Краева

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера; ФГБВОУ ВО Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова МО РФ

Email: samoilova@pasteurorg.ru

д.м.н., зав. лабораторией медицинской бактериологии; профессор кафедры микробиологии

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Н. В. Михайлов

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера; ФГБУ Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова

Email: samoilova@pasteurorg.ru

к.м.н., старший научный сотрудник лаборатории биопрепаратов; доцент кафедры микробиологии и вирусологии института медицинского образования

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

А. Т. Саитова

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: samoilova@pasteurorg.ru

лаборант-исследователь группы метагеномных исследований

Россия, Санкт-Петербург

Д. Е. Полев

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: samoilova@pasteurorg.ru

к.б.н., старший научный сотрудник, руководитель группы метагеномных исследований

Россия, Санкт-Петербург

М. А. Вашукова

Клиническая инфекционная больница им. С.П. Боткина

Email: samoilova@pasteurorg.ru

к.м.н., зам. главного врача по развитию медицинской помощи

Россия, Санкт-Петербург

С. А. Гордеева

Клиническая инфекционная больница им. С.П. Боткина

Email: samoilova@pasteurorg.ru

врач-бактериолог высшей категории, зав. централизованной бактериологической лабораторией

Россия, Санкт-Петербург

Е. В. Смирнова

ФБУЗ Центр гигиены и эпидемиологии в городе Санкт-Петербурге

Email: samoilova@pasteurorg.ru

врач-бактериолог высшей категории, зав. бактериологической лабораторией

Россия, Санкт-Петербург

Л. И. Белятич

Городская больница № 14

Email: samoilova@pasteurorg.ru

врач-бактериолог высшей категории, зав. бактериологической лабораторией

Россия, Санкт-Петербург

А. С. Долгова

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: samoilova@pasteurorg.ru

к.б.н., зав. лабораторией молекулярной генетики патогенных микроорганизмов

Россия, Санкт-Петербург

А. В. Шабалина

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: samoilova@pasteurorg.ru

младший научный сотрудник лаборатории молекулярной генетики патогенных микроорганизмов

