Изменения гормонального профиля под воздействием факторов окружающей среды у детей, проживающих в регионе Аральской экологической катастрофы

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Актуальность. Южное Приаралье с середины ХХ в. печально известно как регион экологического бедствия, где антропогенное влияние привело к пересыханию Аральского моря. Аридизация этих территорий стала причиной аккумулирования энокринразрушающих соединений — пестицидов и токсических металлов в почве и воде.

Цель — оценка изменения гормонального профиля под воздействием факторов окружающей среды у мальчиков препубертатного возраста, проживающих на разном удалении от эпицентра аральской экологической катастрофы.

Материалы и методы. В работу были включены 58 детей мужского пола в возрасте 11–13 лет. Все юноши с рождения проживали в двух регионах Приаралья и были разделены на две группы в зависимости от их места жительства. Группу «Север» (неблагоприятные условия) составили 27 детей из Муйнакского, Кунградского, Караузякского, Тахтакупырского районов. В группу «Нукус» (относительно благополучные условия) вошел 31 доброволец из г. Нукус. Всем детям определяли в крови концентрацию инсулиноподобного фактора роста-1, соматотропного гормона, общего тестостерона, эстрадиола, фолликулостимулирующего гормона, лютеинизирующего гормона, тиреотропного гормона, трийодтиронина. Проверку статистической значимости различий указанных гормонов у детей из группы «Север» и «Нукус» производили с применением теста Манна – Уитни.

Результаты. Анализ данных выявил статистически значимо большие значения общего тестостерона, фолликулостимулирующего гормона и лютеинизирующего гормона у детей из группы «Нукус» по сравнению с их сверстниками из группы «Север». Концентрации инсулиноподобного фактора роста-1, соматоторопного гормона, эстрадиола, тиреотропного гормона и трийодтиронина в плазме крови у добровольцев из обеих групп статистически значимо не отличались.

Заключение. Окружающая среда региона Аральской экологической катастрофы с повышенным содержанием хлорорганических соединений, пестицидов и тяжелых металлов изменяет эндокринный статус у местных детей предподросткового возраста. Это выражено в умеренном снижении активности андрогенов (но не эстрогенов) и гонадотропных гомонов. Проведенное исследование можно считать пилотным, которое обусловливает необходимость дальнейшего мониторинга эндокринных нарушений у детей и взрослых, проживающих в негативных экологических условиях.

Об авторах

Валерий Олегович Еркудов

Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: verkudov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-7351-0405
SPIN-код: 5155-2173

канд. мед. наук, доцент, кафедра нормальной физиологии

Россия, Санкт-Петербург

Кенжабек Умар угли Розумбетов

Каракалпакский государственный университет им. Бердаха

Email: rozumbetov96@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5967-4219
SPIN-код: 9333-7494

ассистент, кафедра анатомии, физиологии и биохимии животных

Узбекистан, Нукус

Азат Таубалдиевич Матчанов

Каракалпакский государственный университет им. Бердаха

Email: Matchanovazat@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-6066-1327
SPIN-код: 8253-2317

д-р биол. наук, профессор, заведующий кафедрой общей биологии и физиологии

Узбекистан, Нукус

Андрей Петрович Пуговкин

Санкт-Петербургский государственный электротехнический университет «ЛЭТИ» им. В.И. Ульянова (Ленина)

Email: apugovkin@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8415-2885
SPIN-код: 2065-4505

д-р биол. наук, ст. научн. сотр., профессор кафедры биотехнических систем

Россия, Санкт-Петербург

Сымбат Нуркеновна Нысанова

Каракалпакский государственный университет им. Бердаха

Email: symbat.nysanova90@gmail.com
ORCID iD: 0009-0007-7909-5207

аспирант, кафедра общей биологии и физиологии

Узбекистан, Нукус

Мадина Азатбековна Калмуратова

Ташкентский педиатрический медицинский институт

Email: kalmuratova.m@yandex.by
ORCID iD: 0009-0003-4149-5329

студентка 1-го курса

Узбекистан, Ташкент

Андрей Викторович Кочубеев

Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Email: andrej.ko4@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0006-0543-5240
SPIN-код: 5927-8318

канд. мед. наук, доцент, кафедра нормальной физиологии

Россия, Санкт-Петербург

Сергей Степанович Рогозин

Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Email: box.rogozin@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9263-0111
SPIN-код: 2187-2806

