Послеубойная диагностика пастереллеза свиней
- Авторы: Акобян А.Р.1
-
Учреждения:
- Национальный аграрный университет Армении
- Выпуск: Том 17, № 2 (2025)
- Страницы: 610-627
- Раздел: Опыт регионов
- Статья опубликована: 30.04.2025
- URL: https://journal-vniispk.ru/2658-6649/article/view/311065
- DOI: https://doi.org/10.12731/2658-6649-2025-17-2-1086
- EDN: https://elibrary.ru/FBSWNB
- ID: 311065
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Обоснование. В связи с широким распространением пастереллеза среди свиней и огромным экономическим ущербом, которое наносит это заболевание свиноводческим хозяйствам (значительный падеж поголовья, затраты на лечение, снижение качества животноводческой продукции и опасность заражения людей), проблема диагностики пастереллеза является актуальной задачей ветеринарной науки.
Цель. Целью наших исследований являлось проведение послеубойной диагностики пастереллеза в трех свиноводческих хозяйствах Армавирской области Республики Армения, идентифицирование его возбудителя для последующей организации лечебно-профилактических мероприятий.
Материал и методы. Исследования проводились на поголовье свиней трех свиноводческих хозяйств Армавирской области, подвергнутых убою. Проводился послеубойный осмотр легких животных для изучения характера поражений этого органа, была определена средняя масса, подвергнутых убою свиней. Из пораженных участков легких был отобран патологический материал, который был использован для культивирования и идентификации возбудителя. Идентификацию возбудителя проводили на кровяном агаре, а также на агаре Mac Conkey. Определение биохимических свойств возбудителя осуществляли с использованием биохимических тестов API 20E.
Результаты. У 74, подвергнутых убою свиней, были обнаружены патологоанотомические изменения в легких, характерные для крупозной, серозно-фибринозной пневмонии, фибрино-некротической плевропневмонии, плевриту и бронхопневмонии. Масса тела, подвергнутых убою животных, у которых наблюдалось поражение легких, была снижена. При посеве на МПА, содержащий 5℅ сыворотку крови, были обнаружены колонии, характерные по морфологическим свойствам на колонии пастерелл. Биохимические исследования подтвердили принадлежность возбудителя к виду P. multocida.
Заключение. При исследовании легких животных, подвергнутых убою, наблюдались явления пневмонии, плевропнемонии и плеврита. При посеве на питательные среды был идетифицирован возбудитель P. Multocida. Обобщая результаты исследований, можно отметить, что пастереллез имеет значительное распространение у свиней и сопровождается поражением легких.
Об авторах
Ануш Рафиковна Акобян
Национальный аграрный университет Армении
Автор, ответственный за переписку.
Email: akobian.anush@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0002-7781-3045
канд. вет. наук, доцент, исследовательский центр ветеринарии и ветеринарно-санитарной экспертизы
Армения, ул. Теряна, 74, г. Ереван, 0009, Республика Армения
Список литературы
- Kimura, R., Hayashi, Y., Takeuchi, T., Shimizu, M., Iwata, M., Tanahashi, J., & Ito, M. (2004). Pasteurella multocida septicemia caused by close contact with a domestic cat: case report and literature review. J Infect Chemother, 10(4), 250-252. https://doi.org/10.1007/s10156-004-0331-5
- Лях, Ю. Г. (2013). Пастереллез свиней и крупного рогатого скота. Минск: ООО «Инфофорум», 212 с. (Lyakh, Yu. G. (2013). Pasteurellosis of pigs and cattle. Minsk: Inforum. 212 p.)