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Агеевец В.A., Агеевец И.В., Сидоренко С.В. Конвергенция множественной резистентности и гипервирулентности у Klebsiella pneumoniae // Инфекция и иммунитет. 2022. Т. 12, № 3. C. 450–460. [Ageevets V.A., Ageevets I.V., Sidorenko S.V. Convergence of multiple resistance and hypervirulence in Klebsiella pneumoniae. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2022, vol. 12, no. 3, pp. 450–460. (In Russ.)] doi: 10.15789/2220-7619-COM-1825
  2. Баранцевич Е.П., Баранцевич Н.Е., Шляхто Е.В. Продукция карбапенемаз нозокомиальными штаммами K. pneumoniae в Санкт-Петербурге // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2016. Т. 18, № 3. С. 196–200. [Barantsevich E.P., Barantsevich N.E., Shlyakhto E.V. Production of Carbapenemases in Klebsiella pneumoniae Isolated in Saint-Petersburg. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya = Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy, 2016, vol. 18, no. 3, pp. 196–200. (In Russ.)]
  3. Комисарова Е.В., Воложанцев Н.В. Гипервирулентная Klebsiella pneumoniae – новая инфекционная угроза // Инфекционные болезни. 2019. Т. 17, № 3. С. 81–89. [Komisarova E.V., Volozhantsev N.V. Hypervirulent Klebsiella pneumonia: a new infectious threat. Infektsionnye bolezni = Infectious Diseases, 2019, vol. 17, no. 3, pp. 81–89. (In Russ.)] doi: 10.20953/1729-9225-2019-3-81-89
  4. Малыгин А.С., Андреев С.С., Царенко С.В., Петрушин М.А. Антибиотикорезистентность изолятов Klebsiella pneumoniae, выделенных из крови больных COVID-19 // Медицина. 2021. Т. 9, № 2. С. 63–74. [Malygin A.S., Andreev S.S., Tsarenko S.V., Petrushin M.A. Antibiotic resistance of Klebsiella pneumoniae strains isolated from the blood of patients with COVID-19. Meditsina = Medicine, 2021, vol. 9, no. 2, pp. 63–74. (In Russ.)] doi: 10.29234/2308-9113-2021-9-2-63-74
  5. Чеботарь И.В., Бочарова Ю.А., Подопригора И.В., Шагин Д.А. Почему Klebsiella pneumoniae становится лидирующим оппортунистическим патогеном // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2020. Т. 22, № 1. С. 4–19. Chebotar I.V., Bocharova Yu.A., Podoprigora I.V., Shagin D.A. The reasons why Klebsiella pneumoniae becomes a leading opportunistic pathogen. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya = Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy, 2020, vol. 22, no. 1, pp. 4–19. (In Russ.) doi: 10.36488/cmac.2020.1.4-19
  6. Bodena D., Teklemariam Z., Balakrishnan S., Tesfa T. Bacterial contamination of mobile phones of health professionals in Eastern Ethiopia: antimicrobial susceptibility and associated factors. Trop. Med. Health, 2019, vol. 47, no. 15: 47. doi: 10.1186/s41182-019-0144-y
  7. Bulger J., MacDonald U., Olson R., Beanan J., Russo T.A. Metabolite transporter PEG344 is required for full virulence of hypervirulent Klebsiella pneumoniae strain hvKP1 after pulmonary but not subcutaneous challenge. Infect. Immun., 2017, vol. 85, no. 10, e00093-17. doi: 10.1128/IAI.00093-17
  8. Catalan-Najera J.C., Garza-Ramos U., Barrios-Camacho H. Hypervirulence and hypermucoviscosity: two different but complementary Klebsiella spp. phenotypes. Virulence, 2017, vol. 8, no. 7, pp. 1111–1123. doi: 10.1080/21505594.2017.1317412
  9. Chang C.M., Ko W.C., Lee H.C., Chen Y.M., Chuang Y.C. Klebsiella pneumoniae psoas abscess: predominance in diabetic patients and grave prognosis in gas-forming cases. J. Microbiol. Immunol. Infect., 2001, vol. 34, no. 3, pp. 201–206.
  10. Chaudhary P., Bhandari D., Thapa K., Thapa P., Shrestha D., Chaudhary H.K., Shrestha A., Parajuli H., Gupta, B.P. Prevalence of extended spectrum beta-lactamase producing Klebsiella pneumoniae isolated from urinary tract infected patients. Journal of Nepal Health Research Council, 2016, vol. 14, no. 33, pp. 111–115.
  11. Choby J.E., Howard-Anderson J., Weiss D.S. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae — clinical and molecular perspectives. J. Intern. Med., 2020, vol. 287, no. 3, pp. 283–300. doi: 10.1111/joim.13007
  12. Compain F., Babosan A., Brisse S., Genel N., Audo J., Ailloud F., Kassis-Chikhani N., Arlet G., Decré D., Doern G.V. Multiplex PCR for detection of seven virulence factors and K1/K2 capsular serotypes of Klebsiella pneumoniae. J. Clin. Microbiol., 2014, vol. 52, no. 12, pp. 4377–4380. doi: 10.1128/JCM.02316-14
