С 2024 года журнал выходит на Национальной платформе периодических научных изданий РЦНИ, https://journals.rcsi.science/2312-6701/index
2022 №3
ГЕНЕТИКА, СЕЛЕКЦИЯ, СОРТОИЗУЧЕНИЕ
Посмотреть аннотацию
Якушина Л.Г., Мацькив А.О., Шхалахова Р.М., Манахова К.А. Вариабельность размера генома у сортов и гибридов хризантемы садовой (Chrysanthemum × hortorum Bailey) коллекции ФИЦ СНЦ РАН // Современное садоводство – Contemporary horticulture. 2022. №3. С. 1-13. DOI: 10.52415/23126701_2022_0301
Хризантема садовая (Chrysanthemum × hortorum) является одной из ведущих цветочно-декоративных культур в мире. Селекция хризантемы садовой ведется с применением преимущественно классических методов селекции (межвидовых и межсортовых скрещиваний, свободного опыления), а также современных методов получения новых адаптированных сортов. Для проведения более успешных направленных скрещиваний при подборе родительских форм немаловажным является знание размера генома. В данной работе методом проточной цитометрии проанализирован размер генома у 12 гибридов и 28 сортов коллекции хризантемы ФИЦ СНЦ РАН, представляющих интерес в качестве доноров хозяйственно-ценных признаков. Большая часть изученных сортов (24) происходят из Нидерландов, 3 сорта и все изученные гибриды выведены в ФГБУН ФИЦ СНЦ РАН (Россия, г. Сочи) и 1 сорт селекции ФГБУН «НБС-ННЦ РАН» (Россия). Из двух буферов для экстракции ядер (Tris-Mg и WPB) более эффективен буфер WPB, так как деградация ядер меньше в процессе пробоподготовки и коэффициент вариации ниже. В результате исследования было выявлено, что размер генома в коллекции варьировал от 8,48 до 20,41 пг. Максимальный размер генома составил 20,49 и 18,39 пг у гибридов С-250-1 и Ж-116-2, соответственно. Минимальный размер генома составил 8,48, 9,3 и 10,5 пг у Desna Pink, Annecy White, Westland red, соответственно. Исследования показали, что некоторые гибриды, полученные от Mona Lisa, имеют отличный от материнского размер генома. Установлено, что родственные сорта Южная и Симфония имеют разный размер генома, который, предположительно, соответствует 6n и 4n набору хромосом, соответственно. На основе полученных результатов по размеру генома можно предположить, что 67,5 % образцов коллекции тетраплоиды, 22,5 % образцов гексаплоиды, 2,5 % пентаплоиды и 7,5 % растений диплоиды. Полученные данные будут полезны для селекции и для поиска корреляций с фенотипическими признаками. При этом, крупноцветковые хризантемы коллекции ФИЦ СНЦ РАН имеют меньший размер генома, и, предположительно, диплоидный и тетраплоидный набор хромосом, тогда как мелкоцветковые сорта и гибриды тетраплоиды и гексаплоиды. В дальнейшем необходимо продолжить изучение коллекции, чтобы выяснить, есть ли среди крупноцветковой хризантемы гексаплоиды и растения с еще более высокой плоидностью.
Хризантема садовая (Chrysanthemum × hortorum) является одной из ведущих цветочно-декоративных культур в мире. Селекция хризантемы садовой ведется с применением преимущественно классических методов селекции (межвидовых и межсортовых скрещиваний, свободного опыления), а также современных методов получения новых адаптированных сортов. Для проведения более успешных направленных скрещиваний при подборе родительских форм немаловажным является знание размера генома. В данной работе методом проточной цитометрии проанализирован размер генома у 12 гибридов и 28 сортов коллекции хризантемы ФИЦ СНЦ РАН, представляющих интерес в качестве доноров хозяйственно-ценных признаков. Большая часть изученных сортов (24) происходят из Нидерландов, 3 сорта и все изученные гибриды выведены в ФГБУН ФИЦ СНЦ РАН (Россия, г. Сочи) и 1 сорт селекции ФГБУН «НБС-ННЦ РАН» (Россия). Из двух буферов для экстракции ядер (Tris-Mg и WPB) более эффективен буфер WPB, так как деградация ядер меньше в процессе пробоподготовки и коэффициент вариации ниже. В результате исследования было выявлено, что размер генома в коллекции варьировал от 8,48 до 20,41 пг. Максимальный размер генома составил 20,49 и 18,39 пг у гибридов С-250-1 и Ж-116-2, соответственно. Минимальный размер генома составил 8,48, 9,3 и 10,5 пг у Desna Pink, Annecy White, Westland red, соответственно. Исследования показали, что некоторые гибриды, полученные от Mona Lisa, имеют отличный от материнского размер генома. Установлено, что родственные сорта Южная и Симфония имеют разный размер генома, который, предположительно, соответствует 6n и 4n набору хромосом, соответственно. На основе полученных результатов по размеру генома можно предположить, что 67,5 % образцов коллекции тетраплоиды, 22,5 % образцов гексаплоиды, 2,5 % пентаплоиды и 7,5 % растений диплоиды. Полученные данные будут полезны для селекции и для поиска корреляций с фенотипическими признаками. При этом, крупноцветковые хризантемы коллекции ФИЦ СНЦ РАН имеют меньший размер генома, и, предположительно, диплоидный и тетраплоидный набор хромосом, тогда как мелкоцветковые сорта и гибриды тетраплоиды и гексаплоиды. В дальнейшем необходимо продолжить изучение коллекции, чтобы выяснить, есть ли среди крупноцветковой хризантемы гексаплоиды и растения с еще более высокой плоидностью.
Ссылки
1. Родионов А.В., Амосова А.В., Беляков Е.А., Журбенко П.М., Михайлова Ю.В., Пунина Е.О., Шнеер В.С., Лоскутов И.Г., Муравенко О.В. Генетические последствия межвидовой гибридизации, ее роль в видообразовании и фенотипическом разнообразии растений // Генетика. 2019. Т. 55, № 3. С. 255-272. DOI:10.1134/S0016675819030159. EDN EDN: VTGASK.
2. Рындин А.В., Слепченко Н.А. Цветочно-декоративные культуры в ФГБНУ ВНИИЦиСК: состояние и пополнение коллекций // Научные труды Северо-Кавказского федерального научного центра садоводства, виноградарства, виноделия. 2019. № 25. С. 206-210. DOI: 10.30679/2587-9847-2019-25-206-210. EDN: AVKFCX.
3. Рындин А.В., Кулян Р.В., Слепченко Н.А. Селекция субтропических и цветочных культур в ФИЦ «Субтропический научный центр РАН» // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2021. Т. 25, № 4. С. 420-432. DOI:10.18699/VJ21.047. EDN: MKMUNT.
4. Шмыгун В.Н. Хризантемы. М.: Наука. 1972. 115 с.
5. Abd El-Twab M.H., Kondo K. FISH physical mapping of 5S, 45S and Arabidopsis-type telomere sequence repeats in Chrysanthemum zawadskii showing intra-chromosomal variation and complexity in nature // Chromosome Botany. 2006. Vol. 1, № 1. Р. 1-5. DOI:10.3199/iscb.1.1.