- Лях, Ю. Г., Синица, О. Н. (2000). Пневмонии пастереллезно-сальмонеллезной этиологии молодняка сельскохозяйственных животных в Республике Беларусь и их специфическая профилактика. Международный аграрный журнал, 9, 42-44. (Lyakh, Yu. G., & Sinitsa, O. N. (2000). Pneumonia of pasteurella-salmonella etiology in young farm animals in the Republic of Belarus and their specific prevention. International Agricultural Journal, 9, 42-44.) EDN: https://elibrary.ru/ytupcs
- Немкова, Н. П. (2017). Ветеринарно-санитарная экспертиза продуктов убоя животных при инфекционных болезнях: Методические указания. Красноярск, 73 с. (Nemkova, N. P. (2017). Veterinary and sanitary examination of slaughter products of animals with infectious diseases: Methodical instructions. Krasnoyarsk. 73 p.) EDN: https://elibrary.ru/gdgzpy
- Bardou, M., Honnorat, E., Dubourg, G., Couderc, C., Fournier, P. E., Seng, P., & Stein, A. (2015). Meningitis caused by Pasteurella multocida in a dog owner without a dog bite: clonal lineage identification by MALDI-TOF mass spectrometry. BMC Res Notes, 8, 626. https://doi.org/10.1186/s13104-015-1615-9
- Becskei, Z., Aleksić-Kovačević, S., Rusvai, M., Balka, G., Jakab, C., Petrović, T., & Knežević, M. (2010). Distribution of porcine circovirus 2 cap antigen in the lymphoid tissue of pigs affected by postweaning multisystemic wasting syndrome. Acta Vet Hung, 58(4), 483-498. https://doi.org/10.1556/AVet.58.2010.4.9
- Blackall, P. J., Pahoff, J. L., & Bowles, R. (1997). Phenotypic characterisation of Pasteurella multocida isolates from Australian pigs. Vet Microbiol, 57(4), 355-360. https://doi.org/10.1016/s0378-1135(97)00111-9
- Boyanton, B. L. Jr., Freij, B. J., Robinson-Dunn, B., Makin, J., Runge, J. K., & Luna, R. A. (2016). Neonatal Pasteurella multocida subsp. septica Meningitis Traced to Household Cats: Molecular Linkage Analysis Using Repetitive-Sequence-Based PCR. J Clin Microbiol, 54(1), 230-232. https://doi.org/10.1128/JCM.01337-15
- Carter, G. R. (1955). Studies on Pasteurella multocida. I. A hemagglutination test for the identification of serological types. Am J Vet Res, 16(60), 481-484.
- Christidou, A., Maraki, S., Gitti, Z., & Tselentis, Y. (2005). Review of Pasteurella Multocida Infections over a Twelve-Year Period in a Tertiary Care Hospital. American Journal of Infectious Diseases, 1(2), 107-110. https://doi.org/10.3844/ajidsp.2005.107.110
- Čobanović, N., Karabasil, N., Ilić, N., Dimitrijević, M., Vasilev, D., Cojkić, A., & Jankvić, L. (2015). Pig welfare assessment based on presence of skin lesions on carcass and pathological findings in organs. Proceedings of the 17th International Congress on Animal Hygiene, Animal Hygiene and Welfare in Livestock Production. The First Step to Food Hygiene, 26-29.
- Culling, C. F. A. (1974). Handbook of Histopathological and Histochemical Techniques. Including Museum Techniques. Butterworths, 687 p.
- Dailidavičienė, J., Januškevičienė, G., June, V., Pockevičius, A., & Kerzienė, S. (2008). Typically definable respiratory lesions and their influence on meat characteristics in pigs. Veterinarija ir Zootechnika, 43(65), 20-24.
- Dailidavičienė, J., Januškevičienė, G., Zaborskiene, G., & Gear miele, G. (2009). Pork quality analysis according to different degree of lung lesions. Fleischwirtschaft, 89(1), 100-103.
- Davies, R. L., MacCorquodale, R., Baillie, S., & Caffrey, B. (2003). Characterization and comparison of Pasteurella multocida strains associated with porcine pneumonia and atrophic rhinitis. J Med Microbiol, 52(Pt 1), 59-67. https://doi.org/10.1099/jmm.0.05019-0
- Davies, R. L., MacCorquodale, R., & Reilly, S. (2004). Characterisation of bovine strains of Pasteurella multocida and comparison with isolates of avian, ovine and porcine origin. Vet Microbiol, 99(2), 145-158. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2003.11.013
- Fegan, N., Blackall, P. J., & Pahoff, J. L. (1995). Phenotypic characterisation of Pasteurella multocida isolates from Australian poultry. Vet Microbiol, 47(3-4), 281-286. https://doi.org/10.1016/0378-1135(95)00119-0
- Fernández-Valencia, J. A., García, S., & Prat, S. (2008). Pasteurella multocida septic shock after a cat scratch in an elderly otherwise healthy woman: a case report. Am J Emerg Med, 26(3), 380.e1-3. https://doi.org/10.1016/j.ajem.2007.05.019
- Fraile, L., Alegre, A., López-Jiménez, R., Nofrarías, M., & Segalés, J. (2010). Risk factors associated with pleuritis and cranio-ventral pulmonary consolidation in slaughter-aged pigs. Vet J, 184(3), 326-333. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2009.03.029
- Guillet, C., Join-Lambert, O., Carbonnelle, E., Ferroni, A., & Vachée, A. (2007). Pasteurella multocida sepsis and meningitis in 2-month-old twin infants after household exposure to a slaughtered sheep. Clin Infect Dis, 45(6), e80-e81. https://doi.org/10.1086/520979
- Heddleston, K. L., Gallagher, J. E., & Rebers, P. A. (1972). Fowl cholera: gel diffusion precipitin test for serotyping Pasteurella multocida from avian species. Avian Dis, 16(4), 925-936.
