Исследование ассоциации белков Ouib и Nom С гетерохроматином у Drosophila melanogaster
- Авторы: Пекина Ю.В.1, Бабоша В.A.1, Георгиев П.Г.1, Федотова А.А.1
-
Учреждения:
- ФГБУН “Институт биологии гена Российской академии наук (ИБГ РАН)”
- Выпуск: Том 515, № 1 (2024)
- Страницы: 87-91
- Раздел: Статьи
- URL: https://journal-vniispk.ru/2686-7389/article/view/262836
- DOI: https://doi.org/10.31857/S2686738924020161
- EDN: https://elibrary.ru/WEMDXK
- ID: 262836
Цитировать
Полный текст
Аннотация
У дрозофилы большая группа активно транскрибируемых генов находится в прицентромерном гетерохроматине. Предполагается, что гетерохроматиновые белки привлекают транскрипционные факторы к промоторам генов. Ранее было показано, что два белка, ouib и nom, связываются с промоторами гетерохроматиновых генов nvd и spok. Интересно, что ouib и nom являются паралогами белка M1BP, который связывается с промоторами эухроматиновых генов. Нами было показано, что, как и M1BP, белки quib и nom взаимодействует с белком СР190, который участвует в привлечение транскрипционных комплексов на промоторы. В отличие от гетерохроматиновых белков ouib и nom не взаимодействуют с основным гетерохроматиновым белком НР1a и связываются с эухроматиновыми промоторами на политенных хромосомах из слюнных желез личинок. Полученные результаты предполагают новый механизм привлечения транскрипционных факторов в гетерохроматиновый компартмент ядра.
Ключевые слова
Полный текст
У дрозофилы эухроматин и гетерохроматин представляют собой два независимых компартмента, отличающихся набором хроматиновых белков и нуклеосомных модификаций [1, 2]. В последних исследованиях было показано, что гетерохроматин активно транскрибируется, и в нем локализованы многие гены домашнего хозяйства, которые имеют высокий уровень экспрессии [2]. При этом промоторы генов, расположенных в эухроматине и гетерохроматине, могут эффективно инициировать транскрипцию только в своем компартменте [1, 2]. В отличие от прокариот бо´льшая часть промоторов высших эукариот, включая дрозофилу и человека, не имеет выраженных мотивов, с которыми могут связываться общие факторы транскрипции [3]. Согласно одной из моделей ключевую роль в организации промоторов играют белки, содержащие кластеры цинковых пальцев С2Н2-типа (С2Н2-белки), которые связываются со специфичными относительно длинными (12–15 п.н.) мотивами в промоторах генов, что приводит к формированию открытого хроматина и рекрутированию TFIID-комплекса [3, 4]. У дрозофилы существует обширный класс белков, которые содержат на С-конце кластер, состоящий из 5 С2Н2-доменов, а на N-конце находится ZAD (Zinc-finger Associated Domain) домен, который обеспечивает гомодимеризацию белка [5, 6]. ZAD-домен и C2H2-кластеры соединены неструктурированным линкером. Наиболее хорошо описанным у дрозофилы является белок М1BP, который связывается с мотивом, расположенным в примерно в 2000 промоторах, определяющих активность эухроматиновых генов [7, 8]. С неструктурированным линкером белка M1BP связывается белок СР190, который участвует в рекрутировании комплексов стимулирующих транскрипцию [9, 10].
Ген m1bp находится в кластере (85A9 на хромосомном плече 3R), который включает еще четыре гена, кодирующих ZAD-C2H2-белки – CG8159, ranshi, ouib и nom (рис. 1б). Все эти гены паралогичны и, предположительно, являются результатом тандемной дупликации в процессе эволюции. Неожиданно оказалось, что гены ouib и nom кодируют белки, которые связываются с промоторами генов, расположенными в гетерохроматине [11–13]. Ранее были найдены два других ZAD-C2H2-белка, odj и nnk, которые эффективно связываются с регуляторными последовательностями в гетерохроматине [14]. Было показано, что эти белки взаимодействуют с основным белком гетерохроматина НР1a, что, как предполагается, определяет преимущественную локализацию этих белков в гетерохроматиновом компартменте.