  13. Diancourt L., Passet V., Verhoef J., Grimont P.A., Brisse S. Multilocus sequence typing of Klebsiella pneumoniae nosocomial isolates. J. Clin. Microbiol., 2005, vol. 43, no. 8, pp. 4178–4182. doi: 10.1128/JCM.43.8.4178-4182.2005
  14. European Centre for Disease Prevention and Control. Emergence of hypervirulent Klebsiella pneumoniae ST23 carrying carbapenemase genes in EU/EEA countries. 17 March 2021. ECDC: Stockholm; 2021.
  15. European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters (2023). URL: http://www.eucast.org/clinical_breakpoints (11.02.2023)
  16. Fierer J., Walls L., Chu P. Recurring Klebsiella pneumoniae pyogenic liver abscesses in a resident of San Diego, California, due to a K1 strain carrying the virulence plasmid. J. Clin. Microbiol., 2011, vol. 49, no. 12, pp. 4371– 4373. doi: 10.1128/JCM.05658-11
  17. Gurevich A., Saveliev V., Vyahhi N., Tesler G., QUAST: quality assessment tool for genome assemblies. Bioinformatics, 2013, vol. 29, no. 8, pp. 1072–1075. doi: 10.1093/bioinformatics/btt086
  18. Harada S., Tateda K., Mitsui H., Hattori Y., Okubo M., Kimura S., Sekigawa K., Kobayashi K., Hashimoto N., Itoyama S., Nakai T., Suzuki T., Ishii Y., Yamaguchi K. Familial spread of a virulent clone of Klebsiella pneumoniae causing primary liver abscess. J. Clin. Microbiol., 2011, vol. 49, no. 6, pp. 2354–2356. doi: 10.1128/JCM.00034-11
  19. Hetland M.A.K., Hawkey J., Bernhoff E., Bakksjø R.J., Kaspersen H., Rettedal S.I., Sundsfjord A., Holt K.E., Löhr I.H. Within-patient and global evolutionary dynamics of Klebsiella pneumoniae ST17. bioRxiv, 2022, vol. 11, no. 1: 514664. doi: 10.1101/2022.11.01.514664
  20. Huang T.S., Lee S.S.J., Lee C.C., Chang F.C. Detection of carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae on the basis of matrix-assisted laser desorption ionization time-of-flight mass spectrometry by using supervised machine learning approach. PLoS One, 2020, vol. 15, no. 2, e0228459. doi: 10.1371/journal.pone.0228459
  21. Lam M.M.C., Wick R.R., Judd L.M., Holt K.E., Wyres K.L. Kaptive 2.0: updated capsule and lipopolysaccharide locus typing for the Klebsiella pneumoniae species complex. Microbial Genomics, 2022, vol. 8, no. 3: 000800. doi: 10.1099/mgen.0.000800
  22. Lam M.M.C., Wick R.R., Wyres K.L., Gorrie C.L., Judd L.M., Jenney A.W.J., Brisse S., Holt K.E. Genetic diversity, mobilisation and spread of the yersiniabactin-encoding mobile element ICEKp in Klebsiella pneumoniae populations. Microb. Genom., 2018, vol. 4, no. 9: e000196. doi: 10.1099/mgen.0.000196
  23. Lam M.M.C., Wyres K.L., Wick R.R., Judd L.M., Fostervold A., Holt K.E., Lohr I.H. Convergence of virulence and MDR in a single plasmid vector in MDR Klebsiella pneumoniae ST15. J. Antimicrob. Chemother., 2019, vol. 74, no. 5, pp. 1218–1222. doi: 10.1093/jac/dkz028
  24. Lam M.M.C., Wyres K.L., Judd L.M., Wick R.R., Jenney A., Brisse S., Holt K.E. Tracking key virulence loci encoding aerobactin and salmochelin siderophore synthesis in Klebsiella pneumoniae. Genome Med., 2018, vol. 10, no. 1: 77 doi: 10.1186/s13073-018-0587-5
  25. Liu Y.C., Cheng D.L., Lin C.L. Klebsiella pneumoniae liver abscess associated with septic endophthalmitis. Arch. Intern. Med., 1986, vol. 146, no. 10, pp. 1913–1916. doi: 10.1001/archinte.1986.00360220057011
  26. Luo Y., Wang Y., Ye L., Yang J. Molecular epidemiology and virulence factors of pyogenic liver abscess causing Klebsiella pneumoniae in China. Clin. Microbiol. Infect., 2014, vol. 20, no. 11: O818-24. doi: 10.1111/1469-0691.12664
  27. Navon-Venezia S., Kondratyeva K., Carattoli A. Klebsiella pneumoniae: a major worldwide source and shuttle for antibiotic resistance. FEMS Microbiol. Rev., 2017, vol. 41, no. 3, pp. 252–275. doi: 10.1093/femsre/fux013
  28. Paczosa M.K., Mecsas J. Klebsiella pneumoniae: Going on the Offense with a Strong Defense. Microbiol. Mol. Biol. Rev., 2016, vol. 80, no. 3, pp. 629–661. doi: 10.1128/MMBR.00078-15
  29. Parrott A.M., Shi J., Aaron J., Green D.A., Whittier S., Wu F. Detection of multiple hypervirulent Klebsiella pneumoniae strains in a New York City hospital through screening of virulence genes. Clin. Microbiol. Infect., 2021, vol. 27, no. 4, pp. 583–589. doi: 10.1016/j.cmi.2020.05.012