6. Bala A., Bala M., Khare V. A review on cytological study in Chrysanthemum species // Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry. 2020. Vol. 9, № 5. Р. 549-553.
7. Birchler J.A., Yao H., Chudalayandi S., Vaiman D., Veitia R.А. Heterosis // The Plant Cell. 2010. Vol. 22, № 7. Р. 2105-2112. DOI:10.1105/tpc.110.076133.
8. Chen F.D., Zhao H.B., Li C., Chen S.M., Fang W.-M. Advances in cytology and molecular cytogenetics of the genus Dendranthema // Journal of Nanjing Agricultural University. 2008. Vol. 31, №1. Р. 118-126.
9. Dai S.L., Wang W.K., Huang J.P. Advances of researches on phylogeny of Dendranthema and origin of chrysanthemum // Acta Scientiarum Naturalium Universitatis Pekinensis. 2002. Vol. 24, № 5/6. Р. 230-234. DOI:10.13332/j.1000-1522.2002.z1.046.
10. Dolezel J., Greilhuber J., Suda J. Estimation of nuclear DNA content in plants using flow cytometry // Nature Protocols. 2007. Vol. 2, № 9. Р. 2233-2244. DOI: 10.1038/nprot.2007.310.
11. Dowrick G.I. The chromosomes of Chrysanthemum, II: Garden varieties // Heredity. 1953. № 7. Р. 59-72. DOI:10.1038/HDY.1953.5.
12. Dowrick G.J., El Bayoumi A.S. Nucleic acid content and Сhromosome morphology in Chrysanthemum // Genetics Research. 1969. Vol. 13, № 3. Р. 241-250. DOI:10.1017/S0016672300002937.
13. Dubcovsky, J., Dvorak, J. Genome Plasticity a Key Factor in the Success of Polyploid Wheat Under Domestication // Science. 2007. Vol. 316, № 5833. Р. 1862-1866. DOI:10.1126/science.1143986.
14. Guo X., Luo C., Wu Z., Zhang X., Cheng X., Huang C. Polyploidy levels of Chinese large-flower chrysanthemum determined by flow cytometry // African Journal of Biotechnology. 2012. Vol. 11, № 31. Р. 7789-7794. DOI:10.5897/AJB11.3600.
15. Heslop-Harrison J.S. Comparative Genome Organization in Plants: From Sequence and Markers to Chromatin and Chromosomes // The Plant Cell. 2000. Vol. 12, № 5. Р. 617-635. DOI:10.1105/tpc.12.5.617.
16. Hwang Y., Younis A., Kwang Bok Ryu, Lim K., Chang-Ho Eun, Jungho Lee, Seong-Han Sohn, Soo-Jin Kwon. Karyomorphological Analysis of Wild Chrysanthemum boreale Collected from Four Natural Habitats in Korea // Flower Research Journal. 2013. Vol. 21, № 4. Р. 182-189. DOI:10.11623/frj.2013.21.4.34.
17. Khandakar R.K. MD, Jie Y., Min S.-K., Won M.-K., Choi H.G., Park H.-S., Choi J.-J., Chae S.-C., Jung J.-Y., Lee K.-M., Kim T.-S., PARK Y.-J. Regeneration of Haploid Plantlet through Anther Culture of Chrysanthemum (Dendranthema grandiflorum) // Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca. 2014. Vol. 42, № 2. Р. 482-487. DOI:10.15835/NBHA4229640.
18. Kim J.S., Pak J.H., Seo B.B., Tobe H. Karyotypes of metaphase chromosomes in diploid populations of Dendranthema zawadskii and related species (Asteraceae) from Korea: diversity and evolutionary implications // Journal of Plant Research. 2003. Vol. 116, № 1. Р. 47-55. DOI:10.1007/s10265-002-0067-1. EDN:
19. Li Ch., Chen S., Chen F., Li J., Fang W. Cytogenetic study of three edible Chrysanthemum cultivars // Genetika. 2011. Vol. 47, № 2. Р. 199-205. DOI:10.1134/S1022795411010054.
20. Li H.J., Shao J.W. Investigation, collection and classification of chrysanthemum cultivars in China // Journal of Nanjing Agricultural University. 1990. Vol. 13, №1. Р. 30-36.
21. Li J., Wan Q., Abbott R.J., Rao G.-Y. Geographical distribution of cytotypes in the Chrysanthemum indicum complex as evidenced by ploidy level and genome-size variation // Journal of Systematics and Evolution. 2013. Vol. 51, № 2. Р. 196-204. DOI:10.1111/j.1759-6831.2012.00241.x.
22. Ma Y.-P., Wei J.-X., Yu Z.-Y., Qin B. Characterization of ploidy levels in Chrysanthemum L. by flow cytometry // Journal of Forestry Research. 2015. Vol. 26, № 3. Р. 771-775. DOI:10.1007/s11676-015-0071-7.
23. Miao H.-B., Chen F.-D., Zhao H.-B. Genetic Relationship of 85 Chrysanthemum [Dendranthema × Grandiflora (Ramat.) Kitamura] Cultivars Revealed by ISSR Analysis // Acta Horticulturae Sinica. 2007. Vol. 34, № 5. Р. 1243-1248.
24. Otto S.P., Whitton J. Polyploid Incidence and Evolution // Annual Review of Genetics. 2000. Vol. 34. Р. 401-437. DOI:10.1146/annurev.genet.34.1.401.
25. Roux N., Toloza A., Radecki Z., Zapata-Arias F.J., Dolezel J. Rapid detection of aneuploidy in Musa using flow cytometry // Plant Cell Reports. 2003. Vol. 21, № 5. Р. 483-490. DOI: 10.1007/s00299-002-0512-6.
26. Samarina L.S., Malyarovskaya V.I., Reim S., Yakushina L.G., Koninskaya N.G., Klemeshova K.V., Shkhalakhova R.M., Matskiv A.O., Shurkina E.S., Gabueva T.Y., Slepchenko N.A., Ryndin A.V. Transferability of ISSR, SCoT and SSR Markers for Chrysanthemum × Morifolium Ramat and Genetic Relationships Among Commercial Russian Cultivars // Plants. 2021. Vol. 10, № 7. Р. 1302. DOI: 10.3390/plants10071302. EDN: CQYZJD.
27. Srisawat T., Pattanapanyasat K., Dolezel J. Flow cytometric classification of oil palm cultivars // African Journal of Biotechnology. 2012. Vol. 11, № 16. Р. 3713-3724. DOI: 10.5897/AJB11.2958.
28. Su J., Jiang J., Zhang F., Liu Y., Ding L., Chen S., Chen F. Current achievements and future prospects in the genetic breeding of chrysanthemum: a review // Horticulture Research. 2019. Vol. 6. Р. 109. DOI:10.1038/s41438-019-0193-8.