Целью настоящей работы стало исследование, каким образом белки ouib и nom приобретают способность связываться с промоторами генами, находящимися в областях гетерохроматина. Ранее было показано, что ZAD-домены даже близких С2Н2 паралогов преимущественно формируют только гомодимеры [5, 6]. Так как ZAD-домены белков M1BP, ouib и nom имеют высокую степень сходства последовательностей, то была протестирована способность ZAD-доменов к формированию гетеродимеров. Для этого мы использовали метод дрожжевой двугибридной системы (ДДС). Были созданы конструкции, в которых последовательности ZAD-доменов белков ouib, nom и M1BP были клонировали в одну рамку считывания с активационным доменом (АД) или ДНК-связывающим доменом (ДСД) белка GAL4. Поиск ортологов у видов Drosophila показал, что ортолог ouib присутствует у всех видов, тогда как его дупликация – ген nom произошла позже. Так, ортологи nom отсутствуют у D.virilis (рис. 1б). Мы протестировали в ДДС взаимодействие ZAD-доменов белков ouib и nom c ортологом ouib D.virilis (GJ22678). Анализ взаимодействия показал, что ZAD-домены M1BP, ouib и nom гомодимеризуются, но не образуют гетеродимеров. При этом оба белка паралога ouib и nom взаимодействуют с ортологом GJ22678 D. virilis (см. рис. 1в), что является дополнительным доказательством того, что они произошли от одного гена.
Рис. 1. Доменная структура белков ouib и nom. Указаны порядковые номера аминокислотных остатков, соответствующих границам доменов (а); геномное расположение генов m1bp, ouib и nom в кластере у D. melanogaster и D. virilis. Для обозначения ортологов использованы одинаковые цвета (б); исследование взаимодействия между ZAD-доменами в ДДС. Фрагменты ZAD были слиты с ДНК-связывающим доменом GAL4 (ДСД), и исследовано их взаимодействие с фрагментами, слитым с активационным доменом GAL4 (АД). Результаты представлены в колонках, где + и – означают наличие или отсутствие взаимодействия соответственно. В качестве положительного контроля проверялась способность ZAD-доменов к димеризации, а в качестве отрицательного контроля выполнялось тестирование на наличие взаимодействия только с активационным (АД) или ДНК-связывающим (ДСД) доменом белка GAL4 (в); исследование взаимодействия полноразмерных белков Ouib и Nom, слитых с АД GAL4, с полноразмерными белками СР190 и HP1a, слитыми с ДСД GAL4 (г). Остальные обозначения – такие же, как в (в).
Известно, что многие белки, ассоциированные с гетерохроматином, взаимодействуют с белком Hp1a через аминокислотный мотив PxVxL (где х – любая аминокислота). Однако, анализ последовательностей ouib и nom не выявил данного мотива. Для проверки прямого взаимодействия белков с HP1a в ДДС были получены конструкции, в которых последовательности кДНК белков ouib и nom были клонированы в одну рамку считывания с АД GAL4 и конструкция, в которой кДНК белка HP1a находилась в одной рамке считывания с ДСД GAL4. В результате, в ДДС прямое взаимодействие ouib и nom с HP1a не обнаружено (см. рис. 1г).
Многие ZAD-C2H2-белки, имеющие сайты связывания в промоторах генов, взаимодействуют с белком CP190, в том числе рекрутирование СР190 является важным для функциональной активности M1BP [9]. Мы проверили прямое взаимодействие паралогов ouib и nom с CP190 в ДДС (рис. 1в). Оказалось, что ouib и nom тоже взаимодействуют с CP190, который связывается исключительно с эухроматиновыми промоторами. Это предполагает роль ouib и nom в организации эухроматиновых промоторов.
Для исследования полногеномного распределения сайтов связывания белков ouib и nom была использована модель политенных хромосом из ядер слюнных желез личинок третьего возраста. Политенные хромосомы состоят из междисков, которые представляют собой промоторы, контролирующие экспрессию генов домашнего хозяйства, и дисков, которые соответствуют преимущественно неактивным генам [15]. Области конститутивного гетерохроматина хорошо визуализируются в области прицентромерного гетерохроматина и в теломерах на концах хромосом. Так как ouib и nom не экспрессируются в слюнных железах, мы использовали индуцируемую систему UAS/GAL4 для экспрессии этих белков. С этой целью были созданы генетические конструкции, в которых кДНК белков nom и ouib в одной рамке считывания с эпитопом HA были клонированы в вектор pUAS, который содержит последовательность UAS (Upstream activating sequence) и attB-сайт для интеграции в геном дрозофилы (рис. 2а). Полученные конструкции были встроены в одно и тоже место генома в сайт attP 38D с использованием системы интеграции phiC31. Для эктопической экспрессии генов мы скрещивали мух линии, содержащей конструкт pUAS-OuibxHA или pUAS-NomxHA, с мухами линии, экспрессирующей GAL4 под контролем сильного тубулинового промотора (tub:GAL4), который обеспечивает высокий уровень транскрипции во всех тканях. Экспрессию белка подтверждали анализом белкового лизата из взрослых мух методом вестерн-блот с использованием антител к HA (см. рис. 2б).