  30. Patel P.K., Russo T.A., Karchmer A.W. Brief report on hypervirulent Klebsiella pneumoniae. Open Forum Infect. Dis., 2014, vol. 1, no. 1, ofu028. doi: 10.1093/ofid/ofu028
  31. Pomakova D.K., Hsiao C.B., Beanan J.M., Olson R., Macdonald U., Keynan Y., Russo T.A. Clinical and phenotypic differences between classic and hypervirulent Klebsiella pneumoniae: an emerging and under-recognized pathogenic variant. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 2012, vol. 31, no. 6, pp. 981–989 doi: 10.1007/s10096-011-1396-6
  32. Popa L.I., Gheorghe I., Barbu I.C., Surleac M., Paraschiv S., Măruţescu L., Popa M., Pîrcălăbioru G.G., Talapan D., Niţă M., Streinu-Cercel A., Streinu-Cercel A., Oţelea D., Chifiriuc M.C. Multidrug Resistant Klebsiella pneumoniae ST101 Clone Survival Chain From Inpatients to Hospital Effluent After Chlorine Treatment. Front. Microbiol., 2021, vol. 11, 610296. doi: 10.3389/fmicb.2020.610296
  33. Prjibelski A., Antipov D., Meleshko D., Lapidus A., Korobeynikov A. Using SPAdes de novo assembler. Curr. Protoc. Bioinformatics, 2020, vol. 70: e102. doi: 10.1002/cpbi.102
  34. Redgrave L.S., Sutton S.B., Webber M.A., Piddock L.J. Fluoroquinolone resistance: mechanisms, impact on bacteria, and role in evolutionary success. Trends Microbiol., 2014, vol. 22, no. 8, pp. 438–445. doi: 10.1016/j.tim.2014.04.007
  35. Regueiro V., Campos M.A., Pons J., Alberti S., Bengoechea J.A. The uptake of a Klebsiella pneumoniae capsule polysaccharide mutant triggers an inflammatory response by human airway epithelial cells. Microbiology, 2006, vol. 152, no. 2, pp. 555–566. doi: 10.1099/mic.0.28285-0
  36. Russo T.A., Olson R., Fang C.T., Stoesser N., Miller M., MacDonald U., Hutson A., Barker J.H., La Hoz R.M., Johnson J.R. Identification of Biomarkers for Differentiation of Hypervirulent Klebsiella pneumoniae from Classical K. pneumoniae. J. Clin. Microbiol., 2018, vol. 56, no. 9: e00776-18. doi: 10.1128/JCM.00776-18
  37. Shon A.S., Bajwa R.P., Russo T.A. Hypervirulent (hypermucoviscous) Klebsiella pneumoniae: a new and dangerous breed. Virulence, 2013, vol. 4, no. 2, pp. 107–118. doi: 10.4161/viru.22718
  38. Siu L.K., Yeh K.M., Lin J.C., Fung C.P., Chang F.Y. Klebsiella pneumoniae liver abscess: a new invasive syndrome. Lancet Infect. Dis., 2012, vol. 12, no. 11, pp. 881–887. doi: 10.1016/S1473-3099(12)70205-0
  39. Tan Y.M., Chung A.Y., Chow P.K., Cheow P.C., Wong W.K., Ooi L.L., Soo K.C. An appraisal of surgical and percutaneous drainage for pyogenic liver abscesses larger than 5 cm. Ann. Surg., 2005, vol. 241, no. 3, pp. 485–490. doi: 10.1097/01.sla.0000154265.14006.47
  40. Tsay R.W., Siu L.K., Fung C.P., Chang F.Y. Characteristics of bacteremia between community-acquired and nosocomial Klebsiella pneumoniae infection: risk factor for mortality and the impact of capsular serotypes as a herald for communityacquired infection. Arch. Intern. Med., 2002, vol. 162, no. 9, pp. 1021–1027. doi: 10.1001/archinte.162.9.1021
  41. Walker K.A., Miner T.A., Palacios M., Trzilova D., Frederick D.R., Broberg C.A., Sepúlveda V.E., Quinn J.D., Miller V.L. A Klebsiella pneumoniae Regulatory Mutant Has Reduced Capsule Expression but Retains Hypermucoviscosity. mBio, 2019, vol. 10, no. 2: e00089-19. doi: 10.1128/mBio.00089-19
  42. Wang J.H., Liu Y.C., Lee S.S., Yen M.Y., Chen Y.S., Wang J.H., Wann S.R., Lin H.H. Primary liver abscess due to Klebsiella pneumoniae in Taiwan. Clin. Infect. Dis., 1998, vol. 26, no. 6, pp. 1434 –1438. doi: 10.1086/516369
  43. Wyres K.L., Wick R.R., Gorrie C., Jenney A., Follador R., Thompson N., Holt K.E. Identification of Klebsiella capsule synthesis loci from whole genome data. Microbial Genomics, 2016, vol. 2, no. 12: e000102. doi: 10.1099/mgen.0.000102
  44. Yu W.L., Ko W.C., Cheng K.C., Lee C.C., Lai C.C., Chuang Y.C. Comparison of prevalence of virulence factors for Klebsiella pneumoniae liver abscesses between isolates with capsular K1/K2 and non-K1/K2 serotypes. Diagn. Microbiol. Infect. Dis., 2008, vol. 62, no. 1, pp. 1–6. doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2008.04.007

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Самойлова А.А., Краева Л.А., Михайлов Н.В., Саитова А.Т., Полев Д.Е., Вашукова М.А., Гордеева С.А., Смирнова Е.В., Белятич Л.И., 2024

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».