ассистент, кафедра нормальной физиологии

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Еркудов В.О., Заславский Д.В., Пуговкин А.П., и др. Антропометрические характеристики молодежи Приаралья (Узбекистан) в зависимости от степени экологического неблагополучия территории // Экология человека. 2020. № 10. С. 45–54. doi: 10.33396/1728-0869-2020-10-45-54
  2. Еркудов В.О., Пуговкин А.П., Матчанов А.Т., и др. Анализ отклонений параметров физического развития у юношей, проживающих в Приаралье, от международных стандартизированных норм // Педиатр. 2020. Т. 11, № 6. С. 21–28. doi: 10.17816/PED11621-28
  3. Еркудов В.О., Пуговкин А.П., Матчанов А.Т., и др. Антропометрические характеристики юношей-спортсменов, проживающих в Каракалпакстане // Человек. Спорт. Медицина. 2022. Т. 22, № 3. С. 16–22. doi: 10.14529/hsm220302
  4. Реймов Р.Р., Константинова Л.Г. Экологическая характеристика Приаралья и пространственная дифференциация его территории как зоны экологического бедствия // Вестник Каракалпакского отделения Академии Наук Республики Узбекистан. 1992. № 2. С. 3–8.
  5. Abreu A.P., Kaiser U.B. Pubertal development and regulation // Lancet Diabetes Endocrinol. 2016. Vol. 4, No. 3. P. 254–264. doi: 10.1016/S2213-8587(15)00418-0
  6. Afeiche M., Peterson K.E., Sánchez B.N., et al. Windows of lead exposure sensitivity, attained height, and body mass index at 48 months // J Pediatr. 2012. Vol. 160, No. 6. P. 1044–1049. doi: 10.1016/j.jpeds.2011.12.022
  7. Aguilar-Garduño C., Lacasaña M., Blanco-Muñoz J., et al. Changes in male hormone profile after occupational organophosphate exposure. A longitudinal study // Toxicology. 2013. Vol. 307. P. 55–65. doi: 10.1016/j.tox.2012.11.001
  8. Agusa T., Kunito T., Iwata H., et al. Mercury in hair and blood from residents of Phnom Penh (Cambodia) and possible effect on serum hormone levels // Chemosphere. 2007. Vol. 68, No. 3. P. 590–596. doi: 10.1016/j.chemosphere.2007.01.003
  9. Al Alwan I., Alfaraidi H., Al Juraibah F., et al. Timing of puberty and late pubertal height in Saudi schoolboys: Riyadh puberty study II // Int J Endocrinol. 2022. Vol. 2022. ID 4343596. doi: 10.1155/2022/4343596
  10. Ali I., Engström A., Vahter M., et al. Associations between cadmium exposure and circulating levels of sex hormones in postmenopausal women // Environ Res. 2014. Vol. 134. P. 265–269. doi: 10.1016/j.envres.2014.08.009
  11. Anchita, Zhupankhan A., Khaibullina Z., et al. Health impact of drying aral sea: one health and socio-economical approach // Water. 2021. Vol. 13, No. 22. ID 3196. doi: 10.3390/w13223196
  12. Andersen H.R., Schmidt I.M., Grandjean P., et al. Impaired reproductive development in sons of women occupationally exposed to pesticides during pregnancy // Environ Health Perspect. 2008. Vol. 116, No. 4. P. 566–572. doi: 10.1289/ehp.10790
  13. Araki A., Miyashita C., Mitsui T., et al. Prenatal organochlorine pesticide exposure and the disruption of steroids and reproductive hormones in cord blood: The Hokkaido study // Environ Int. 2018. Vol. 110. P. 1–13. doi: 10.1016/j.envint.2017.10.006
  14. Ashrap P., Meeker J.D., Sánchez B.N., et al. In utero and peripubertal metals exposure in relation to reproductive hormones and sexual maturation and progression among boys in Mexico City // Environ Health. 2020. Vol. 19, No. 1. ID 124. doi: 10.1186/s12940-020-00672-0
  15. Ataniyazova O.A., Baumann R.A., Liem A.K., et al. Levels of certain metals, organochlorine pesticides and dioxins in cord blood, maternal blood, human milk and some commonly used nutrients in the surroundings of the Aral Sea (Karakalpakstan, Republic of Uzbekistan) // Acta Paediatr. 2001. Vol. 90, No. 7. P. 801–808. doi: 10.1111/j.1651-2227.2001.tb02808.x
  16. Babić Leko M., Gunjača I., Pleić N., Zemunik T. Environmental factors affecting thyroid-stimulating hormone and thyroid hormone levels // Int J Mol Sci. 2021. Vol. 22, No. 12. ID 6521. doi: 10.3390/ijms22126521
  17. Banks J.R., Heinold B., Schepanski K. Impacts of the desiccation of the Aral Sea on the Central Asian dust life-cycle // J Geophys Res: Atmosp. 2022. Vol. 127, No. 21. ID e2022JD036618. doi: 10.1029/2022JD036618
  18. Bapayeva G., Poddighe D., Terzic S., et al. Organochlorine pesticides exposure in female adolescents: potential impact on sexual hormones and interleukin-1 levels // Immunol Res. 2018. Vol. 66, No. 6. P. 756–760. doi: 10.1007/s12026-018-9049-9
  19. Baralić K., Javorac D., Marić Đ., et al. Benchmark dose approach in investigating the relationship between blood metal levels and reproductive hormones: Data set from human study // Environ Int. 2022. Vol. 165. ID 107313. doi: 10.1016/j.envint.2022.107313
  20. Bell M.R. Endocrine-disrupting actions of PCBs on brain development and social and reproductive behaviors // Curr Opin Pharmacol. 2014. Vol. 19. P. 134–144. doi: 10.1016/j.coph.2014.09.020
  21. Blanco-Muñoz J., Lacasaña M., Aguilar-Garduño C., et al. Effect of exposure to p,p’-DDE on male hormone profile in Mexican flower growers // Occup Environ Med. 2012. Vol. 69, No. 1. P. 5–11. doi: 10.1136/oem.2010.059667
  22. Boas M., Feldt-Rasmussen U., Main K.M. Thyroid effects of endocrine disrupting chemicals // Mol Cell Endocrinol. 2012. Vol. 355, No. 2. P. 240–248. doi: 10.1016/j.mce.2011.09.005
  23. Bornman M.S., Chevrier J., Rauch S., et al. Dichlorodiphenyltrichloroethane exposure and anogenital distance in the Venda Health Examination of Mothers, Babies and their Environment (VHEMBE) birth cohort study, South Africa // Andrology. 2016. Vol. 4, No. 4. P. 608–615. doi: 10.1111/andr.12235
  24. Camoratto A.M., White L.M., Lau Y.-S., et al. Effect of exposure to low level lead on growth and growth hormone release in rats // Toxicology. 1993. Vol. 83, No. 1–3. P. 101–114. doi: 10.1016/0300-483x(93)90095-a
  25. Carlson H.E. Inhibition of prolactin and growth hormone secretion by nickel // Life Sci. 1984. Vol. 35, No. 17. P. 1747–1754. doi: 10.1016/0024-3205(84)90271-6
  26. Carpenter D.O., El-Qaderi S., Fayzieva D., et al. Children’s environmental health in Central Asia and the Middle east // Int J Occup Environ Health. 2006. Vol. 12, No. 4. P. 362–368. doi: 10.1179/oeh.2006.12.4.362