29. Tsukaya H. Leaf anatomy of a rheophyte, Dendranthema yoshinaganthum (Asteraceae), and of hybrids between D. yoshinaganthum and a closely related non-rheophyte, D. indicum // Journal of Plant Research. 2002. Vol. 115, №5. Р. 329-333. DOI:10.1007/s10265-002-0041-y. EDN: BBCZGA.
30. Van Geest G. Disentangling hexaploid genetics: towards DNA-informed breeding for postharvest performance in chrysanthemum: дис. … PhD Thesis. Wageningen: Wageningen University. 142 p. 2017. DOI:10.18174/420068.
31. Yang W.H., Glover B.J., Rao G.-Y., Yang J. Molecular evidence for multiple polyploidization and lineage recombination in the Chrysanthemum indicum polyploid complex (Asteraceae) // New Phytologist. 2006. Vol. 171, № 4. Р. 875-886. DOI:10.1111/j.1469-8137.2006.01779.x.
32. Zhao H.-B., Chen F.-D., Chen S.-M., Wu G.-S., Guo W.-M. Molecular phylogeny of Chrysanthemum, Ajania and its allies (Anthemideae, Asteraceae) as inferred from nuclear ribosomal ITS and chloroplast trnL-F IGS sequences // Plant Systematics and Evolution. 2010. Vol. 284, № 3/4. Р. 153-169. DOI:10.1007/s00606-009-0242-0.
Посмотреть аннотацию
Смирнова А.Н., Скроцкая О.В. Таксономический и эколого-биологический анализ древесных растений семейства Rosaceae ботанического сада института биологии Коми НЦ УрО РАН // Современное садоводство – Contemporary horticulture. 2022. №3. С. 14-23. DOI: 10.52415/23126701_2022_0302
Коллекция древесных растений Ботанического сада Института биологии формируется более 70 лет и включает порядка 500 таксонов. Особое положение в коллекции занимают представители семейства Rosaceae, большинство из которых обладают высокими декоративными качествами и устойчивостью к новым почвенно-климатическим условиям, что открывает широкие возможности их использования. Проведение анализа коллекции дендрария в разных аспектах способствовало выявлению потенциала растений, возможностей и направлений интродукции. Таксономический анализ коллекции семейства Rosaceae показал ее видовое и сортовое разнообразие. Древесные растения коллекции представлены 24 родами. Наибольшим числом таксонов характеризуются роды Spiraea L. – 39 таксонов (36,6 %), Rosa L. – 23 таксона (15,7 %), Cotoneaster Medik. – 14 видов (9,8 %). Культивары составляют крупную группу в 44 таксона. По природным ареалам виды разделены на следующие группы: восточноазиатские виды – 23 вида, североамериканские – 19 видов, евроазиатские – 18 видов, Дальний Восток, Сибирь с частью ареала в Восточной Азии – 26 видов, европейские – 14 видов. Преобладание в коллекции представителей из данных районов обусловлено сходством климатических условий Республики Коми, Сибири и Северной Америки, а также ценностью интродуцентов и видовым богатством некоторых родов изучаемого семейства во флоре Восточной Азии. Анализ по жизненным формам показывает преобладание кустарников – 113 таксонов, два из которых являются вечнозелеными. Жизненная форма кустарника проявляет большую экологическую пластичность и обеспечивает лучшую зимостойкость, что является важным фактором устойчивости интродуцируемых растений в условиях Севера. Деревья представлены 32 таксонами; два вида являются вечнозелеными полукустарниками. Высокая зимостойкость установлена у растений 112 таксонов. Показано, что приоритетным направлением пополнения коллекции дендрария является увеличение числа видов и сортов растений из зон со схожими климатическими условиями, с жизненной формой кустарника и ценными хозяйственными качествами.
Коллекция древесных растений Ботанического сада Института биологии формируется более 70 лет и включает порядка 500 таксонов. Особое положение в коллекции занимают представители семейства Rosaceae, большинство из которых обладают высокими декоративными качествами и устойчивостью к новым почвенно-климатическим условиям, что открывает широкие возможности их использования. Проведение анализа коллекции дендрария в разных аспектах способствовало выявлению потенциала растений, возможностей и направлений интродукции. Таксономический анализ коллекции семейства Rosaceae показал ее видовое и сортовое разнообразие. Древесные растения коллекции представлены 24 родами. Наибольшим числом таксонов характеризуются роды Spiraea L. – 39 таксонов (36,6 %), Rosa L. – 23 таксона (15,7 %), Cotoneaster Medik. – 14 видов (9,8 %). Культивары составляют крупную группу в 44 таксона. По природным ареалам виды разделены на следующие группы: восточноазиатские виды – 23 вида, североамериканские – 19 видов, евроазиатские – 18 видов, Дальний Восток, Сибирь с частью ареала в Восточной Азии – 26 видов, европейские – 14 видов. Преобладание в коллекции представителей из данных районов обусловлено сходством климатических условий Республики Коми, Сибири и Северной Америки, а также ценностью интродуцентов и видовым богатством некоторых родов изучаемого семейства во флоре Восточной Азии. Анализ по жизненным формам показывает преобладание кустарников – 113 таксонов, два из которых являются вечнозелеными. Жизненная форма кустарника проявляет большую экологическую пластичность и обеспечивает лучшую зимостойкость, что является важным фактором устойчивости интродуцируемых растений в условиях Севера. Деревья представлены 32 таксонами; два вида являются вечнозелеными полукустарниками. Высокая зимостойкость установлена у растений 112 таксонов. Показано, что приоритетным направлением пополнения коллекции дендрария является увеличение числа видов и сортов растений из зон со схожими климатическими условиями, с жизненной формой кустарника и ценными хозяйственными качествами.
Ссылки
1. Атлас по климату и гидрологии Республики Коми / под ред. А.И. Таскаева. М.: Дрофа, Дик, 1997. 116 с.
2. Бобровская В.Э., Бобров Ю.А., Кузнецова Я.В. Древесно-кустарниковая флора Сыктывкара // Вестник Оренбургского государственного педагогического университета. 2017. № 1. С. 1-19. EDN: YHMDNP.
3. Емельянова О.Ю., Цой М.Ф., Павленкова Г.А., Фирсов А.Н., Масалова Л.И. Итоги интродукции видов семейства Rosaceae Juss. генофонда ВНИИСПК // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2018. № 6. С. 30-33. DOI:10.30850/vrsn/2018/6/30-33. EDN: YOYJIL.
4. Лапин П.И., Сиднева С.В. Оценка степени подмерзания видов растений // Древесные растения Главного ботанического сада АН СССР. М.: Наука, 1975. С. 18-19.
5. Лихенко Н.Н., Боронина А.П. Коллекция древесных растений дендрария СибНИИРС // Интерэкспо Гео-Сибирь. 2014. Т. 3, № 2. С. 305-310. EDN: SBOSCL.
6. Мартынов Л.Г. Интродукционные исследования древесных растений в Ботаническом саду Института биологии Коми научного центра Уральского отделения РАН // Ботанические коллекции – национальное достояние России: сборник статей Всероссийской (с международным участием) научной конференции, посвященной 120-летию Гербария имени И.И. Спрыгина и 100-летию Русского ботанического общества. Пенза: ПГУ, 2015. С. 259-261. EDN: TOSFPX.