- Hillen, S., von Berg, S., Köhler, K., Reinacher, M., Willems, H., & Reiner, G. (2014). Occurrence and severity of lung lesions in slaughter pigs vaccinated against Mycoplasma hyopneumoniae with different strategies. Prev Vet Med, 113(4), 580-588. https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2013.12.012
- Holst, E., Rollof, J., Larsson, L., & Nielsen, J. P. (1992). Characterization and distribution of Pasteurella species recovered from infected humans. J Clin Microbiol, 30(11), 2984-2987. https://doi.org/10.1128/jcm.30.11.2984-2987.1992
- Hotchkiss, E. J., Hodgson, J. C., Schmitt-van de Leemput, E., Dagleish, M. P., & Zadoks, R. N. (2011). Molecular epidemiology of Pasteurella multocida in dairy and beef calves. Vet Microbiol, 151(3-4), 329-335. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2011.03.018
- Karesh, W. B., Cook, R. A., Bennett, E. L., & Newcomb, J. (2005). Wildlife trade and global disease emergence. Emerg Infect Dis, 11(7), 1000-1002. https://doi.org/10.3201/eid1107.050194
- Karesh, W. B., & Noble, E. (2009). The bushmeat trade: increased opportunities for transmission of zoonotic disease. Mt Sinai J Med, 76(5), 429-434. https://doi.org/10.1002/msj.20139
- Kofteridis, D. P., Christofaki, M., Mantadakis, E., Maraki, S., Drygiannakis, I., Papadakis, J. A., & Samonis, G. (2009). Bacteremic community-acquired pneumonia due to Pasteurella multocida. Int J Infect Dis, 13(3), e81-e83. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2008.06.023
- Liu, H., Zhao, Z., Xi, X., Xue, Q., Long, T., & Xue, Y. (2017). Occurrence of Pasteurella multocida among pigs with respiratory disease in China between 2011 and 2015. Ir Vet J, 70, 2. https://doi.org/10.1186/s13620-016-0080-7 EDN: https://elibrary.ru/nhtxsu
- López, C., Sanchez-Rubio, P., Betrán, A., & Terré, R. (2013). Pasteurella multocida bacterial meningitis caused by contact with pigs. Braz J Microbiol, 44(2), 473-474. https://doi.org/10.1590/S1517-83822013000200021
- Mac Fadin, J. F. (2000). Biochemical Tests for Identification of Medical Bacteria. 3rd Ed., Lippincott Williams & Wilkins, Pennsylvania, USA, 912 p.
- Minkus, D., Schutte, A., von Mickwitz, G., & Beutling, D. (2004). Lung health, meat content and meat ripening in pigs - defective lungs as a problem in meat inspection. Fleischwirtschaft-Frankfurt, 87(7), 110-113.