  27. Casals-Casas C., Desvergne B. Endocrine disruptors: from endocrine to metabolic disruption // Annu Rev Physiol. 2011. Vol. 73. P. 135–162. doi: 10.1146/annurev-physiol-012110-142200
  28. Castiello F., Olmedo P., Gil F., et al. Association of urinary metal concentrations with blood pressure and serum hormones in Spanish male adolescents // Environ Res. 2020. Vol. 182. ID 108958. doi: 10.1016/j.envres.2019.108958.
  29. Chapin R.E., Robbins W.A., Schieve L.A., et al. Off to a good start: the influence of pre- and periconceptional exposures, parental fertility, and nutrition on children’s health // Environ Health Perspect. 2004. Vol. 112, No. 1. P. 69–78. doi: 10.1289/ehp.6261
  30. Chen C., Wang N., Nie X., et al. Blood cadmium level associates with lower testosterone and sex hormone-binding globulin in chinese men: from SPECT-China study, 2014 // Biol Trace Elem Res. 2016. Vol. 171, No. 1. P. 71–78. doi: 10.1007/s12011-015-0526-x
  31. Chiba M., Sera K., Hashizume M., et al. Element concentrations in hair of children living in environmentally degraded districts of the East Aral Sea Region // J Radioanalytical Nucl Chem. 2004. Vol. 259, No. 1. P. 149–152. doi: 10.1023/B:JRNC.0000015820.61512.b9
  32. Choi J.Y., Huh D.-A., Moon K.W. Association between blood lead levels and metabolic syndrome considering the effect of the thyroid-stimulating hormone based on the 2013 Korea National health and nutrition examination survey // PLoS One. 2020. Vol. 15, No. 12. ID e0244821. doi: 10.1371/journal.pone.0244821
  33. Clements R.J., Lawrence R.C., Blank J.L. Effects of intrauterine 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin on the development and function of the gonadotrophin releasing hormone neuronal system in the male rat // Reprod Toxicol. 2009. Vol. 28, No. 1. P. 38–45. doi: 10.1016/j.reprotox.2009.02.002
  34. Cocchi D., Tulipano G., Colciago A., et al. Chronic treatment with polychlorinated biphenyls (PCB) during pregnancy and lactation in the rat: Part 1: Effects on somatic growth, growth hormone-axis activity and bone mass in the offspring // Toxicol Appl Pharmacol. 2009. Vol. 237, No. 2. P. 127–136. doi: 10.1016/j.taap.2009.03.008
  35. Covaci A., Gheorghe A., Schepens P. Distribution of organochlorine pesticides, polychlorinated biphenyls and alpha-HCH enantiomers in pork tissues // Chemosphere. 2004. Vol. 56, No. 8. P. 757–766. doi: 10.1016/j.chemosphere.2004.02.014
  36. Crighton E.J., Elliott S.J., Upshur R., et al. The Aral Sea disaster and self-rated health // Health Place. 2003. Vol. 9, No. 2. P. 73–82. doi: 10.1016/s1353-8292(02)00017-5
  37. Crighton E.J., Barwin L., Small I., Upshur R. What have we learned? A review of the literature on children’s health and the environment in the Aral Sea area // Int J Public Health. 2011. Vol. 56, No. 2. P. 125–138. doi: 10.1007/s00038-010-0201-0
  38. Curley J.P., Mashoodh R., Champagne F.A. Epigenetics and the origins of paternal effects // Horm Behav. 2011. Vol. 59, No. 3. P. 306–314. doi: 10.1016/j.yhbeh.2010.06.018
  39. Dallaire R., Dewailly É., Ayotte P., et al. Growth in Inuit children exposed to polychlorinated biphenyls and lead during fetal development and childhood // Environ Res. 2014. Vol. 134. P. 17–23. doi: 10.1016/j.envres.2014.06.023
  40. Darnerud P.O., Atuma S., Aune M., et al. Dietary intake estimations of organohalogen contaminants (dioxins, PCB, PBDE and chlorinated pesticides, e. g. DDT) based on Swedish market basket data // Food Chem Toxicol. 2006. Vol. 44, No. 9. P. 1597–1606. doi: 10.1016/j.fct.2006.03.011
  41. De Craemer S., Croes K., van Larebeke N., et al. Metals, hormones and sexual maturation in Flemish adolescents in three cross-sectional studies (2002–2015) // Environ Int. 2017. Vol. 102. P. 190–199. doi: 10.1016/j.envint.2017.02.014
  42. Decherf S., Demeneix B.A. The obesogen hypothesis: a shift of focus from the periphery to the hypothalamus // J Toxicol Environ Health B Crit Rev. 2011. Vol. 14, No. 5–7. P. 423–448. doi: 10.1080/10937404.2011.578561
  43. Den Hond E., Dhooge W., Bruckers L., et al. Internal exposure to pollutants and sexual maturation in Flemish adolescents // J Expo Sci Environ Epidemiol. 2011. Vol. 21, No. 3. P. 224–233. doi: 10.1038/jes.2010.2
  44. Dewailly E., Mulvad G., Pedersen H.S., et al. Concentration of organochlorines in human brain, liver, and adipose tissue autopsy samples from Greenland // Environ Health Perspect. 1999. Vol. 107, No. 10. P. 823–828. doi: 10.1289/ehp.99107823
  45. Dhooge W., Den Hond E., Koppen G., et al. Internal exposure to pollutants and body size in Flemish adolescents and adults: associations and dose-response relationships // Environ Int. 2010. Vol. 36, No. 4. P. 330–337. doi: 10.1016/j.envint.2010.01.005
  46. Dickerson S.M., Cunningham S.L., Gore A.C. Prenatal PCBs disrupt early neuroendocrine development of the rat hypothalamus // Toxicol Appl Pharmacol. 2011. Vol. 252, No. 1. P. 36–46. doi: 10.1016/j.taap.2011.01.012
  47. Dickerson S.M., Guevara E., Woller M.J., Gore A.C. Cell death mechanisms in GT1-7 GnRH cells exposed to polychlorinated biphenyls PCB74, PCB118, and PCB153 // Toxicol Appl Pharmacol. 2009. Vol. 237, No. 2. P. 237–245. doi: 10.1016/j.taap.2009.04.001
  48. Dos Santos N.R., Rodrigues J.L.G., Bandeira M.J., et al. Manganese exposure and association with hormone imbalance in children living near a ferro-manganese alloy plant // Environ Res. 2019. Vol. 172. P. 166–174. doi: 10.1016/j.envres.2019.02.021
  49. Emeville E., Giton F., Giusti A., et al. Persistent organochlorine pollutants with endocrine activity and blood steroid hormone levels in middle-aged men // PLoS One. 2013. Vol. 8, No. 6. ID e66460. doi: 10.1371/journal.pone.0066460
  50. Erdinger L., Eckl P., Ingel F., et al. The Aral Sea disaster — human biomonitoring of Hg, As, HCB, DDE, and PCBs in children living in Aralsk-and Akchi, Kazakhstan // Int J Hyg Environ Health. 2004. Vol. 207, No. 6. P. 541–547. doi: 10.1078/1438-4639-00325
  51. Eskenazi B., Rauch S.A., Tenerelli R., et al. In utero and childhood DDT, DDE, PBDE and PCBs exposure and sex hormones in adolescent boys: The CHAMACOS study // Int J Hyg Environ Health. 2017. Vol. 220, No. 2-B. P. 364–372. doi: 10.1016/j.ijheh.2016.11.001