7. Мифтахова С.А., Скроцкая О.В., Зайнуллина К.С. Биология редкого вида – курильского чая (Pentaphyl-loides fruticosa) – в культуре на Севере // Известия Коми НЦ УрО РАН. 2017. № 2. С. 30-36. EDN: ZBEZFT.
8. Павленкова Г.А., Емельянова О.Ю. Таксономический и хорологический анализ красивоцветущих кустарников дендрария ВНИИСПК // Современное садоводство – Contemporary horticulture. 2021. № 3. С. 20-30. DOI:10.24411/23126701_2021_0303. EDN: MIEHAE.
9. Рытикова О.В., Ростовцева М.В., Мазей Н.Г., Фатюнина Ю.А. Интродукция древесно-кустарниковых растений семейства Rоsасеае Juss. в дендрарии Пензенского ботанического сада имени И.И. Спрыгина // Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Естественные науки. 2016. № 1. С. 23-34. EDN: WGXRYH.
10. Серебряков И.Г. Экологическая морфология растений. Жизненные формы покрытосеменных и хвойных. М.: Высшая школа, 1962. 378 с.
11. Скроцкая О.В., Пунегов В.В. Содержание каротиноидов в плодах растений видов и сортов рода Sorbus L. при интродукции в условиях Севера (Республика Коми) // Самарский научный вестник. 2021. Т. 10, № 3. С. 112-116. DOI:10.17816/snv2021103116. EDN: TGVGYQ.
12. Скупченко Л.А., Мишуров В.П., Волкова Г.А., Портнягина Н.В. Интродукция полезных растений в подзоне средней тайги Республики Коми. (Итоги работы ботанического сада за 50 лет). Т. 3. СПб.: Наука, 2003. 213 с. EDN: QKVCMN.
13. Скупченко Л.А., Пунегов А.Н., Зайнуллина К.С. Виды рода кизильник (Cotoneaster Medik.) при выращивании в среднетаежной подзоне Республики Коми // Известия Коми НЦ УрО РАН. 2016. № 1. С. 30-36. EDN: VRATKR.
14. Смирнова А.Н., Зайнуллина К.С. Биоморфологическая характеристика некоторых видов рода Spiraea L. в культуре на европейском северо-востоке (Республика Коми) // Известия Коми НЦ УрО РАН. 2017. № 1. С. 28-35. EDN: YIEGAH.
15. Соколов С.Я., Связева О.А., Кубли В.А. Ареалы деревьев и кустарников СССР: В 3 томах. Т. 2: Гречишные-Розоцветные. Т. 2. Ленинград: Наука, Ленинградское отделение, 1980. C. 37-116.
16. Толстикова Т.Н., Еднич Е.М. Таксономический состав, жизненные формы и география интродуцентов семейства Rosaceae Adans. в коллекции дендрария АГУ // Вестник Адыгейского государственного университета. Серия 4: Естественно-математические и технические науки. 2007. № 4. С. 102-106. EDN: KBXDHF.
17. Чукуриди С.С. Биологические особенности интродуцентов семейства Rosaceae Adans и возможности их использования в садоводстве Северо-Западного Кавказа: автореф. дис. … док. биол. наук. Краснодар, 2004. EDN: NHNELB.
18. Lingdi L., Cuizhi G., Chaoluan L., Alexander C., Bartholomew B., Brach A.R., Boufford D.E., Ikeda H., Ohba H., Robertson K.R., Spongberg S.A. Flora of China: Rosaceae. Vol. 9. / Ed. Wu Z.-Y., Raven P.H. Beijing: Science Press; St. Louis: Missouri Botanical Garden Press. 2003. P. 46-434.
19. Phipps J.B. Flora of North America. Vol. 9: Rosaceae. 2015. URL: http://www.efloras.org/florataxon.aspx?flora_id=1&taxon_id=10776. (дата обращения 28.03.22).
20. Potter D., Eriksson T., Evans R.C., Oh S., Smedmark J.E.E., Morgan D.R., Kerr M., Robertson K.R., Arsenault M., Dickinson T.A., Campbell C.S. Phylogeny and classification of Rosaceae // Plant Systematics and Evolution. 2007. Vol. 266. P. 5-43. DOI:10.1007/s00606-007-0539-9.
21. Rosaceae Juss. // The World Flora Online. 2022. URL: http://www.worldfloraonline.org/taxon/wfo-7000000532 (дата обращения 25.03.22).
Посмотреть аннотацию
Титова Ю.Г., Курашев О.В. Качественный анализ российских сортов крыжовника, включенных в Госреестр селекционных достижений // Современное садоводство – Contemporary horticulture. 2022. №3. С. 24-37. DOI: 10.52415/23126701_2022_0303
В настоящей статье авторами приведен качественный анализ по основным хозяйственно-полезным признаков сортов крыжовника, включенных в Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию (Госреестр). Данная работа призвана облегчить и упростить процедуру выбора тех или иных сортов как для промышленных производителей продукции данной культуры, так и для садоводов-любителей. В настоящее время (на 2022 год) в Госреестре насчитывается 55 сортов крыжовника. При этом анализ сортимента крыжовника, включенного в Госреестр, показывает большое разнообразие сортов по главным хозяйственно-полезным признакам, как то, устойчивость к неблагоприятным абиотическим (морозостойкость) и биотическим факторам (толерантность к американской мучнистой росе), габитусу куста (в том числе с характером роста куста, оптимально соответствующего условиям машинной уборки урожая), товарным качествам ягод (массе, окраске в биологической спелости, вкусовым характеристикам и высоким технологическим качествам), различным срокам созревания (от раннеспелых до позднеспелых), шиповатости побегов (от практически бесшипных, до сильношиповатых). Ареал распространения (районирование) сортов из Госреестра покрывает практически все регионы Российской федерации. Однако по самим регионам наблюдается значительное варьирование по количеству районированных сортов: при этом наименьшее количество сортов в Северо-Кавказском (2 сорта) и Нижне-Волжском (3 сорта) регионах. Наибольшее количество сортов районировано в Западно-Сибирском (20 сортов) и Уральском (17 сортов) регионах. И хотя проведенный анализ показал наличие незначительной части сортов, обладающих оптимальным комплексом хозяйственно-ценных признаков, тем не менее большая часть сортов характеризуется отдельными ярко выраженными признаками. Это дает основание для проведения дальнейшей селекционной работы с культурой крыжовника, направленной на сочетание комплекса признаков, отвечающих запросам производителей. В частности, отвечающих требованиям машинной (комбайновой) уборки урожая. Немаловажным критерием, предъявляемым к сортам крыжовника, является высокая экологическая пластичность и широкий спектр сроков созревания, что позволило бы расширить ареал распространения (районирования) этой ценной культуры в Российской Федерации.