Рис. 2. Схема генетической конструкции, используемой для создания трансгенных мух, экспрессирующих белок, слитый с HA-эпитопом (а); вестерн-блот анализ белковых экстрактов из 2–3-дневных самцов, экспрессирующих OuibxHA и NomxHA, окрашенные антителами к HA-эпитопу (б); политенные хромосомы слюнных желез личинок мух, экспрессирующих OuibxHA и NomxHA. Политенные хромосомы были окрашены антителами к эпитопу HA, ДНК окрашена DAPI. Для сравнения приведено иммуноокрашивание политенных хромосом из лиинии Oregon-R кроличьими антителами к гетерохроматиновому белку odj (в). Стрелками показано положение хромоцентра на разных препаратах политенных хромосом. Масштаб – 10 мкм.
Иммуноокрашивание политенных хромосом показало неожиданные результаты. Оказалось, что белки ouib и nom имеют множество сайтов связывания в междисках политенных хромосом, но при этом не наблюдается связывания в прицентромерных гетерохроматиновых районах. Таким образом, эктопически экспрессируемые белки не рекрутируются сами по себе в гетерохроматиновый компартмент (см. рис. 2в). Это отличает белки nom и ouib от белка odj, который активно связывается с гетерохроматином политенных хромосом (см. рис. 2в).
Наиболее вероятно, что ген, кодирующий M1BP, является основателем кластера генов (85A9), так как его экспрессия намного выше и белок имеет консервативные среди дрозофил мотивы связывания в промоторах большой группы генов. Остальные гены кластера, за исключением ranshi, имеют слабый уровень экспрессии и, вероятно, связываются с промоторами небольшого количества генов. Так, было показано, что белки nom и ouib определяют активность промоторов генов nvd и spok, расположенных в гетерохроматине [11,.12]. При этом активация этих промоторов является основной функцией белков nom и ouib. Как и M1BP, белки nom и ouib связываются с СР190, рекрутирование которого на промоторы определяет формирование зоны открытого хроматина и активацию транскрипции. Таким образом, белки nom и ouib по строению и функциям похожи на M1BP. Более того, при избыточной экспрессии белки nom и ouib связываются с промоторами (междисками) генов домашнего хозяйства, которые находятся в эухроматине и не наблюдается их ассоциации с прицентромерным гетерохроматином. ZAD-домены трех близких паралогов M1BP, nom и ouib формируют только гомодимеры. Таким образом, ZAD-домены определяют функциональную независимость недавно возникших С2Н2-белков и блокируют их взаимодействие с M1BP. Полученные результаты свидетельствуют о том, что механизм рекрутирования nom и ouib в гетерохроматиновые районы принципиально отличается от описанного ранее для odj и nnk, для которых показано взаимодействие через консенсусный мотив с HP1a. Белки nom и ouib не взаимодействуют напрямую с основным гетерохроматиновым белком HP1a.
Наиболее вероятно, что nom и ouib рекрутируются в гетерохроматиновый компартмент с помощью белка-партнера, который также участвует в формирование активных промоторов nvd и spok генов. Одним из потенциальных белков-партеров может быть большой (около 2000 а.о.) ZAD-C2H2 белок Molting Defective (Mld), который также связывается с промоторами nvd и spok [12]. Белок Mld эффективно экспрессируется на всех стадиях развития и, вероятно, имеет много различных функций в регуляции экспрессии генов. Необходимы дальнейшие исследования для ответа на вопрос, могут ли белки ouib и nom рекрутироваться в гетерохроматиновый компартмент в результате взаимодействия с другими ZAD-C2H2-белками, которые ассоциированы с основными гетерохроматиновыми белками.
Источник финансирования
Исследование выполнено за счет Российского научного фонда, грант № 22-24-00894.
Соблюдение этических норм и стандартов
В соответствии с пунктом 3 главы 1 Директивы 2010/63/ЕС от 22.09.2010 г. о защите животных, используемых в научных целях, требования биоэтики не распространяются на объект данного исследования.
Конфликт интересов
Авторы статьи подтверждают отсутствие конфликта интересов, о котором необходимо сообщить.