  52. Ferguson K.K., Hauser R., Altshul L., Meeker J.D. Serum concentrations of p,p’-DDE, HCB, PCBs and reproductive hormones among men of reproductive age // Reprod Toxicol. 2012. Vol. 34, No. 3. P. 429–435. doi: 10.1016/j.reprotox.2012.04.006
  53. Fisher M.M., Eugster E.A. What is in our environment that effects puberty? // Reprod Toxicol. 2014. Vol. 44. P. 7–14. doi: 10.1016/j.reprotox.2013.03.012
  54. Fleisch A.F., Burns J.S., Williams P.L., et al. Blood lead levels and serum insulin-like growth factor 1 concentrations in peripubertal boys // Environ Health Perspect. 2013. Vol. 121, No. 7. P. 854–858. doi: 10.1289/ehp.1206105
  55. Freire C., Koifman R.J., Sarcinelli P.N., et al. Association between serum levels of organochlorine pesticides and sex hormones in adults living in a heavily contaminated area in Brazil // Int J Hyg Environ Health. 2014. Vol. 217, No. 2–3. P. 370–378. doi: 10.1016/j.ijheh.2013.07.012
  56. Freire C., Lopez-Espinosa M.-J., Fernández M., et al. Prenatal exposure to organochlorine pesticides and TSH status in newborns from Southern Spain // Sci Total Environ. 2011. Vol. 409, No. 18. P. 3281–3287. doi: 10.1016/j.scitotenv.2011.05.037
  57. Jana F. Uranium contamination of the Aral Sea // J Mar Syst. 2009. Vol. 76. P. 322–335. doi: 10.1016/j.jmarsys.2008.03.020
  58. Fullston T., Ohlsson Teague E.M.C., Palmer N.O., et al. Paternal obesity initiates metabolic disturbances in two generations of mice with incomplete penetrance to the F2 generation and alters the transcriptional profile of testis and sperm microRNA content // FASEB J. 2013. Vol. 27, No. 10. P. 4226–4243. doi: 10.1096/fj.12-224048
  59. Gerber R., Smit N.J., Van Vuren J.H.J., et al. Bioaccumulation and human health risk assessment of DDT and other organochlorine pesticides in an apex aquatic predator from a premier conservation area // Sci Total Environ. 2016. Vol. 550. P. 522–533. doi: 10.1016/j.scitotenv.2016.01.129
  60. Ghassabian A., Trasande L. Disruption in thyroid signaling pathway: a mechanism for the effect of endocrine-disrupting chemicals on child neurodevelopment // Front Endocrinol (Lausanne). 2018. Vol. 9. ID 204. doi: 10.3389/fendo.2018.00204
  61. Gheidarloo M., Kelishadi R., Hovsepian S., et al. The association between prenatal exposure to organochlorine compounds and neonatal thyroid hormone levels: a systematic review // J Pediatr Endocrinol Metab. 2020. Vol. 33, No. 1. P. 21–33. doi: 10.1515/jpem-2019-0336
  62. Gore A.C., Chappell V.A., Fenton S.E., et al. EDC-2: The endocrine society’s second scientific statement on endocrine-disrupting chemicals // Endocr Rev. 2015. Vol. 36, No. 6. P. E1–E150. doi: 10.1210/er.2015-1010
  63. Graceli J.B., Dettogni R.S., Merlo E., et al. The impact of endocrine-disrupting chemical exposure in the mammalian hypothalamic-pituitary axis // Mol Cell Endocrinol. 2020. Vol. 518. ID 110997. doi: 10.1016/j.mce.2020.110997
  64. Greenspan L.C., Lee M.M. Endocrine disrupters and pubertal timing // Curr Opin Endocrinol Diabetes Obes. 2018. Vol. 25, No. 1. P. 49–54. doi: 10.1097/MED.0000000000000377
  65. Hamilton J.D., O’Flaherty E.J. Influence of lead on mineralization during bone growth // Fundam Appl Toxicol. 1995. Vol. 26, No. 2. P. 265–271. doi: 10.1006/faat.1995.1097
  66. Hassan H.F., Elaridi J., Kharma J.A., et al. Persistent organic pollutants in human milk: exposure levels and determinants among lactating mothers in Lebanon // J Food Prot. 2022. Vol. 85, No. 3. P. 384–389. doi: 10.4315/JFP-21-325
  67. Hauser R., Sergeyev O., Korrick S., et al. Association of blood lead levels with onset of puberty in Russian boys // Environ Health Perspect. 2008. Vol. 116, No. 7. P. 976–980. doi: 10.1289/ehp.10516
  68. Hong Y.-C., Kulkarni S.S., Lim Y.-H., et al. Postnatal growth following prenatal lead exposure and calcium intake // Pediatrics. 2014. Vol. 134, No. 6. P. 1151–1159. doi: 10.1542/peds.2014-1658
  69. Hooper K., Petreas M.X., Chuvakova T., et al. Analysis of breast milk to assess exposure to chlorinated contaminants in Kazakstan: high levels of 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin (TCDD) in agricultural villages of southern Kazakstan // Environ Health Perspect. 1998. Vol. 106, No.12. P. 797–806. doi: 10.1289/ehp.98106797
  70. Humblet O., Williams P.L., Korrick S.A., et al. Dioxin and polychlorinated biphenyl concentrations in mother’s serum and the timing of pubertal onset in sons // Epidemiology. 2011. Vol. 22, No. 6. P. 827–835. doi: 10.1097/EDE.0b013e318230b0d1
  71. Huseman C.A., Varma M.M., Angle C.R. Neuroendocrine effects of toxic and low blood lead levels in children // Pediatrics. 1992. Vol. 90, No. 2–1. P. 186–189. doi: 10.1542/peds.90.2.186
  72. Interdonato M., Pizzino G., Bitto A., et al. Cadmium delays puberty onset and testis growth in adolescents // Clin Endocrinol (Oxf). 2015. Vol. 83, No. 3. P. 357–362. doi: 10.1111/cen.12704
  73. Jedrychowski W.A., Perera F.P., Majewska R., et al. Depressed height gain of children associated with intrauterine exposure to polycyclic aromatic hydrocarbons (PAH) and heavy metals: the cohort prospective study // Environ Res. 2015. Vol. 136. P. 141–147. doi: 10.1016/j.envres.2014.08.047
  74. Jeng H.A., Huang Y.L., Pan C.H., Diawara N. Role of low exposure to metals as male reproductive toxicants // Int J Environ Health Res. 2015. Vol. 25, No. 4. P. 405–417. doi: 10.1080/09603123.2014.958137
  75. Jensen S., Mazhitova Z., Zetterström R. Environmental pollution and child health in the Aral Sea Region in Kazakhstan // Sci Total Environ. 1997. Vol. 206, No. 2–3. P. 187–193. doi: 10.1016/S0048-9697(97)80009-5
  76. Kelce W.R., Wilson E.M. Environmental antiandrogens: developmental effects, molecular mechanisms, and clinical implications // J Mol Med (Berl). 1997. Vol. 75, No. 3. P. 198–207. doi: 10.1007/s001090050104
  77. Kester M.H.A., Bulduk S., van Toor H., et al. Potent inhibition of estrogen sulfotransferase by hydroxylated metabolites of polyhalogenated aromatic hydrocarbons reveals alternative mechanism for estrogenic activity of endocrine disrupters // J Clin Endocrinol Metab. 2002. Vol. 87, No. 3. P. 1142–1150. doi: 10.1210/jcem.87.3.8311