В настоящей статье авторами приведен качественный анализ по основным хозяйственно-полезным признаков сортов крыжовника, включенных в Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию (Госреестр). Данная работа призвана облегчить и упростить процедуру выбора тех или иных сортов как для промышленных производителей продукции данной культуры, так и для садоводов-любителей. В настоящее время (на 2022 год) в Госреестре насчитывается 55 сортов крыжовника. При этом анализ сортимента крыжовника, включенного в Госреестр, показывает большое разнообразие сортов по главным хозяйственно-полезным признакам, как то, устойчивость к неблагоприятным абиотическим (морозостойкость) и биотическим факторам (толерантность к американской мучнистой росе), габитусу куста (в том числе с характером роста куста, оптимально соответствующего условиям машинной уборки урожая), товарным качествам ягод (массе, окраске в биологической спелости, вкусовым характеристикам и высоким технологическим качествам), различным срокам созревания (от раннеспелых до позднеспелых), шиповатости побегов (от практически бесшипных, до сильношиповатых). Ареал распространения (районирование) сортов из Госреестра покрывает практически все регионы Российской федерации. Однако по самим регионам наблюдается значительное варьирование по количеству районированных сортов: при этом наименьшее количество сортов в Северо-Кавказском (2 сорта) и Нижне-Волжском (3 сорта) регионах. Наибольшее количество сортов районировано в Западно-Сибирском (20 сортов) и Уральском (17 сортов) регионах. И хотя проведенный анализ показал наличие незначительной части сортов, обладающих оптимальным комплексом хозяйственно-ценных признаков, тем не менее большая часть сортов характеризуется отдельными ярко выраженными признаками. Это дает основание для проведения дальнейшей селекционной работы с культурой крыжовника, направленной на сочетание комплекса признаков, отвечающих запросам производителей. В частности, отвечающих требованиям машинной (комбайновой) уборки урожая. Немаловажным критерием, предъявляемым к сортам крыжовника, является высокая экологическая пластичность и широкий спектр сроков созревания, что позволило бы расширить ареал распространения (районирования) этой ценной культуры в Российской Федерации.
Ссылки
1. Аладина О.Н. Крыжовник в России // Питомник и частный сад. 2016. № 3. С.10-17.
2. Володина Е.В. Классификатор рода Grossularia (Tourn) Mill – крыжовник / под ред. В.А. Корнейчук. Л.: Всесоюзный НИИ растениеводства им. Н.И. Вавилова (ВИР), 1980. 40 с.
3. Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию. Т.1. «Сорта растений» (официальное издание). М.: ФГБНУ «Росинформагротех», 2022. С. 415-416.
4. Еремин Г.В., Исачкин А.В., Казаков И.В., Куминов Е.П., Плеханова М.Н., Седов Е.Н. Общая и частная селекция и сортоведение плодовых и ягодных культур. М.: Мир, 2004. С. 386-393. EDN: QKWCLN.
6. Итоги Всероссийской сельскохозяйственной переписи 2016 года: в 8 томах. Том 1. Основные итоги Всероссийской сельскохозяйственной переписи 2016 года. Книга 2. Основные итоги Всероссийской сельскохозяйственной переписи 2016 года по субъектам Российской Федерации / Федеральная служба государственной статистики. М.: ИИЦ «Статистика России», 2018. Т.1, Кн. 2. С. 96-103. URL: https://rosstat.gov.ru/storage/mediabank/VSHP_2016_T1_k2(2).pdf (дата обращения 26.04.2022).
7. Ковешникова Е.Ю. Источники для селекции скороплодных сортов крыжовника // Плодовые культуры и роль науки в развитии промышленного садоводства: материалы международной научно-практической конференции. Воронеж : Воронежский ГАУ, 2014. С. 145-149.
8. Краюшкина Н.С., Егорова К.И. Предварительный отбор сортов крыжовника, пригодных для комбайновой уборки ягод // АгроЭкоИнженерия. 2018. № 97. С. 176-184. DOI:10.24411/0131-5226-2018-10104. EDN: YPQDTV.
9. Курашев О.В., Курашева Е.А. Биологические особенности отдаленных гибридов крыжовника, полученных с участием вида Grossularia robusta // Плодоводство и ягодоводство России. 2012. Т. 32, № 1. С. 235-241. EDN: OWGXDB.
10. Курашев О.В. Некоторые итоги селекции крыжовника во ВНИИСПК // Конкурентоспособные сорта и технологии для высокоэффективного садоводства: материалы международной научно-практической конференции. Орел: ВНИИСПК, 2015. С. 114-118. EDN: UQDZWD.
11. Плеханова М.Н., Тихонова О.А., Арсеньева Т.В., Пупкова Н.А. Доноры и источники важнейших для селекции признаков ягодных культур: (Жимолость, крыжовник, красная смородина, черная смородина) // Каталог мировой коллекции ВИР. 2004. Вып. 743. 142 с. EDN: QKVDKT.
12. Попова И.В. Результаты сортоизучения крыжовника // Селекция и сортоизучение плодово-ягодных культур в Нечернозёмной зоне. М.: Колос, 1966. С. 342-352.
13. Попова И.В. Селекция крыжовника в ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии на бесшипность побегов и штамбовость // Проблемы садоводства в Среднем Поволжье: сборник трудов научно-практической конференции. Самара: Ас Гард, 2011. С. 211-216.
14. Пупкова Н.А. Крыжовник // Плодовые и ягодные культуры: путеводитель. СПб.: Русская коллекция, Азбука-классика, 2008. С. 107-122. EDN: WLFCPJ.
16. Пупкова Н.А. Итоги сортоизучения крыжовника на Северо-Западе России // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2007. Т. 161. С. 139-148. EDN: UNWYRD.
17. Пупкова Н.А. Селекция крыжовника на Ленинградской плодоовощной опытной станции: результаты и перспективы // Садоводство Северо-Запада России: история и перспективы развития (сборник научных трудов ЛПООС). СПб.: ГНУ СЗНИИМЭСХ Россельхозакадемии, 2011. С. 39-47. EDN: WKMHPD.
18. Сергеева К.Д. Крыжовник. М.: Агропромиздат, 1989.
19. Сорокопудов В.Н., Калугина С.В., Кухарук Н.С., Евтухова М.В., Иванова Ю.Ю. Селекционная оценка сортов крыжовника на пригодность к механизированной уборке урожая // Вестник КрасГАУ. 2020. № 4. С. 80-87. DOI:10.36718/1819-4036-2020-4-80-87. EDN: NAZCOB.
20. Толстогузова В.Г., Бойко Е.С. Подбор сортов крыжовника для интенсивной технологии // Плодоводство и ягодоводство России. 2005. Т. 13. С. 65-71. EDN: PDQWUN.