Об авторах
Ю. В. Пекина
ФГБУН “Институт биологии гена Российской академии наук (ИБГ РАН)”
Email: v.babosha@gmail.com
Россия, Москва
В. A. Бабоша
ФГБУН “Институт биологии гена Российской академии наук (ИБГ РАН)”
Автор, ответственный за переписку.
Email: v.babosha@gmail.com
Россия, Москва
П. Г. Георгиев
ФГБУН “Институт биологии гена Российской академии наук (ИБГ РАН)”
Email: v.babosha@gmail.com
академик
Россия, МоскваА. А. Федотова
ФГБУН “Институт биологии гена Российской академии наук (ИБГ РАН)”
Email: annafedotova@list.ru
Россия, Москва
Список литературы
- Marsano R.M., Giordano E., Messina G., et al. A New Portrait of Constitutive Heterochromatin: Lessons from Drosophila melanogaster // Trends in Genetics. 2019. Vol. 35. A New Portrait of Constitutive Heterochromatin. № 9. P. 615–631.
- Saha P., Sowpati D. T., Soujanya M., et al. Interplay of pericentromeric genome organization and chromatin landscape regulates the expression of Drosophila melanogaster heterochromatic genes // Epigenetics & Chromatin. 2020. Vol. 13. № 1. P. 41.
- Vo Ngoc L., Kassavetis G.A., Kadonaga J.T. The RNA Polymerase II Core Promoter in Drosophila // Genetics. – 2019. – Vol. 212. – № 1. – P. 13-24.
- Kyrchanova O. V., Bylino O. V., Georgiev P. G. Mechanisms of enhancer-promoter communication and chromosomal architecture in mammals and Drosophila / O. V. Kyrchanova, O. V. Bylino, P. G. Georgiev // Frontiers in Genetics. 2022. Vol. 13. P. 1081088.
- Bonchuk A.N., Boyko K., Nikilaeva A.Y., et al. Structural insights into highly similar spatial organization of zinc-finger associated domains with a very low sequence similarity // Structure (London, England: 1993). 2022. Vol. 30. № 7. P. 1004-1015.e4.
- Bonchuk A.N., Boyko K., Fedotova A. A., et al. Structural basis of diversity and homodimerization specificity of zinc-finger-associated domains in Drosophila // Nucleic Acids Research. 2021. Vol. 49. № 4. P. 2375-2389.
- Baumann D.G., Gilmor D.S. A sequence-specific core promoter-binding transcription factor recruits TRF2 to coordinately transcribe ribosomal protein genes // Nucleic Acids Research. 2017. Vol. 45. № 18. P. 10481–10491.
- Li J., Gilmour D.S. Distinct mechanisms of transcriptional pausing orchestrated by GAGA factor and M1BP, a novel transcription factor / J. Li, D.S. Gilmour // The EMBO Journal. 2013. Vol. 32. № 13. P. 1829–1841.
- Bag I., Shue C., Rosin L. M1BP cooperates with CP190 to activate transcription at TAD borders and promote chromatin insulator activity // Nature Communications. 2021. Vol. 12. № 1. P. 4170.
- Sabirov M., Popovich A., Boyko K., et al. Mechanisms of CP190 Interaction with Architectural Proteins in Drosophila Melanogaster // International Journal of Molecular Sciences. 2021. Vol. 22. № 22. P. 12400.
- Komura-Kawa T., Hirota K., Shimada-Niwa Y., et al. The Drosophila Zinc Finger Transcription Factor Ouija Board Controls Ecdysteroid Biosynthesis through Specific Regulation of spookier // PLoS genetics. 2015. Vol. 11. № 12. P. e1005712.
- Uryu O., Komura-Kawa T., Kamiyama T., et al. Cooperative Control of Ecdysone Biosynthesis in Drosophila by Transcription Factors Séance, Ouija Board, and Molting Defective // Genetics. 2018. Vol. 208. № 2. P. 605-622.
- Niwa Y.S., Niwa R. Ouija board: A transcription factor evolved for only one target in steroid hormone biosynthesis in the fruit fly Drosophila melanogaster // Transcription. 2016. Vol. 7. Ouija board. № 5. P. 196–202.
- Kasinathan B., Colmenares S. U., McConnell H., et al. Innovation of heterochromatin functions drives rapid evolution of essential ZAD-ZNF genes in Drosophila // eLife. 2020. Vol. 9. P.e63368.
- Demakova O.V., Demakov S.A., Boldyreva L.V., et al. Faint gray bands in Drosophila melanogaster polytene chromosomes are formed by coding sequences of housekeeping genes // Chromosoma. 2020. Vol. 129. № 1. P. 25–44.
Дополнительные файлы