  78. Khalaf M.A.M., Younis R.H.A., El-Fakahany H. Effect of low-level environmental lead exposure on the onset of male puberty // Int J Toxicol. 2019. Vol. 38, No. 3. P. 209–214. doi: 10.1177/1091581819848411
  79. Kim K., Argos M., Persky V.W., et al. Associations of exposure to metal and metal mixtures with thyroid hormones: Results from the NHANES 2007–2012 // Environ Res. 2022. Vol. 212, No. C. ID 113413. doi: 10.1016/j.envres.2022.113413
  80. Korrick S.A., Lee M.M., Williams P.L., et al. Dioxin exposure and age of pubertal onset among Russian boys // Environ Health Perspect. 2011. Vol. 119, No. 9. P. 1339–1344. doi: 10.1289/ehp.1003102
  81. Kresovich J.K., Argos M., Turyk M.E. Associations of lead and cadmium with sex hormones in adult males // Environ Res. 2015. Vol. 142. P. 25–33. doi: 10.1016/j.envres.2015.05.026
  82. Krieg E.F. Jr. The relationships between blood lead levels and serum thyroid stimulating hormone and total thyroxine in the third National Health and Nutrition Examination Survey // J Trace Elem Med Biol. 2019. Vol. 51. P. 130–137. doi: 10.1016/j.jtemb.2018.10.010
  83. Krivonogov S.K., Burr G.S., Kuzmin Y.V., et al. The fluctuating Aral Sea: A multidisciplinary-based history of the last two thousand years // Gondwana Res. 2014. Vol. 26, No. 1. P. 284–300. doi: 10.1016/j.gr.2014.02.004
  84. Krönke A.A., Jurkutat A., Schlingmann M., et al. Persistent organic pollutants in pregnant women potentially affect child development and thyroid hormone status // Pediatr Res. 2022. Vol. 91, No. 3. P. 690–698. doi: 10.1038/s41390-021-01488-5
  85. Kultanov B.Z., Dosmagambetova R.S., Ivasenko S.A., et al. The study of cellular and molecular physiological characteristics of sperm in men living in the Aral Sea Region // Open Access Maced J Med Sci. 2016. Vol. 4, No. 1. P. 5–8. doi: 10.3889/oamjms.2016.007
  86. La Merrill M.A., Vandenberg L.N., Smith M.T., et al. Consensus on the key characteristics of endocrine-disrupting chemicals as a basis for hazard identification // Nat Rev Endocrinol. 2020. Vol. 16, No. 1. P. 45–57. doi: 10.1038/s41574-019-0273-8
  87. LaBella F.S., Dular R., Lemon P., et al. Prolactin secretion is specifically inhibited by nickel // Nature. 1973. Vol. 245, No. 5424. P. 330–332. doi: 10.1038/245330a0
  88. Lafuente A., Esquifino A.I. Cadmium effects on hypothalamic activity and pituitary hormone secretion in the male // Toxicol Lett. 1999. Vol. 110, No. 3. P. 209–218. doi: 10.1016/s0378-4274(99)00159-9
  89. Lafuente A., González-Carracedo A., Romero A., et al. Cadmium exposure differentially modifies the circadian patterns of norepinephrine at the median eminence and plasma LH, FSH and testosterone levels // Toxicol Lett. 2004. Vol. 146, No. 2. P. 175–182. doi: 10.1016/j.toxlet.2003.10.004
  90. Lam T., Williams P.L., Lee M.M., et al. Prepubertal serum concentrations of organochlorine pesticides and age at sexual maturity in Russian boys // Environ Health Perspect. 2015. Vol. 123, No. 11. P. 1216–1221. doi: 10.1289/ehp.1409022
  91. Lee P.A., Gollenberg A.L., Hediger M.L., et al. Luteinizing hormone, testosterone and inhibin B levels in the peripubertal period and racial/ethnic differences among boys aged 6–11 years: analyses from NHANES III, 1988–1994 // Clin Endocrinol (Oxf). 2010. Vol. 73, No. 6. P. 744–751. doi: 10.1111/j.1365-2265.2010.03866.x
  92. Lee T.-W., Kim D.H., Ryu J.Y. The effects of exposure to lead, cadmium and mercury on follicle-stimulating hormone levels in men and postmenopausal women: data from the Second Korean National Environmental Health Survey (2012–2014) // Ann Occup Environ Med. 2019. Vol. 31. ID e21. doi: 10.35371/aoem.2019.31.e21
  93. Li J., Ren F., Li Y., et al. Chlorpyrifos induces metabolic disruption by altering levels of reproductive hormones // J Agric Food Chem. 2019. Vol. 67, No. 38. P. 10553–10562. doi: 10.1021/acs.jafc.9b03602
  94. Longnecker M.P. Invited commentary: Why DDT matters now // Am J Epidemiol. 2005. Vol. 162, No. 8. P. 726–728. doi: 10.1093/aje/kwi277
  95. Lorenson M.Y., Robson D.L., Jacobs L.S. Divalent cation inhibition of hormone release from isolated adenohypophysial secretory granules // J Biol Chem. 1983. Vol. 258, No. 14. P. 8618–8622. doi: 10.1016/S0021-9258(18)32101-X
  96. Lutter C., Iyengar V., Barnes R., et al. Breast milk contamination in Kazakhstan: implications for infant feeding // Chemosphere. 1998. Vol. 37, No. 9–12. P. 1761–1772. doi: 10.1016/s0045-6535(98)00241-0
  97. Madrigal J.M., Sargis R.M., Persky V., Turyk M.E. Multiple organochlorine pesticide exposures and measures of sex steroid hormones in adult males: Cross-sectional findings from the 1999–2004 National Health and Nutrition Examination Survey // Int J Hyg Environ Health. 2021. Vol. 231. ID 113609. doi: 10.1016/j.ijheh.2020.113609
  98. Malandrino N., Smith R.J. Synthesis, secretion, and transport of peptide hormones. In: Belfiore A., Leroith D., editors. Principles of endocrinology and hormone action. Springer Cham, 2018. P. 29–42. doi: 10.1007/978-3-319-44675-2
  99. Mamyrbayev A., Dyussembayeva N., Ibrayeva L., Satenova Z. Features of malignancy prevalence among children in the Aral Sea Region // Asian Pac J Cancer Prev. 2016. Vol. 17, No. 12. P. 5217–5221. doi: 10.22034/APJCP.2016.17.12.5217
  100. Massaro E.J., Miller G.D., Massaro T.F. Multiple dose exposure effects on the tissue distribution of lead in the preweanling rat // Neurotoxicology. 1984. Vol. 5, No. 3. P. 333–351.
  101. Mazhitova Z., Jensen S., Ritzén M., Zetterström R. Chlorinated contaminants, growth and thyroid function in schoolchildren from the Aral Sea Region in Kazakhstan // Acta Paediatr. 1998. Vol. 87, No. 9. P. 991–995. doi: 10.1080/080352598750031671
  102. Meeker J.D., Rossano M.G., Protas B., et al. Cadmium, lead, and other metals in relation to semen quality: human evidence for molybdenum as a male reproductive toxicant // Environ Health Perspect. 2008. Vol. 116, No. 11. P. 1473–1479. doi: 10.1289/ehp.11490
  103. Meeker J.D., Rossano M.G., Protas B., et al. Environmental exposure to metals and male reproductive hormones: circulating testosterone is inversely associated with blood molybdenum // Fertil Steril. 2010. Vol. 93, No. 1. P. 130–140. doi: 10.1016/j.fertnstert.2008.09.044