Посмотреть аннотацию
Середин Т.М., Голубкина Н.А., Агафонов А.Ф., Молчанова А.В., Марчева М.М., Шумилина В.В., Голубев Ф.В. Изменение основных биохимичеких показателей в многолетних луках в зависимости от возраста растений // Современное садоводство – Contemporary horticulture. 2022. №3. С. 38-45. DOI: 10.52415/23126701_2022_0304
В настоящих исследованиях были изучены сорта семи видов многолетних луков: алтайский, батун, душистый, косой, краснеющий, слизун и шнитт. Изучение коллекции многолетних луков проводили в условиях Московской области (Одинцовский район). Растения выращивали непосредственно посевом семян в грунт на гряды, по схеме: 45 × 5 см. Коллекционный питомник многолетних луков был представлен 12 сортообразцами по которым исследования были проведены в условиях вегетации 2017…2021 годы. В зависимости от возраста растения многолетних луков, нами было определено активное разрастание куста. Максимальное разрастание было отмечено у лука душистого сорта Априор от 32,1 г до 265,8 г (варьирование массы растения) за пять лет роста и развития. Такая же тенденция развития была отмечена у сорта лука алтайского Альвес и сорта лука слизуна Лидер. Но нужно отметить, что для лука батуна сорта Русский зимний такая тенденция не характерна. Лук батун уже в первый год вегетации формирует крупные листья и стебли, масса растения во второй год изучения у сорта Русский зимний – 89,3 г, у сорта Троица – 79,5 г. Показано, что по результатам полученных данных в два раза увеличивается масса растения лука батуна двух сортов: Русский зимний и Троица за каждый год исследований. Основные биохимические показатели были получены с использованием классических методик. В наших исследованиях были определены межвидовые и межсортовые различия в содержании: сухого вещества, витамина С и моносахаров. Диапазоны варьирования содержания сухого вещества в листьях многолетних луков: 10,61…21,66 %, аскорбиновой кислоты 46,61…66,02 мг% и сахаров 1,07…3,11 %. Содержание фотосинтетических пигментов (хлорофилл А и В, каротиноиды) в сортах многолетних луков было разделено на несколько групп в зависимости от величины параметра и вариабельности, на которую влияет вид растения. По содержанию фотосинтетических пигментов определено, что активным накопителем как хлорофилла А, так и хлорофилла В был лук краснеющий Чародей (2,20 мг/г и 1,18 мг/г).
В настоящих исследованиях были изучены сорта семи видов многолетних луков: алтайский, батун, душистый, косой, краснеющий, слизун и шнитт. Изучение коллекции многолетних луков проводили в условиях Московской области (Одинцовский район). Растения выращивали непосредственно посевом семян в грунт на гряды, по схеме: 45 × 5 см. Коллекционный питомник многолетних луков был представлен 12 сортообразцами по которым исследования были проведены в условиях вегетации 2017…2021 годы. В зависимости от возраста растения многолетних луков, нами было определено активное разрастание куста. Максимальное разрастание было отмечено у лука душистого сорта Априор от 32,1 г до 265,8 г (варьирование массы растения) за пять лет роста и развития. Такая же тенденция развития была отмечена у сорта лука алтайского Альвес и сорта лука слизуна Лидер. Но нужно отметить, что для лука батуна сорта Русский зимний такая тенденция не характерна. Лук батун уже в первый год вегетации формирует крупные листья и стебли, масса растения во второй год изучения у сорта Русский зимний – 89,3 г, у сорта Троица – 79,5 г. Показано, что по результатам полученных данных в два раза увеличивается масса растения лука батуна двух сортов: Русский зимний и Троица за каждый год исследований. Основные биохимические показатели были получены с использованием классических методик. В наших исследованиях были определены межвидовые и межсортовые различия в содержании: сухого вещества, витамина С и моносахаров. Диапазоны варьирования содержания сухого вещества в листьях многолетних луков: 10,61…21,66 %, аскорбиновой кислоты 46,61…66,02 мг% и сахаров 1,07…3,11 %. Содержание фотосинтетических пигментов (хлорофилл А и В, каротиноиды) в сортах многолетних луков было разделено на несколько групп в зависимости от величины параметра и вариабельности, на которую влияет вид растения. По содержанию фотосинтетических пигментов определено, что активным накопителем как хлорофилла А, так и хлорофилла В был лук краснеющий Чародей (2,20 мг/г и 1,18 мг/г).
Ссылки
1. Агафонов А.Ф., Середин Т.М., Дубова М.В. Использование в селекции видового многообразия Аllium L. // Овощеводство и бахчеводство: исторические аспекты, современное состояние, проблемы и перспективы развития: МАТЕРИАЛЫ ІV Международной научно-практической конференции (в рамках ІIІ научного форума «Неделя науки в Крутах – 2018» / ДС «Маяк» ИОБ НААН Украины: в 3 т. – Обухов: ФОП Гуляева В.М., 2018. Т. 1. С. 19-24.
2. Гончаров А.В., Середин Т.М., Шумилина В.В., Голубев Ф.В. Лук шнитт (Аllium schoenoprasum L.): основные морфометрические признаки и биохимические показатели // Вестник Российского аграрного заочного университета. 2022. № 40. С. 8-11. EDN: ZZQBIZ.
3. Иванова М.И., Бухаров А.Ф., Балеев Д.Н., Бухарова А.Р., Кашлева А.И., Середин Т.М., Разин О.А. Биохимический состав листьев видов Allium L. в условиях Московской области // Достижения науки и техники АПК. 2019. Т. 33, № 5. С. 47-50. DOI: 10.24411/0235-2451-2019-10511 EDN: ZNDOCX.
4. Иксанова А.М. Оценка и отбор исходного материала для селекции многолетних луков в условиях нечерноземной зоны России: автореф. дис. … канд. с.-х. наук. М., 2011. 25 с. EDN: QFGGRJ.
5. Исаенко Т.Н. Декоративные луки и их использование в озеленении // Вестник АПК Ставрополья. 2020. № 1. С. 63-66. DOI: 10.31279/2222-9345-2020-9-37-63-66. EDN: CAXNDE.
6. Кокарева В.А., Титова И.В. Лук, чеснок и декоративные луки. М.: Ниола-Пресс, 2007. 208 с.
7. Клюйков Е.В., Украинская У.А. Интродукция некоторых многолетних луков (Аlliaceae) в ботаническом саду МГУ // Интродукция, сохранение и использование биологического разнообразия мировой флоры. Материалы Международной конференции, посвященной 80-летию Центрального ботанического сада Национальной академии наук Беларуси. Минск: ОДО НоваПринт, 2012. С. 139-142. EDN: YQNJYX.
8. Методические указания по изучению коллекционного материала лука. Л.: ВИР, 1968. 11 с.
9. Методические указания по селекции луковых культур / Под ред. И.И. Ершова и А.Ф. Агафонова. М.: ВНИИССОК, 1997. 123 с.
10. Пережогина В.В., Кривченко В.И., Соловьева А.Е., Шумилина В.В., Погромский Ю.В. Методические указания по изучению и поддержанию в живом виде мировой коллекции лука и чеснока. СПб. : ВИР, 2005. 107 с.
11. Сачивко Т.В., Босак В.Н. Особенности развития различных видов многолетних луков // Перспективы научного обеспечения овощеводства. Тезисы докладов Международной научно-практической конференции. 2016. С. 41-43. EDN: NUNNOH.