- Oehler, R. L., Velez, A. P., Mizrachi, M., Lamarche, J., & Gomp, S. (2009). Bite-related and septic syndromes caused by cats and dogs. The Lancet Infectious Diseases, 9(7), 439-447. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(09)70110-0 EDN: https://elibrary.ru/mmfypv
- Ostanello, F., Dottori, M., Gusmara, C., Leotti, G., & Sala, V. (2007). Pneumonia disease assessment using a slaughterhouse lung-scoring method. J Vet Med A Physiol Pathol Clin Med, 54(2), 70-75. https://doi.org/10.1111/j.1439-0442.2007.00920.x
- Ozbey, G., Kilic, A., Ertas, H. B., & Muz, A. (2004). Random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis of Pasteurella multocida and Mannheimia haemolytica strains isolated from cattle, sheep and goats. Vet Med Czech, 49(3), 65-69. https://vetmed.agriculturejournals.cz/pdfs/vet/2004/03/01.pdf
- Permentier, L., Maenhout, D., Deley, W., Broekman, K., Vermeulen, L., Agten, S., Verbeke, G., Aviron, J., & Geers, R. (2015). Lung lesions increase the risk of reduced meat quality of slaughter pigs. Meat Sci, 108, 106-108. https://doi.org/10.1016/j.meatsci.2015.06.005
- Rajkhowa, S., Shakuntala, I., Pegu, S., Das, R., & Das, A. (2012). Detection of Pasteurella multocida isolates from local pigs of India by polymerase chain reaction and their antibiogram. Trop Anim Health Prod, 44(7), 1497-1503. https://doi.org/10.1007/s11250-012-0094-4 EDN: https://elibrary.ru/uyllxs
- Reaser, J. K., Clark, E. E. Jr., & Meyers, N. M. (2008). All creatures great and minute: a public policy primer for companion animal zoonoses. Zoonoses Public Health, 55(8-10), 385-401. https://doi.org/10.1111/j.1863-2378.2008.01123.x
- Rimler, R. B., & Rhoades, K. R. (1987). Serogroup F, a new capsule serogroup of Pasteurella multocida. J Clin Microbiol, 25(4), 615-618. https://doi.org/10.1128/jcm.25.4.615-618.1987
- Smith, K. M., Anthony, S. J., Switzer, W. M., Epstein, J. H., Seimon, T., Jia, H., Sanchez, M. D., Huynh, T. T., Galland, G. G., Shapiro, S. E., Sleeman, J. M., McAloose, D., Stuchin, M., Amato, G., Kolokotronis, S. O., Lipkin, W. I., Karesh, W. B., Daszak, P., & Marano, N. (2012). Zoonotic viruses associated with illegally imported wildlife products. PLoS One, 7(1), e29505. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0029505 EDN: https://elibrary.ru/ycmovl
- Štukelj, M., Plut, J., & Toplak, I. (2015). Serum inoculation as a possibility for elimination of porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) from a farrow-to-finish pig farm. Acta Vet Hung, 63(3), 389-399. https://doi.org/10.1556/004.2015.037
- Szeredi, L., Cságola, A., Dán, Á., & Dencső, L. (2015). Vascular lesions and pneumonia in a pig fetus infected by porcine circovirus type 2. Acta Vet Hung, 63(2), 215-222. https://doi.org/10.1556/004.2015.019
- Toplak, I., Lazić, S., Lupulović, D., Prodanov-Radulović, J., Becskei, Z., Došen, R., & Petrović, T. (2012). Study of the genetic variability of porcine circovirus type 2 detected in Serbia and Slovenia. Acta Vet Hung, 60(3), 409-420. https://doi.org/10.1556/AVet.2012.035
- Weber, D. J., Wolfson, J. S., Swartz, M. N., & Hooper, D. C. (1984). Pasteurella multocida infections. Report of 34 cases and review of the literature. Medicine (Baltimore), 63(3), 133-154.
- Weese, J. S., McCarthy, L., Mossop, M., Martin, H., & Lefebvre, S. (2007). Observation of practices at petting zoos and the potential impact on zoonotic disease transmission. Clin Infect Dis, 45(1), 10-15. https://doi.org/10.1086/518572
- Wilson, B. A. (2008). Global biosecurity in a complex, dynamic world. Complexity, 14(1), 71-88. https://doi.org/10.1002/cplx.20246
- Wilson, B. A., & Ho, M. (2013). Pasteurella multocida: from zoonosis to cellular microbiology. Clin Microbiol Rev, 26(3), 631-655. https://doi.org/10.1128/CMR.00024-13 EDN: https://elibrary.ru/yaeeea
- Woolhouse, M. E., & Gowtage-Sequeria, S. (2005). Host range and emerging and reemerging pathogens. Emerg Infect Dis, 11(12), 1842-1847. https://doi.org/10.3201/eid1112.050997
- Woodford, M. H. (2009). Veterinary aspects of ecological monitoring: the natural history of emerging infectious diseases of humans, domestic animals and wildlife. Trop Anim Health Prod, 41(7), 1023-1033. https://doi.org/10.1007/s11250-008-9269-4
Дополнительные файлы