  104. Mehrpour O., Karrari P., Zamani N., et al. Occupational exposure to pesticides and consequences on male semen and fertility: a review // Toxicol Lett. 2014. Vol. 230, No. 2. P. 146–156. doi: 10.1016/j.toxlet.2014.01.029
  105. Memon N.S., Kazi T.G., Afridi H.I., et al. Correlation of manganese with thyroid function in females having hypo- and hyperthyroid disorders // Biol Trace Elem Res. 2015. Vol. 167, No. 2. P. 165–171. doi: 10.1007/s12011-015-0277-8
  106. Menke A., Guallar E., Shiels M.S., et al. The association of urinary cadmium with sex steroid hormone concentrations in a general population sample of US adult men // BMC Public Health. 2008. Vol. 8. ID 72. doi: 10.1186/1471-2458-8-72
  107. Mohammed A., Eklund A., Ostlund-Lindqvist A.M., Slanina P. Distribution of toxaphene, DDT, and PCB among lipoprotein fractions in rat and human plasma // Arch Toxicol. 1990. Vol. 64, No. 7. P. 567–571. doi: 10.1007/BF01971836.
  108. Mouritsen A., Aksglaede L., Sørensen K., et al. Hypothesis: exposure to endocrine-disrupting chemicals may interfere with timing of puberty // Int J Androl. 2010. Vol. 33, No. 2. P. 346–359. doi: 10.1111/j.1365-2605.2010.01051.x
  109. Müller M.H.B., Polder A., Brynildsrud O.B., et al. Organochlorine pesticides (OCPs) and polychlorinated biphenyls (PCBs) in human breast milk and associated health risks to nursing infants in Northern Tanzania // Environ Res. 2017. Vol. 154. P. 425–434. doi: 10.1016/j.envres.2017.01.031
  110. Munier M., Ayoub M., Suteau V., et al. In vitro effects of the endocrine disruptor p,p’DDT on human choriogonadotropin/luteinizing hormone receptor signaling // Arch Toxicol. 2021. Vol. 95, No. 5. P. 1671–1681. doi: 10.1007/s00204-021-03007-1
  111. Muntean N., Jermini M., Small I., et al. Assessment of dietary exposure to some persistent organic pollutants in the Republic of Karakalpakstan of Uzbekistan // Environ Health Perspect. 2003. Vol. 111, No. 10. P. 1306–1311. doi: 10.1289/ehp.5907
  112. Murphy L.E., Gollenberg A.L., Buck Louis G.M., et al. Maternal serum preconception polychlorinated biphenyl concentrations and infant birth weight // Environ Health Perspect. 2010. Vol. 118, No. 2. P. 297–302. doi: 10.1289/ehp.0901150
  113. Naicker N., Norris S.A., Mathee A., et al. Lead exposure is associated with a delay in the onset of puberty in South African adolescent females: findings from the Birth to Twenty cohort // Sci Total Environ. 2010. Vol. 408, No. 21. P. 4949–4954. doi: 10.1016/j.scitotenv.2010.07.037
  114. Mocarelli P., Gerthoux P.M., Patterson D.G. Jr., et al. Dioxin exposure, from infancy through puberty, produces endocrine disruption and affects human semen quality // Environ Health Perspect. 2008. Vol. 116, No. 1. P. 70–77. doi: 10.1289/ehp.10399
  115. Nkomo P., Richter L.M., Kagura J., et al. Environmental lead exposure and pubertal trajectory classes in South African adolescent males and females // Sci Total Environ. 2018. Vol. 628–629. P. 1437–1445. doi: 10.1016/j.scitotenv.2018.02.150
  116. O’Hara S.L., Wiggs G.F., Mamedov B., et al. Exposure to airborne dust contaminated with pesticide in the Aral Sea Region // Lancet. 2000. Vol. 355, No. 9204. P. 627–628. doi: 10.1016/S0140-6736(99)04753-4
  117. Opp C., Groll M., Aslanov I., et al. Aeolian dust deposition in the southern Aral Sea Region (Uzbekistan): Ground-based monitoring results from the LUCA project // Quat Int. 2017. Vol. 429-B. P. 86–99. doi: 10.1016/j.quaint.2015.12.103
  118. Parent A.-S., Franssen D., Fudvoye J., et al. Developmental variations in environmental influences including endocrine disruptors on pubertal timing and neuroendocrine control: Revision of human observations and mechanistic insight from rodents // Front Neuroendocrinol. 2015. Vol. 38. P. 12–36. doi: 10.1016/j.yfrne.2014.12.004
  119. Parker V.S., Squirewell E.J., Lehmler H.-J., et al. Hydroxylated and sulfated metabolites of commonly occurring airborne polychlorinated biphenyls inhibit human steroid sulfotransferases SULT1E1 and SULT2A1 // Environ Toxicol Pharmacol. 2018. Vol. 58. P. 196–201. doi: 10.1016/j.etap.2018.01.010
  120. Pasqualotto F., Clapauch R., Koifman R.J., et al. Occupational exposure to pesticides, reproductive hormone levels and sperm quality in young Brazilian men // Reprod Toxicol. 2017. Vol. 67. P. 174–185. doi: 10.1016/j.reprotox.2017.01.001
  121. Piccoli C., Cremonese C., Koifman R.J., et al. Pesticide exposure and thyroid function in an agricultural population in Brazil // Environ Res. 2016. Vol. 151. P. 389–398. doi: 10.1016/j.envres.2016.08.011
  122. Pilsner J.R., Parker M., Sergeyev O., Suvorov A. Spermatogenesis disruption by dioxins: Epigenetic reprograming and windows of susceptibility // Reprod Toxicol. 2017. Vol. 69. P. 221–229. doi: 10.1016/j.reprotox.2017.03.002
  123. Plant T.M. Neuroendocrine control of the onset of puberty // Front Neuroendocrinol. 2015. Vol. 38. P. 73–88. doi: 10.1016/j.yfrne.2015.04.002
  124. Qiu Y., Lv Y., Zhang M., et al. Cadmium exposure is associated with testosterone levels in men: A cross-sectional study from the China National Human Biomonitoring // Chemosphere. 2022. Vol. 307-2. ID 135786. doi: 10.1016/j.chemosphere.2022.135786
  125. Rami Y., Ebrahimpour K., Maghami M., et al. The association between heavy metals exposure and sex hormones: a systematic review on current evidence // Biol Trace Elem Res. 2022. Vol. 200, No. 8. P. 3491–3510. doi: 10.1007/s12011-021-02947-0
  126. Rasier G., Parent A.-S., Gérard A., et al. Early maturation of gonadotropin-releasing hormone secretion and sexual precocity after exposure of infant female rats to estradiol or dichlorodiphenyltrichloroethane // Biol Reprod. 2007. Vol. 77, No. 4. P. 734–742. doi: 10.1095/biolreprod.106.059303
  127. Rattan S., Zhou C., Chiang C., et al. Exposure to endocrine disruptors during adulthood: consequences for female fertility // J Endocrinol. 2017. Vol. 233, No. 3. P. R109–R129. doi: 10.1530/JOE-17-0023
  128. Renzetti S., Just A.C., Burris H.H., et al. The association of lead exposure during pregnancy and childhood anthropometry in the Mexican PROGRESS cohort // Environ Res. 2017. Vol. 152. P. 226–232. doi: 10.1016/j.envres.2016.10.014