13. Friesen N., Borisjuk N., Mes T.H.M., Klaas M., Hanelt P. Allotetraploid origin of Allium altyncolicum (Alliaceae, Allium sect. Schoenoprasum) as investigated by karyological and molecular markers // Plant Systematics and Evolution. 1997. № 206. Р. 317-335. DOI: 10.1007/BF00987955
14. Priecina L., Karlina D. Total polyphenol, flavonoid content and antiradical activity of celery, dill, parsley, onion and garlic dried in conventive and microwave-vacuum dryer. // International Proceedings of Chemical, Biological and Environmental Engineering. 2013. Vol. 53. P.107-112. DOI: 10.7763/IPCBEE
Посмотреть аннотацию
Невоструева Е.Ю., Андреева Г.В. Современный сортимент малины летнего типа плодоношения для Волго-Вятского региона // Современное садоводство – Contemporary horticulture. 2022. №3. С. 46-52. DOI: 10.52415/23126701_2022_0306
Условия Среднего Урала не являются благоприятными для большинства интродуцированных сортов такой популярной культуры как малина. В связи с участившимися негативными факторами вегетационного периода в последние годы немаловажное значение имеет устойчивость сортов к ним. Особенно к засушливым условиям, так как известна чувствительность культуры к данному абиотическому фактору внешней среды. За последние десять лет районированный сортимент для Волго-Вятского региона пополнился 5 сортами свердловской селекции и 1 сорт той же селекции вошел в Государственный реестр селекционных достижений по Западно-Сибирскому региону. В статье приведены результаты исследований за период с 2003 по 2021 гг. по новым районированным сортам малины. Изучались сорта раннего срока созревания – Алая россыпь, Лель, Ванда и среднего - Бархатная, Антарес, Фрегат. Контрольными сортами являлись – Любительская Свердловска и Высокая. Исследования проведены по комплексу хозяйственно-ценных признаков согласно общепринятой методике сортоизучения. Высокую зимостойкость за весь период исследований показали раннеспелый сорт Алая россыпь и сорт среднего срока созревания Антарес, степень подмерзания которых не превышала 1,0 балла. По урожайности по сравнению с контролем выделяются сорта Ванда (65,2 ц/га), Алая россыпь (60,8 ц/га) и Антарес (77,3 ц/га). Наиболее крупноплодный из числа изучаемых – сорт Фрегат, средняя масса которого составила 3,6 г, масса ягоды в первом сборе – 5,0 г. Также крупные ягоды у ранних сортов Ванда и Лель (3,1…3,3 г) и у среднеспелого сорта Антарес – 3,4 г. Все изучаемые сорта устойчивы к малинному жуку, менее 5,0% поврежденных ягод в урожае. И имеют очень слабое (1,0 балл) или слабое (2,0 балла) поражение пурпуровой и белой пятнистостями молодых побегов.
Условия Среднего Урала не являются благоприятными для большинства интродуцированных сортов такой популярной культуры как малина. В связи с участившимися негативными факторами вегетационного периода в последние годы немаловажное значение имеет устойчивость сортов к ним. Особенно к засушливым условиям, так как известна чувствительность культуры к данному абиотическому фактору внешней среды. За последние десять лет районированный сортимент для Волго-Вятского региона пополнился 5 сортами свердловской селекции и 1 сорт той же селекции вошел в Государственный реестр селекционных достижений по Западно-Сибирскому региону. В статье приведены результаты исследований за период с 2003 по 2021 гг. по новым районированным сортам малины. Изучались сорта раннего срока созревания – Алая россыпь, Лель, Ванда и среднего - Бархатная, Антарес, Фрегат. Контрольными сортами являлись – Любительская Свердловска и Высокая. Исследования проведены по комплексу хозяйственно-ценных признаков согласно общепринятой методике сортоизучения. Высокую зимостойкость за весь период исследований показали раннеспелый сорт Алая россыпь и сорт среднего срока созревания Антарес, степень подмерзания которых не превышала 1,0 балла. По урожайности по сравнению с контролем выделяются сорта Ванда (65,2 ц/га), Алая россыпь (60,8 ц/га) и Антарес (77,3 ц/га). Наиболее крупноплодный из числа изучаемых – сорт Фрегат, средняя масса которого составила 3,6 г, масса ягоды в первом сборе – 5,0 г. Также крупные ягоды у ранних сортов Ванда и Лель (3,1…3,3 г) и у среднеспелого сорта Антарес – 3,4 г. Все изучаемые сорта устойчивы к малинному жуку, менее 5,0% поврежденных ягод в урожае. И имеют очень слабое (1,0 балл) или слабое (2,0 балла) поражение пурпуровой и белой пятнистостями молодых побегов.
Ссылки
1. Андреева Г.В. Итоги сортоизучения малины в условиях Среднего Урала // Научное обеспечение адаптивного садоводства Уральского региона: сб. науч. тр. Екатеринбург, 2010. С. 146-151. EDN: WHLTEL.
2. Андреева Г.В. Современный сортимент земляники и малины для Урала // 90 лет на службе агропромышленного комплекса Урала: сб. тр. Всероссийской научно-практической конференции с международным участием, посвященной 90-летию со дня основания ЮУНИИСК – филиала ФГБНУ УрФАНИЦ УрО РАН, 25 марта 2021 г. Челябинск: ЧелГУ. 2021. С. 230-235. EDN: GQNDSP.
3. Беляев А.А., Белых А.М., Бакланова Г.И. Сортовая устойчивость малины к пурпуровой пятнистости // Плодоводство и ягодоводство России. 2012. Т. 29, № 1. С. 69-75. EDN: OPGCLL.
4. Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию. Том 1. Сорта растений (Официальное издание). М.: ФГБНУ «Росинформагротех», 2022. С. 416-418.
6. Евдокименко С.Н., Сазонов Ф.Ф., Андронова Н.В., Козак Н.В., Имамкулова З.А., Подгаецкий М.А. Ягодные культуры: биологические особенности, сортимент и технология возделывания. М.: ФГБНУ «ФНЦ садоводства», 2022. С. 145.
7. Евдокименко С.Н., Подгаецкий М.А. Состояние сортимента малины в России и проблемы его улучшения // Плодоводство и ягодоводство России. 2019. Т.59. С. 294-300. DOI: 10.31676/2073-4948-2019-59-294-300. EDN: OYKLAV.
8. Ильин В.С. Земляника, малина и ежевика. Челябинск: Южно-Уральское кн. изд-во, 2007. С. 58. EDN: QKZLHP.
9. Казаков И.В., Грюнер Л.А., Кичина В.В. Малина, ежевика и их гибриды // Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под ред. Е.Н. Седова, Т.П. Огольцовой. Орел: ВНИИСПК, 1999. С. 374-395. EDN: YHAPQH.
10. Казаков И.В., Айтжанова С.Д., Евдокименко С.Н., Кулагина В.Л., Сазонов Ф.Ф. Ягодные культуры в Центральном регионе России. Брянск, 2009. С. 61-63. EDN: VHBPZP.