  129. Ronis M.J.J., Badger T.M., Shema S.J., et al. Reproductive toxicity and growth effects in rats exposed to lead at different periods during development // Toxicol Appl Pharmacol. 1996. Vol. 136, No. 2. P. 361–371. doi: 10.1006/taap.1996.0044
  130. Rossi M., Taddei A.R., Fasciani I., et al. The cell biology of the thyroid-disrupting mechanism of dichlorodiphenyltrichloroethane (DDT) // J Endocrinol Invest. 2018. Vol. 41, No. 1. P. 67–73. doi: 10.1007/s40618-017-0716-9
  131. Rotter I., Kosik-Bogacka D.I., Dołęgowska B., et al. Analysis of the relationship between the blood concentration of several metals, macro- and micronutrients and endocrine disorders associated with male aging // Environ Geochem Health. 2016. Vol. 38, No. 3. P. 749–761. doi: 10.1007/s10653-015-9758-0
  132. Roy J.R., Chakraborty S., Chakraborty T.R. Estrogen-like endocrine disrupting chemicals affecting puberty in humans — a review // Med Sci Monit. 2009. Vol. 15, No. 6. P. RA137–145.
  133. Rzymski P., Niedzielski P., Poniedziałek B., et al. Free-ranging domestic cats are characterized by increased metal content in reproductive tissues // Reprod Toxicol. 2015. Vol. 58. P. 54–60. doi: 10.1016/j.reprotox.2015.08.004
  134. Rzymski P., Klimaszyk P., Niedzielski P., et al. Pollution with trace elements and rare-earth metals in the lower course of Syr Darya River and Small Aral Sea, Kazakhstan // Chemosphere. 2019. Vol. 234. P. 81–88. doi: 10.1016/j.chemosphere.2019.06.036
  135. Sabra S., Malmqvist E., Saborit A., et al. Heavy metals exposure levels and their correlation with different clinical forms of fetal growth restriction // PLoS One. 2017. Vol. 12, No. 10. ID e0185645. doi: 10.1371/journal.pone.0185645
  136. Sakiev K., Battakova S., Namazbaeva Z., et al. Neuropsychological state of the population living in the Aral Sea Region (zone of ecological crisis) // Int J Occup Environ Health. 2017. Vol. 23, No. 2. P. 87–93. doi: 10.1080/10773525.2018.1425655
  137. Sarzo B., Ballester F., Soler-Blasco R., et al. Pre and postnatal exposure to mercury and sexual development in 9-year-old children in Spain: The role of brain-derived neurotrophic factor // Environ Res. 2022. Vol. 213. ID 113620. doi: 10.1016/j.envres.2022.113620
  138. Schecter A., Cramer P., Boggess K., et al. Intake of dioxins and related compounds from food in the U. S. population // J Toxicol Environ Health A. 2001. Vol. 63, No. 1. P. 1–18. doi: 10.1080/152873901750128326
  139. Schell L.M., Gallo M.V., Deane G.D., et al. Relationships of polychlorinated biphenyls and dichlorodiphenyldichloroethylene (p,p’-DDE) with testosterone levels in adolescent males // Environ Health Perspect. 2014. Vol. 122, No. 3. P. 304–309. doi: 10.1289/ehp.1205984
  140. Schoeters G., Den Hond E., Dhooge W., et al. Endocrine disruptors and abnormalities of pubertal development // Basic Clin Pharmacol Toxicol. 2008. Vol. 102, No. 2. P. 168–175. doi: 10.1111/j.1742-7843.2007.00180.x
  141. Sen A., Heredia N., Senut M.C., et al. Multigenerational epigenetic inheritance in humans: DNA methylation changes associated with maternal exposure to lead can be transmitted to the grandchildren // Sci Rep. 2015. Vol. 5. ID 14466. doi: 10.1038/srep14466
  142. Serdar C.C., Cihan M., Yücel D., Serdar M.A. Sample size, power and effect size revisited: simplified and practical approaches in pre-clinical, clinical and laboratory studies // Biochem Med (Zagreb). 2021. Vol. 31, No. 1. ID 010502. doi: 10.11613/BM.2021.010502
  143. Sergeyev O., Burns J.S., Williams P.L., et al. The association of peripubertal serum concentrations of organochlorine chemicals and blood lead with growth and pubertal development in a longitudinal cohort of boys: a review of published results from the Russian Children’s Study // Rev Environ Health. 2017. Vol. 32, No. 1–2. P. 83–92. doi: 10.1515/reveh-2016-0052
  144. Small I., van der Meer J., Upshur R.E. Acting on an environmental health disaster: the case of the Aral Sea // Environ Health Perspect. 2001. Vol. 109, No. 6. P. 547–549. doi: 10.1289/ehp.01109547
  145. Sokol R.Z., Wang S., Wan Y.J., et al. Long-term, low-dose lead exposure alters the gonadotropin-releasing hormone system in the male rat // Environ Health Perspect. 2002. Vol. 110, No. 9. P. 871–874. doi: 10.1289/ehp.02110871
  146. Srinivasan K., Radhakrishnamurty R. Studies on the distribution of beta- and gamma-isomers of hexachlorocyclohexane in rat tissues // J Environ Sci Health B. 1983. Vol. 18, No. 3. P. 401–418. doi: 10.1080/03601238309372378
  147. Tang-Péronard J.L., Andersen H.R., Jensen T.K., Heitmann B.L. Endocrine-disrupting chemicals and obesity development in humans: a review // Obes Rev. 2011. Vol. 12, No. 8. P. 622–636. doi: 10.1111/j.1467-789X.2011.00871.x
  148. Tebourbi O., Hallègue D., Yacoubi M.T., et al. Subacute toxicity of p,p’-DDT on rat thyroid: Hormonal and histopathological changes // Environ Toxicol Pharmacol. 2010. Vol. 29, No. 3. P. 271–279. doi: 10.1016/j.etap.2010.03.002
  149. Telisman S., Colak B., Pizent A., et al. Reproductive toxicity of low-level lead exposure in men // Environ Res. 2007. Vol. 105, No. 2. P. 256–266. doi: 10.1016/j.envres.2007.05.011
  150. Tinggaard J., Mieritz M.G., Sørensen K., et al. The physiology and timing of male puberty // Curr Opin Endocrinol Diabetes Obes. 2012. Vol. 19, No. 3. P. 197–203. doi: 10.1097/MED.0b013e3283535614
  151. Turdybekova Y.G., Dosmagambetova R.S., Zhanabayeva S.U., et al. The health status of the reproductive system in women living in the Aral Sea Region // Open Access Maced J Med Sci. 2015. Vol. 3, No. 3. P. 474–477. doi: 10.3889/oamjms.2015.078
  152. Van den Berg M., Birnbaum L.S., Denison M., et al. The 2005 World Health Organization reevaluation of human and Mammalian toxic equivalency factors for dioxins and dioxin-like compounds // Toxicol Sci. 2006. Vol. 93, No. 2. P. 223–241. doi: 10.1093/toxsci/kfl055
  153. Vandenberg L.N., Colborn T., Hayes T.B., et al. Hormones and endocrine-disrupting chemicals: low-dose effects and nonmonotonic dose responses // Endocr Rev. 2012. Vol. 33, No. 3. P. 378–455. doi: 10.1210/er.2011-1050
  154. Walker D.M., Goetz B.M., Gore A.C. Dynamic postnatal developmental and sex-specific neuroendocrine effects of prenatal polychlorinated biphenyls in rats // Mol Endocrinol. 2014. Vol. 28, No. 1. P. 99–115. doi: 10.1210/me.2013-1270
  155. Wallace I.R., McKinley M.C., Bell P.M., Hunter S.J. Sex hormone binding globulin and insulin resistance // Clin Endocrinol (Oxf). 2013. Vol. 78, No. 3. P. 321–329. doi: 10.1111/cen.12086
  156. Wang J., Cao L.-L., Gao Z.-Y., et al. Relationship between thyroid hormone parameters and exposure to a mixture of organochlorine pesticides, mercury and nutrients in the cord blood of newborns // Environ Pollut. 2022. Vol. 292-A. ID 118362. doi: 10.1016/j.envpol.2021.118362
  157. Warner G.R., Mourikes V.E., Neff A.M., et al. Mechanisms of action of agrochemicals acting as endocrine disrupting chemicals // Mol Cell Endocrinol. 2020. Vol. 502. ID 110680. doi: 10.1016/j.mce.2019.110680
  158. West C.N., Schell L.M., Gallo M.V. Sex differences in the association of measures of sexual maturation to common toxicants: Lead, dichloro-diphenyl-trichloroethane (DDT), dichloro-diphenyl-dichloroethylene (DDE), and polychlorinated biphenyls (PCBs) // Ann Hum Biol. 2021. Vol. 48, No. 6. P. 485–502. doi: 10.1080/03014460.2021.1998623
  159. Williams P.L., Sergeyev O., Lee M.M., et al. Blood lead levels and delayed onset of puberty in a longitudinal study of Russian boys // Pediatrics. 2010. Vol. 125, No. 5. P. e1088–1096. doi: 10.1542/peds.2009-2575
  160. Williams P.L., Bellavia A., Korrick S.A., et al. Blood lead levels and timing of male sexual maturity: A longitudinal study of Russian boys // Environ Int. 2019. Vol. 125. P. 470–477. doi: 10.1016/j.envint.2019.01.070
  161. Williams P.L., Mínguez-Alarcón L., Korrick S.A., et al. Association of peripubertal blood lead levels with reproductive hormones and semen parameters in a longitudinal cohort of Russian men // Hum Reprod. 2022. Vol. 37, No. 4. P. 848–858. doi: 10.1093/humrep/deab288
  162. Windham G.C., Pinney S.M., Voss R.W., et al. Brominated flame retardants and other persistent organohalogenated compounds in relation to timing of puberty in a longitudinal study of girls // Environ Health Perspect. 2015. Vol. 123, No. 10. P. 1046–1052. doi: 10.1289/ehp.1408778
  163. Yaglova N.V., Tsomartova D.A., Obernikhin S.S., et al. Differential disrupting effects of prolonged low-dose exposure to dichlorodiphenyltrichloroethane on androgen and estrogen production in males // Int J Mol Sci. 2021. Vol. 22, No. 6. ID 3155. doi: 10.3390/ijms22063155
  164. Yan M., Shi Y., Wang Y., et al. Effects of p,p’-DDE on the mRNA and protein expressions of vimentin, N-cadherin and FSHR in rats testes: an in vivo and in vitro study // Environ Toxicol Pharmacol. 2013. Vol. 35, No. 3. P. 486–494. doi: 10.1016/j.etap.2013.02.008
  165. Yang O., Kim H.L., Weon J.-I., Seo Y.R. Endocrine-disrupting Chemicals: review of toxicological mechanisms using molecular pathway analysis // J Cancer Prev. 2015. Vol. 20, No. 1. P. 12–24. doi: 10.15430/JCP.2015.20.1.12
  166. Yang X., Wang N., Chen C., et al. Changes in area and water volume of the Aral Sea in the arid Central Asia over the period of 1960–2018 and their causes // Catena. 2020. Vol. 191. ID 104566. doi: 10.1016/j.catena.2020.104566
  167. Yorita Christensen K.L. Metals in blood and urine, and thyroid function among adults in the United States 2007–2008 // Int J Hyg Environ Health. 2013. Vol. 216, No. 6. P. 624–632. doi: 10.1016/j.ijheh.2012.08.005
  168. Zawatski W., Lee M.M. Male pubertal development: are endocrine-disrupting compounds shifting the norms? // J Endocrinol. 2013. Vol. 218, No. 2. P. R1–12. doi: 10.1530/JOE-12-0449
  169. Zeng J.Y., Miao Y., Liu C., et al. Serum multiple organochlorine pesticides in relation to testosterone concentrations among Chinese men from an infertility clinic // Chemosphere. 2022. Vol. 299. ID 134469. doi: 10.1016/j.chemosphere.2022.134469
  170. Zhou J., Yang Y., Xiong K., Liu J. Endocrine disrupting effects of dichlorodiphenyltrichloroethane analogues on gonadotropin hormones in pituitary gonadotrope cells // Environ Toxicol Pharmacol. 2014. Vol. 37, No. 3. P. 1194–1201. doi: 10.1016/j.etap.2014.04.018
  171. Zhou P., Wu Y., Yin S., et al. National survey of the levels of persistent organochlorine pesticides in the breast milk of mothers in China // Environ Pollut. 2011. Vol. 159, No. 2. P. 524–531. doi: 10.1016/j.envpol.2010.10.014
  172. Zhumalina A.K., Bekmukhambetov E.Z., Tusupkaliev B.T., Zharlikasinova M.B. Development of scientifically justified proposals on the prevention and treatment of environmentally determined constitutional growth delay in children in the West Kazakhstan Region // Environ Geochem Health. 2019. Vol. 41, No. 3. P. 1251–1265. doi: 10.1007/s10653-018-0210-0
  173. Zoeller R.T., Brown T.R., Doan L.L., et al. Endocrine-disrupting chemicals and public health protection: a statement of principles from The Endocrine Society // Endocrinology. 2012. Vol. 153, No. 9. P. 4097–4110. doi: 10.1210/en.2012-1422
  174. Zumbado M., Luzardo O.P., Lara P.C., et al. Insulin-like growth factor-I (IGF-I) serum concentrations in healthy children and adolescents: relationship to level of contamination by DDT-derivative pesticides // Growth Horm IGF Res. 2010. Vol. 20, No. 1. P. 63–67. doi: 10.1016/j.ghir.2009.07.003

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Пустыня Аралкум, образованная на дне бывшего Аральского моря, вблизи г. Муйнак, Узбекистан. Фотография из личного архива авторов

Скачать (556KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Карта географического распределения населенных пунктов — мест проживания участников исследования из группы «Север» (заштрихованная область) и «Нукус» (сплошная заливка)

Скачать (247KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Гормональный профиль у детей из экспериментальных групп. *p < 0,05. ИПФР-1 — инсулиноподобный фактор роста-1; СТГ — соматоторопный гормон; ОТ — общий тестостерон; E2 — эстрадиол; ФСГ — фолликулостимулирующий гормон; ЛГ — лютеинизирующий гормон; ТТГ — тиреотропный гормон; T3 — трийодтиронин

Скачать (241KB)
Метаданные

© Эко-Вектор, 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
 


Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».