11. Котов Л.А. Инновационные результаты создания уральских сортов плодовых семечковых культур как основа модернизации плодоводства на Урале // Научное обеспечение адаптивного садоводства Уральского региона: сб. науч. тр. Екатеринбург, 2010. С. 38-45. EDN: WHLTSR.
12. Куликов И.М., Евдокименко С.Н., Тумаева Т.А., Келина А.В., Сазонов Ф.Ф., Андронова Н.В., Подгаецкий М.А. Научное обеспечение ягодоводства России и перспективы его развития // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2021. Т. 25, № 4. С. 414-419. DOI 10.18699/VJ21.046. EDN: ASGGAN.
13. Помология. Т.5: земляника, малина, орехоплодные и редкие культуры / под ред. Е.Н. Седова, Л.А. Грюнер. Орел: ВНИИСПК, 2014. С. 112-177.
14. Подгаецкий М.А., Евдокименко С.Н. Новый исходный материал для совершенствования сортимента малины в Центральном регионе России // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2021. Т.22, № 5. С. 725-734. DOI: 10.30766/2072-9081.2021.22.5.725-734. EDN: EXSEWT.
15. Районированные и перспективные сорта для садоводства Урала / под ред. Е.М. Чеботок, Т.Н. Слепневой, Е.Ю. Невоструевой. Екатеринбург; 2022. С. 98-104.
САДОВОДСТВО И ПИТОМНИКОВОДСТВО
Посмотреть аннотацию
Тимушева О.К. Влияние стимуляторов корнеобразования на укоренение зелёных черенков сортов смородины чёрной // Современное садоводство – Contemporary horticulture. 2022. №3. С. 53-67. DOI: 10.52415/23126701_2022_0305
В статье представлены результаты вегетативного размножения методом зелёного черенкования в 2021 году пяти сортов смородины чёрной (Ribes nigrum L.) разных селекций в условиях среднетаёжной подзоны Республики Коми. Зелёные черенки смородины были нарезаны в первой декаде июля, затем посажены в холодный парник. Черенки перед посадкой выдерживали в дистиллированной воде, а также использовали стимуляторы корнеобразования Корневин и Эпин-экстра (Эпин). Не учитывая результат по контролю, укоренилось в среднем 76,0…90,4 % и прижилось 66,7…68,8 % черенков от общего числа высаженных. Результаты по укоренению и приживаемости черенков показали важность применения стимуляторов, а также подтвердили их с точки зрения формализованного статистического анализа. В середине второй декады августа были выкопаны черенки каждого сорта, выдержанные перед посадкой в Корневине, Эпине и воде (контроль), определено число корней нулевого и первого порядков, а также измерена длина корней нулевого порядка. Применение стимуляторов корнеобразования положительно сказывается на образование корней нулевого и первого порядков, вне зависимости от сорта смородины, и данное влияние статистически значимо. Наиболее значимое влияние стимуляторов для образования у черенков корней нулевого порядка можно сформулировать относительно сортов Вологда и Элевеста (максимальные среди всех сортов значения по показателю tфакт). Для большинства рассматриваемых сортов применение стимуляторов корнеобразования положительно сказывается на средней длине корня черенка, за исключением сортов Элевеста и Лентяй. Для всех сортов в контроле и стимуляторах она составляет в среднем 3,4…6,7 см, при этом разница в средней длине корня в зависимости от контроля и стимулятора корнеобразования составляет 0,1…1,8 см. Стимуляторы корнеобразования Корневин и Эпин эффективны при зелёном черенковании сортов смородины чёрной в среднетаёжной подзоне Республики Коми при использовании в вегетативном размножении.
Ссылки
1. Аладина О.Н. Влияние возраста маточных растений на регенерационную способность крыжовника // Известия ТСХА. 2006. № 4. С. 47-58. EDN: HVSPPX.
2. Аладина О.Н. Оптимизация технологии зелёного черенкования садовых растений // Известия ТСХА. 2013. № 4. С. 5-22. EDN: RCLYSR.
3. Атлас Республики Коми по климату и гидрологии / под ред. А.А. Братцева. М.: Дрофа, 1997. 115 с.
4. Батыгина Т.Б., Васильева В.Е. Размножение растений. СПб . : Издательство Санкт-Петербургского университета, 2002. 232 с.
5. Витковский В.Л. Плодовые растения мира. СПб. : Издательство Лань, 2003. 592 с. EDN:
6. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). М. : Агропромиздат, 1985. 351 с. EDN: ZJQBUD.
7. Мартыненко В.А. Сем. 48. Grossulariaceae DC. – Крыжовниковые // Флора северо-востока европейской части СССР: в 4 томах. Т. 3. Семейства Nymphaeaceae – Hippuridaceae / под ред. Толмачева А.И. Л.: Наука, 1976. С. 100-104.
8. Мартыненко В. А., Груздев Б.И. Сосудистые растения Республики Коми. Сыктывкар: Институт биологии Коми НЦ УрО РАН, 2008. 136 с. EDN: QKRKTR.
9. Огольцова Т.П. Селекция чёрной смородины – прошлое, настоящее, будущее. Тула: Приокское книжное издательство, 1992. 384 с.
10. Плеханова М.Н. Маточные насаждения и технология размножения синей жимолости (методические указания). Л. : ВНИИР им. Н.И. Вавилова, 1989. 34 с.
11. Поздняков А.Д. Смородина. М. : Агропромиздат, 1985. 128 с.
12. Рязанова Л.Г., Проворченко А.В., Горбунов И.В. Основы статистического анализа результатов исследований в садоводстве. Краснодар: Кубанский государственный аграрный университет, 2013. 61 с.
13. Тимушева О.К., Зайнуллина К.С. Роль Эпин-экстра в зелёном черенковании смородины чёрной в подзоне средней тайги Республики Коми // Актуальные проблемы экологии: материалы VIII международной научно-практической конференции. Гродно: ГрГУ им. Я. Купалы, 2012. С. 70-72.
14. Bishayee A., Roslin T.M., Thoppil J., Haznagy-Radnai E., Sipos P., Darvesh A.S., Folkesson H.G., Hohmann J. Anthocyanin-rich black currant (Ribes nigrum L.) extract affords chemoprevention against diethylnitrosamine-induced hepatocellular carcinogenesis in rats // The Journal of Nutritional Biochemistry. 2011. Vol. 22, № 11. P. 1035-1046. DOI:10.1016/j.jnutbio.2010.09.001.
15. Jia N., Li T., Diao X., Kong B. Protective effects of black currant (Ribes nigrum L.) extract on hydrogen peroxide-induced damage in lung fibroblast MRC-5 cells in relation to the antioxidant activity // Journal of Functional Foods. 2014. Vol. 11. P. 142-151. DOI:10.1016/j.jff.2014.09.011.
16. Jia N., Xiong Y.L., Kong B., Liu Q., Xia X. Radical scavenging activity of black currant (Ribes nigrum L.) extract and its inhibitory effect on gastric cancer cell proliferation via induction of apoptosis // Journal of Functional Foods. 2012. Vol. 4, № 1. P. 382-390. DOI:10.1016/j.jff.2012.01.009.